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基于雙同位素圖譜評估肥料類型對滴灌白菜地N2O來源的影響

2020-03-03 00:33:32李昱佳丁軍軍李玉中
農業工程學報 2020年23期

林 偉,李昱佳,王 宇,鄭 欠,莊 姍,丁軍軍,李玉中

基于雙同位素圖譜評估肥料類型對滴灌白菜地N2O來源的影響

林 偉1,2,李昱佳1,王 宇1,鄭 欠3,莊 姍3,丁軍軍3,李玉中3※

(1.中國農業科學院都市農業研究所,成都 610213;2.中國農業科學院農業環境與可持續發展研究所,農業農村部設施農業節能與廢棄物處理重點實驗室,北京 100081;3.中國農業科學院農業環境與可持續發展研究所,環境穩定同位素實驗室,北京 100081)

N2O是一種重要的溫室氣體,菜地高水高肥導致其排放量大。該研究通過解析滴灌條件下不同肥料處理對白菜地N2O排放的影響,以闡明滴灌下不同肥料處理的N2O來源,為菜地土壤N2O減排提供理論依據。設置無機復合肥(NPK)、有機肥(M)、無機水溶肥(WS)和無肥(NF)4種常見肥料處理,采用滴灌方式灌溉,收集菜地土壤排放的N2O,并利用穩定同位素技術分析N2O的同位素特征值,通過15N在N2O分子中的位置偏好值、N2O和H2O之間的凈同位素效應值搭建雙同位素圖譜,分析N2O產生途徑及其貢獻。結果表明,對于NPK、M、WS和NF處理,N2O排放通量分別為1 074、146.5、116.2和112.9g/(m2·h);NPK、M、WS處理的氮肥利用效率分別為45.1%、22%、45.2%;NPK、M、WS和NF處理下N2O主排期的硝化作用貢獻分別約為38%、46%、54%和49%,N2O主排期的N2O還原程度分別約為14%、71%、46%和70%。可見,無機水溶肥處理顯示了最高的氮素利用效率和較低的N2O排放量,且其與無機復合肥處理的N2O還原程度都相對較低不利于反硝化過程中的N2O減排;有機肥處理則有最高的N2O還原程度,是減少反硝化作用N2O產生的主要途徑。綜合考慮,該研究推薦菜地施肥時采用有機肥作為底肥,管理過程中配合水肥一體化技術,達到促進N2O還原以減少N2O排放和提高肥料氮素利用效率的效果。

同位素;肥料;N2O;減排;滴灌;有機肥

0 引 言

氧化亞氮(N2O)是三大溫室氣體之一,具有增溫潛勢高、大氣滯留時間長等特點,貢獻了約6%的溫室效應,而且能夠破壞平流層的臭氧層[1]。全球尺度上N2O呈快速增長態勢,2018年增加到331 nmol/mol。自然(60%)和人為(40%)因素是N2O的主要來源,包括海洋、土壤、生物質燃燒、肥料的使用和各種工業過程,而農業上大量施用氮肥是N2O快速增加的最主要因素[2]。在中國,蔬菜種植面積高達2.5×107hm2,相當于陸地種植總面積的12.4%[3]。蔬菜生產因水肥施用量大,導致水肥利用效率低下,及N2O排放和硝酸鹽淋溶等環境污染問題嚴重。為了改善這一情況,中國許多菜地已逐步采用滴灌技術及滴灌下的水肥一體化代替傳統的噴灌、溝灌和漫灌等灌溉方式。在滴灌系統中,水分可以被輸送到作物根系以提高水分利用效率和作物產量,而水肥一體化技術還能節約肥料的使用量,正因如此滴灌系統近年來在中國得到了廣泛地應用[4]。然而,滴灌會改變土壤的局部含水率,進而潛在地影響N2O排放。由于水肥互作的復雜性,滴灌對N2O排放的微生物過程影響尚不清楚,亟待開展全面深入的研究。

