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轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1信號(hào)通路對(duì)胚胎肝前體細(xì)胞分化的誘導(dǎo)作用

2020-03-26 08:12:08玉蘇甫卡迪爾麥麥提尼加提艾麥提牙森李文定吐?tīng)柛砂?/span>阿吉邵英梅
臨床肝膽病雜志 2020年3期
關(guān)鍵詞:信號(hào)

玉蘇甫卡迪爾·麥麥提尼加提, 艾麥提·牙森, 李文定, 冉 博,吐?tīng)柛砂Αぐ⒓?邵英梅, 溫 浩

1 新疆醫(yī)科大學(xué) “省部共建中亞高發(fā)病成因與防治”國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 烏魯木齊 830011;2 新疆醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院 消化血管外科中心肝膽包蟲(chóng)外科, 烏魯木齊 830054

胚胎肝前體細(xì)胞(hepatic progenitor cell,HPC)是胚胎早期從肝臟或性腺中分離出的具有增殖、自我更新和高度多向分化潛能的“萬(wàn)能”細(xì)胞,它除了具備良好的增殖能力和可塑性以外,還能夠向肝細(xì)胞和膽管細(xì)胞分化[1-3]。在胚胎發(fā)育過(guò)程中,位于肝實(shí)質(zhì)的HPC能夠分化成為肝細(xì)胞,而位于肝內(nèi)血管周圍的HPC最終分化為膽管細(xì)胞。“巧合”的是從門(mén)靜脈周圍區(qū)域到肝實(shí)質(zhì)區(qū)域TGFβ1的表達(dá)呈現(xiàn)出明顯梯度下降的變化,即門(mén)靜脈周圍區(qū)域TGFβ1表達(dá)顯著升高,而肝實(shí)質(zhì)區(qū)域TGFβ1的表達(dá)明顯降低[4],可知,TGFβ1信號(hào)通路在調(diào)控HPC的分化發(fā)育中起關(guān)鍵作用[5-6]。研究[7]顯示,TGFβ1可能通過(guò)Notch/Jaggedl信號(hào)通路激活肝星狀細(xì)胞,后者通過(guò)分泌細(xì)胞因子和生長(zhǎng)因子來(lái)促進(jìn)肝前體細(xì)胞的增殖分化。還有研究[8-9]表明,門(mén)靜脈周圍間質(zhì)細(xì)胞中的Notch/Jaggedl信號(hào)通路通過(guò)與其相鄰的肝祖細(xì)胞的Notch2受體結(jié)合后,激活肝祖細(xì)胞內(nèi)的Notch通路,最終導(dǎo)致肝祖細(xì)胞向膽管細(xì)胞分化起重要作用。目前為止,HPC分化發(fā)育的具體機(jī)制尚未清楚,而且HPC分化趨勢(shì)是否與TGFβ1信號(hào)通路的調(diào)節(jié)作用相關(guān)還沒(méi)被證實(shí)。因此,本實(shí)驗(yàn)中加入外源性的TGFβ1及TGFβ1受體抑制劑SB431542來(lái)研究TGFβ1信號(hào)對(duì)HPC分化的影響,試圖證實(shí)TGFβ1信號(hào)通路在HPC分化趨勢(shì)中的誘導(dǎo)作用及其可能機(jī)制,為HPC在臨床實(shí)踐中的應(yīng)用提供可靠的理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 細(xì)胞系 小鼠胚胎肝前體細(xì)胞株(HPC-E14.5)購(gòu)自北京北納公司BNCC細(xì)胞庫(kù)。

1.2 主要試劑 胎牛血清和DMEM培養(yǎng)基購(gòu)自于Gibco生物技術(shù)公司,TGFβ1抑制劑SB431542購(gòu)自于Tcr公司。小鼠的基因重組TGFβ1蛋白、單克隆AFP、Alb、細(xì)胞角蛋白19(cytokeratin19,CK19)和甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,GAPDH)抗體均購(gòu)自于美國(guó)santacruz公司。山羊抗小鼠和抗兔IgG二抗由Abcam公司提供。qRT-PCR引物由鑫澤寶信公司合成。預(yù)染蛋白Marker、PMSF、蛋白裂解液以及PAS試劑盒均購(gòu)自于北京中山金橋公司。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 細(xì)胞培養(yǎng)及分組 細(xì)胞分為空白對(duì)照組(HPC)、HPC+TGFβ1組和HPC+SB431542組。HPC在DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng)2~3 d后進(jìn)行傳代。首先,在無(wú)血清的培養(yǎng)基里將HPC饑餓培養(yǎng),24 h后置換為含1%青霉素-鏈霉素和15% KSR的DMEM培養(yǎng)基。隨后,分別滴加TGFβ1(8 ng/ml)或TGFβ1受體抑制劑SB431542(1 μmol/L)處理72 h。

