秦國華
(山西醫科大學晉祠學院,山西太原 030025)
神經阻滯療法是當前一個新的阻斷疼痛惡性循 環研究方向,可阻斷疼痛傳導途徑,改善血液流變學以及抗炎作用[1]。近年來,椎管內阻滯所帶來的惡心嘔吐等并發癥,使其臨床應用受限。有學者[2]認為連續股神經阻滯所起到的鎮痛效果與椎管內阻滯相同,且惡心、嘔吐等不良反應發生率較低。但其具體作用效果仍存在爭議,對疼痛的緩解機制仍需研究。本研究基于膝骨性關節炎(KOA)模型,分析連續股神經阻滯對疼痛的作用機制。
選擇35只健康日本大耳白兔(浙江大學醫學院動物實驗室購買),雌雄不限,體質量2.7~3.6kg,兔齡為6個月;隨機分為7組,(分組與國際疼痛研究聯合會相關指南相符合),即空白組、模型組及實驗組(實驗1組、2組、3組、4組及5組),每組5只。
試劑:鹽酸羅哌卡因注射液(10 mL/支,醫用),白介素(IL-1)、IL-6、腫瘤壞死因素-α(TNF-α)檢測試劑盒(美國zymed公司生產,產品批號201004);鼠抗兔MMP-3抗體、TIMP-1抗體(一抗,北京博奧森生物公司);大鼠大步法檢測試劑盒(二抗試劑盒,批號K97722B,中杉金橋公司);20%木瓜蛋白酶溶液(稀釋4%處理,鄭州賀鑫生物科技有限公司);3%雙氧水;生理鹽水;DAB顯色試劑盒;高效切片石蠟(上海華永石蠟有限公司);烏拉坦、注射用青霉素鈉、利多卡因(醫用注射劑);蘇木精、酒精、福爾馬林、伊紅(上海藍季科技股份有限公司)。
設備:工作臺(成都福萊特實驗設備有限公司生產,通用型)、倒置相差顯微鏡(上海普赫光電科技有限公司生產,OLYMPUS奧林巴斯顯微鏡BX43)、醫用微波爐(美的(Midea)M3-L232F)、溫箱(上海朋聞塑料制品有限公司生產,425 mm×450 mm×420 mm)、濕盒(南通市衛寧實驗器材有限公司生產,亞克力載玻片濕盒);5 mL針筒、離心機(江蘇華鋮寶億機械有限公司生產,臥式螺旋卸料沉降)、手術器械包(上海玉研科學儀器有限公司生產,玉研牌)、高壓蒸汽消毒鍋(浙江新豐中友生產,“中友”牌消毒滅菌鍋)、石蠟切片機(輔光精密儀器(上海)有限公司生產,
型號FPMRC-MIT-45B)、無菌試管及玻片。
兔KOA模型建立,Hulth方法建立,20%烏拉坦5 mL/kg,行靜脈麻醉;于兔右側髕內側做2 cm切口,逐層切開皮下組織,充分打開關節腔,外翻髕骨,將內側副韌帶、前后交叉韌帶切斷后,內側半月板切除;關節腔沖洗干凈后,逐層縫合切口,取青霉素鈉40萬U/d肌注,連續7 d。術后傷肢無需固定,每天驅兔奔跑2次,每次30 min。模型建立8周,拍攝膝關節X線片,確定動物模型是否建立成功。
實驗5組患者在兔KOA模型建立成功后,取1%利多卡因局部麻醉,兔右下肢行股神經置管,皮下埋管于兔背,外接鎮痛泵(1 mL/h)、0.2%鹽酸羅哌卡因行連續股神經阻滯(2 mg/L),實驗1~5組阻滯1周、2周、4周、6周及8周。空白組無需使用藥物,兔實驗期間正常飼養,繼續驅兔活動30 min,觀察兔的一般行為學表現,對家兔疼痛評估表進行量化。
(1)炎性因子表達:實驗結束后,兔模型以氣栓法處死,逐層切開膝關節,滑膜液抽取,以酶聯免疫吸附法(ELISA)檢測滑膜液內IL-1、IL-6及TNF-α,具體步驟按試劑盒說明書操作;(2)組織形態學:取兔關節滑膜,10%甲醛溶液固定標本48 h,脫鈣處理,脫鈣液更換,沖洗多余固定液,過夜;室溫下以梯度乙醇脫水,二甲苯透明后,以石蠟包埋,修樣、切片,組織附著于處理后的載玻片,60 ℃恒溫烘箱烤片12 h,染色,樹膠封片,觀察形態學;(3)P物質:分別采集耳緣靜脈血2 mL,加入抗凝管內,離心10 min,轉速3 000 r/min,ELIS法測定P物質濃度。
SPSS23.0統計學軟件處理數據。計量數據采取t檢驗;計數資料采取χ2檢驗;P<0.05為差異有統計學意義。
兔KOA模型建立8周,與對照組相比,模型組及實驗組兔膝關節關節間隙縮窄,出現骨贅、腔骨平臺骨硬化,說明模型建立成功。
如表1所示,空白組大兔無明顯不適行為改變。模型組大兔出現倦怠、食欲下降、膝關節腫脹等表現,自我孤立,活動減少,患肢自殘行為加重,部分兔子呼吸困難,符合中度至重度疼痛行為。實驗5組大兔體質量下降,跛行、食欲下降、脫毛、活動減少、存在拱背行為,無明顯呼吸困難,與輕度至中度疼痛行為相符。疼痛評分以10分制計算,與空白組相比,模型組疼痛評分明顯增加(P<0.05);與模型組比較,連續股神經阻滯時間越長,疼痛評分越低(P<0.05)。