農業土壤N2O排放受多種因素的影響,如水分、氮素、溫度、pH、有效碳等。在這些因素中,水分和礦質氮是控制土壤N2O排放最主要的因素,也最容易受人為調節[5]。土壤水分含量不僅調節氣體擴散速率,而且對氮素的溶解、轉化和運移等都有重要的影響,并最終作用于土壤微生物的作用過程[6]。氮肥是土壤氮素的主要來源,也是土壤N2O排放增加的重要來源。不同的肥料形式在氮素轉化過程中存在較大差異,進而影響土壤N2O排放。近年來,國家為提升土壤質量,確保糧食穩產優產,已逐步開展有機肥替代無機肥的技術推廣。已有研究表明,土壤施用無機肥后提升了硝化作用比例,N2O排放較高;而有機肥則促進了反硝化作用,N2O排放量相對較小[7]。也有研究表明在水稻土中施加無機肥能提高反硝化作用占比[8]。可見,不同的土壤條件和水肥措施直接影響土壤N2O產生的微生物過程。針對滴灌下的不同肥料處理,研究多集中在N2O排放通量上,而很少通過查明N2O排放的微生物過程來區分N2O排放通量的不同。

在野外條件下,土壤存在較大的時空變異和復雜的微生物過程,溯源N2O排放的行為變化,尤其是區分細菌硝化作用(Bacterial Nitrification,BN)、細菌反硝化作用(Bacterial Denitrification,BD)、硝化細菌反硝化作用(Nitrifer Denitrification,ND)和真菌反硝化作用(Fungal Denitrification,FD)4種過程是十分困難的[9]。目前,最常用的區分方法有乙炔抑制法、同位素標記法,而2種方法主要用于區分硝化作用和反硝化作用,另外還存在抑制劑或標記物擴散不均等外來干擾[10-11]。最新的穩定同位素技術,N2O(Nβ-Nα-O)同位素15N位嗜值(Site Preference,SP),已經被用來作為指示多種微生物作用的非侵入性方法,且不受底物同位素影響[12]。另外,N2O其他同位素值,15NbulkN2O和18ON2O,也可以指示N2O產生的微生物作用途徑,但同時也依賴N2O前體物(NH4+,NO2-,NO3-和H2O)的同位素組成[13-15]。SP值提供的微生物過程信息,主要通過純培養試驗獲取,大量的純培養試驗已經確定了產生N2O的主要微生物作用的同位素特征值范圍[16-17]。同樣,為獲取自然條件下的相關信息,大量的土壤培育試驗也已有序開展[18-19]。Decock等[9]對純培養和土培試驗的數據作了全面的總結和評估。值得注意的是,在反硝化過程中N2O還原為N2過程會顯著影響SP、15NbulkN2O和18ON2O值,而這種影響主要取決于N2O還原程度和相關過程的凈同位素效應(產物同位素和底物同位素差值)[20-21]。在N2O完全還原的凈同位素效應已知情況下,可以結合文獻中不同微生物途徑的同位素值計算相應的N2O還原程度和微生物作用貢獻[22]。無論如何,N2O中氮和氧來源存在多個前體物且變化幅度較大,導致難以準確分析微生物作用貢獻[23]。最新的研究表明,氧的底物來源可認為只有水且同位素分餾系數變化也更小,不同微生物作用的同位素值差異也非常明顯[24]。因此,N2O和H2O之間的18O凈同位素效應值(18ON2O-H2O)和SP構建的雙同位素圖譜能更準確地分析微生物貢獻和N2O還原程度,該方法已在農田N2O溯源研究中得到了有效的應用[25-26]。

本研究采用滴灌技術并設置4種肥料處理,研究水肥互作下的菜地土壤N2O排放的微生物過程。通過提高對N2O同位素組成的時間動態的理解和對SP vs.18ON2O-H2O圖譜的運用,解析菜地土壤N2O排放的主要微生物過程作用貢獻和N2O還原程度,以明確:1)滴灌干擾下的菜地土壤N2O排放行為;2)有機肥替代化肥,及水肥一體化技術在菜地的使用效果;3)雙同位素圖譜分析方法在田間的具體應用。