1.3.2 細(xì)胞免疫熒光染色法鑒定HPC細(xì)胞系 將各組HPC以4×105的密度接種于96孔板培養(yǎng)24 h后,加4%多聚甲醛固定0.5 h,然后滴加0.1% Trition試劑進(jìn)行穿透,隨后,外加山羊血清,封閉1.5 h后滴加一抗(稀釋比例分別是Alb 1∶200,AFP和CK19均為1∶100),放入濕盒4 ℃孵育過(guò)夜。次日,復(fù)溫1 h后滴注適量二抗并25 ℃恒溫進(jìn)行孵育1 h。最后,DAPI染核5 min后在顯微鏡下觀察。

1.3.3 HPC的分化情況檢測(cè)

HPC中CK19為膽管細(xì)胞標(biāo)志物,Alb和AFP為成熟肝細(xì)胞標(biāo)志物。用qRT-PCR和蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)加入外源性TGFβ1和TGFβ1受體抑制劑SB431542處理72 h后CK19、Alb、AFP的mRNA和蛋白水平,進(jìn)而判斷HPC的分化情況。

1.3.3.1 qRT-PCR檢測(cè) 使用新鮮Trizole溶液提取總mRNA并將其反轉(zhuǎn)錄為cDNA(表1),隨后進(jìn)行擴(kuò)增,最后,使用2-△△CT法來(lái)計(jì)算各組目的基因中的mRNA的含量(實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次并取其平均值)。

1.3.3.2 蛋白質(zhì)印跡檢測(cè) 首先,提取總蛋白并測(cè)定其濃度且將其濃度設(shè)定為40 mg/ml。然后,將樣品與上樣緩沖液均勻混合,加熱升溫到100 ℃促使細(xì)胞內(nèi)蛋白變性后進(jìn)行電泳分離并進(jìn)行轉(zhuǎn)膜,恒速搖床上勻搖2~3 h。隨后,滴加一抗(稀釋的濃度分別是AFP 1∶1000、Alb 1∶500、CK19 1∶1000、GAPDH 1∶1000),4 ℃恒溫冰箱里孵育過(guò)夜。次日,滴注二抗并恒溫孵育1 h,經(jīng)ECL發(fā)光顯影,通過(guò)機(jī)器計(jì)算目的蛋白條帶的灰度值(實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次并取其平均值)。

1.3.4 PAS法檢測(cè)HPC分化后的功能 Dadaci等[10]證實(shí)肝臟細(xì)胞具有糖原合成和儲(chǔ)存功能,因此本實(shí)驗(yàn)中通過(guò)PAS染色檢測(cè)HPC分化后的膽管細(xì)胞或肝細(xì)胞的糖原合成功能。按照糖原染色試劑盒說(shuō)明書(shū)操作步驟,將各組標(biāo)本接種于6個(gè)孔板培養(yǎng)24 h后吸取培養(yǎng)基,用雙蒸水沖洗3次,用4%多聚甲醛固定15 min,加入5%過(guò)碘酸席夫試劑室溫染色5 min。加入適量的席夫溶液孵育15 min后,滴加蘇木精2 min對(duì)細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞外基質(zhì)進(jìn)行染色,洗去多余的蘇木精,倒置顯微鏡下觀察并采集圖像,計(jì)算糖原染色表達(dá)陽(yáng)性面積比例。

表1 qRT-PCR引物序列

2 結(jié)果

2.1 細(xì)胞免疫熒光染色法結(jié)果 顯微鏡下可見(jiàn)肝細(xì)胞標(biāo)志物AFP在細(xì)胞質(zhì)中的表達(dá)量很高,Alb和CK19只是少量表達(dá)(圖1),提示該HPC細(xì)胞株在體外尚未發(fā)生分化。

2.2 HPC分化情況檢測(cè)結(jié)果 3組間AFP、Alb、CK19 mRNA和蛋白的表達(dá)水平比較差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P值均<0.01)(表2,圖2)。提示,在外源性TGFβ1的誘導(dǎo)下HPC有著向膽管細(xì)胞分化的趨勢(shì),當(dāng)阻斷TGFβ1信號(hào)通路時(shí),HPC能夠向肝細(xì)胞分化。