表1 不同組別KOA兔疼痛評分比較
如表2所示,模型組IL-1、IL-6及TNF-α表達均高于空白組,有統計學意義(P<0.05);與模型組相比,實驗組IL-1、IL-6及TNF-α表達明顯下降,有統計學意義(P<0.05);其中實驗3組、4組及5組下降逐漸明顯,有統計學意義(P<0.01)。
空白組大兔軟骨細胞大小相同,表面光整、平滑,排列整齊,結構清楚。模型組軟骨細胞減少,見缺損、裂隙,排列紊亂,表面局部凹凸不齊,軟骨層變薄;實驗組軟骨發黃,色澤暗淡,見纖維樣改變、變軟,滑膜及周圍組織充血增生,伴炎癥表現。

表2 不同組別炎癥因子表達(pg/mL)
如表3所示,與空白組比較,模型組、實驗組血清P物質陽性表達存在明顯差異,差異有統計學意義(P<0.05);實驗1~5組血清P物質陽性表達低于模型組,差異有統計學意義(P<0.05)。

表3 不同組別P物質陽性反應濃度表達比較
研究建立兔KOA模型,行連續股神經阻滯鎮痛,分析鎮痛機制,發現模型組及實驗組出現不同程度的疼痛反應,但連續股神經阻滯可減輕疼痛程度,顯示較好的鎮痛效果。實驗組IL-1、IL-6及TNF-α表達明顯低于模型組(P<0.05)。因此連續股神經阻滯緩解KOA兔疼痛可能是降低滑膜液內炎癥因子表達,抑制或緩解機體炎癥反應[3]。
P物質與疼痛之間的關系,主要是P物質具有傳遞傷害性信息的作用,通過外周傷害性刺激,促使脊髓背角P物質的釋放;P物質具有擴展性致敏作用,可促進傷害性感受器的活性,促進肥大細胞釋放組胺等致痛物質,形成持續性疼痛反應[4]。研究提示,連續股神經阻滯能降低P物質反應濃度,起到一定的疼痛阻滯作用。
綜上所述,連續股神經阻滯鎮痛作用,可改善滑膜軟骨組織形態學改變,減輕滑膜組織充血、水腫反應。連續股神經阻滯鎮痛機制是通過下降滑膜液內炎癥因子的表達,降低P物質反應濃度,以此減輕兔KOA疼痛程度。