2.3 HPC分化后的糖原合成及儲(chǔ)存功能 HPC組的糖原染色表達(dá)陽(yáng)性面積比例比其余2組低(P<0.05) (表2,圖3),提示TGFβ1信號(hào)通路誘導(dǎo)HPC分化后的膽管細(xì)胞和肝細(xì)胞具有正常的糖原儲(chǔ)存和合成功能,這些細(xì)胞可能能夠參與代謝活動(dòng)。

圖2WesternBlot法檢測(cè)HPC分化后目的蛋白的表達(dá)情況

注:a,HPC組;b,HPC+TGFβ1組;c,HPC+SB431542組。

圖3HPC分化后糖原染色表

達(dá)情況(×200)

圖1 HPC免疫熒光鑒定結(jié)果(×200)

表2 qRT-PCR、Western Blot和 PAS染色定量分析結(jié)果

注:與HPC組比較,1)P<0.05。

3 討論

在胚胎肝的發(fā)育中,細(xì)胞周圍微環(huán)境中的各種因子在HPC的分化過(guò)程中起關(guān)鍵作用,并且能夠誘導(dǎo)其定向分化成肝細(xì)胞或膽管細(xì)胞。相關(guān)研究[11]表明,TGFβ1信號(hào)通路能夠促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的繁殖、分化及轉(zhuǎn)移,富含有TGFβ1的腫瘤上清液或肝星狀細(xì)胞在體外可誘導(dǎo)肝星狀細(xì)胞向膽管細(xì)胞分化[12-14]。因此,TGFβ1有望成為體外誘導(dǎo)HPC產(chǎn)生大量有功能的肝細(xì)胞或膽管細(xì)胞,并用于“細(xì)胞治療”的一個(gè)理想手段。本實(shí)驗(yàn)選用小鼠HPCs-E14.5細(xì)胞株,并通過(guò)細(xì)胞免疫熒光法證實(shí)其體外尚未分化,可用于研究其增殖分化特性。TGFβ1重組蛋白和TGFβ1信號(hào)通路特異性抑制劑SB431542的作用呈現(xiàn)劑量及時(shí)間依賴性,并濃度分別在8 ng/ml、 1 μmol/L和作用時(shí)間48~72 h時(shí)發(fā)揮其最大的作用[15-16]。因此,筆者使用無(wú)血清饑餓培養(yǎng)方式來(lái)排除血清中的微量TGFβ1對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,并以TGFβ1及其抑制劑的最佳濃度刺激HPC,研究TGFβ1信號(hào)通路對(duì)HPC分化的影響。

結(jié)果顯示,加入外源性的TGFβ1培養(yǎng)72 h后,HPC中作為膽管細(xì)胞標(biāo)志物的CK19高表達(dá),而成熟肝細(xì)胞標(biāo)志物Alb和AFP表達(dá)量明顯低于其他2組,說(shuō)明TGFβ1信號(hào)可能誘導(dǎo)HPC向膽管細(xì)胞分化,而且分化后的細(xì)胞具有糖原合成及儲(chǔ)存等功能。此外,通過(guò)TGFβ1受體特異性抑制劑SB431542阻斷TGFβ1信號(hào)通路后,HPC中Alb表達(dá)量顯著增加,而CK19和AFP的表達(dá)量明顯降低。在HPC組中AFP的表達(dá)量最高,而且僅有少量細(xì)胞可合成及儲(chǔ)存糖原,提示該組中HPC仍保持干細(xì)胞特性。

因此,以上結(jié)果表明TGFβ1信號(hào)通路的激活能夠誘導(dǎo)HPC分化為有功能的膽管細(xì)胞,而抑制該通路可使HPC向肝細(xì)胞方向分化。目前,TGFβ1信號(hào)通路在HPC增殖分化中直接作用方面的相關(guān)研究尚少,該信號(hào)通路具體通過(guò)什么途徑影響HPC的分化以及是否與其他信號(hào)通路之間存在協(xié)同作用等問(wèn)題仍需要進(jìn)一步探索。本實(shí)驗(yàn)中,HPC分化成為具有類似肝臟組織結(jié)構(gòu)和功能的膽管細(xì)胞或肝細(xì)胞受TGFβ1信號(hào)通路的調(diào)控,可為后續(xù)的肝膽疾病的細(xì)胞治療和基因治療提供可靠、簡(jiǎn)便的細(xì)胞來(lái)源或理論基礎(chǔ)。

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