1 材料與方法

1.1 研究區概況

試驗地位于北京市順義區大孫各莊鎮,中國農業科學院試驗基地(40°15' N,116°55' E)。該地區位于華北平原北部,溫帶半濕潤大陸季風氣候,年平均降水量623.5 mm,年平均氣溫12.5℃。試驗地為第2年種植白菜的潮褐土,其理化性質如下:土壤容重1.5 g/cm3,有機質15.6 g/kg,有機碳12.7 g/kg,全氮1.1 g/kg,全磷0.6 g/kg,全鉀20.4 g/kg,pH值 8.1(0.01 mol/L CaCl2浸提)。

1.2 試驗設計

試驗于2015年8月7日施肥、起壟和定植。供試的蔬菜為中國大白菜(北京青白,ssp.),供試的肥料有羊糞有機肥(有機質SOM,45%,質量分數,下同;總碳TC,18.5%;總氮TN,2%;總磷TP,1.6%;總鉀TK,1.4%)、無機復合肥(質量分數:N,15%;P2O5,15%;K2O,15%)、無機水溶肥(質量分數:N,20%;P2O5,20%;K2O5,20%)。試驗設置4個處理,包括有機肥處理(M)、無機復合肥處理(NPK,常規處理)、無機水溶肥處理(WS)和無肥對照(NF),每個處理4個重復,每個處理的小區面積為30 m×25 m。WS處理每次施氮量為10 kg/hm2(以N計,下同),原計劃通過水肥一體化技術達到總施肥量300 kg/hm2,但由于白菜生長季中后期雨水較多導致實際總施氮量為200 kg/hm2。其他處理均一次性施入底肥,施氮量均為300 kg/hm2。所有處理均選擇滴灌方式進行灌溉,總共灌溉20次,每次灌溉總量24 m3(8 mm),降水和灌溉情況見圖1。

圖1 白菜生長季內降水和灌溉情況

在2行白菜之間放置靜態氣體箱(直徑25 cm、高50 cm),并于施肥后第1天開始取樣(2015年8月8日),第1周每天取樣,第2周每隔3 d取樣,以后每1~2周取樣,取樣時間為09:00—10:00。氣體樣品采用注射器抽取箱內氣體于預抽真空的取樣瓶中(每次抽取4個周圍空氣作為空白對照),土壤樣品采用環刀和土鉆取0~20 cm表層土,帶回實驗室測量不同指標。

1.3 測定項目和方法

1.3.1 N2O排放通量及同位素

N2O濃度采用配有電子捕獲器的氣相色譜儀測定(GC,Agilent 7890A,美國),N2O排放通量則在已知濃度后參考Lin等[5]公式計算。另外,采用與預濃縮系統聯用的IRMS同位素質譜儀(Delta V Plus-Precon,Thermo Fisher Scientific,德國)測定氣體樣品和空氣中N2O(分子結構為Nβ-Nα-O)同位素特征值。N2O同位素特征值具體計算方法見式(1)~式(3)[27]:

15Nbulk=(15N+15N)/2(2)

SP=15N?15N(3)

式中表示同位素的特征值(15NbulkN2O、15NαN2O、15NβN2O、18ON2O和SP),‰;表示15N/14N和18O/16O的比率,下標sample和standard分別表示樣品和標準物,N和O國際標準物分別為大氣中的N2和維也納標準水。15NbulkN2O、15NαN2O和15NβN2O分別表示N2O中15N在整體、α位和β位水平上的同位素特征值,18ON2O表示N2O中18O在整體水平上的同位素特征值。N2O峰面積、15NbulkN2O、18ON2O和SP的分析精度分別為0.5‰、0.1‰、0.1‰和0.5‰。

1.3.2 土壤樣品指標分析

新鮮土壤樣品在105 ℃24 h條件下烘干后測定土壤含水率,并用于計算土壤孔隙含水率(Water Filled Pore Space,WFPS)。土壤NO3–和NH4+是通過100 mL 2 mol/L的氯化鉀(KCl)溶液浸提20 g新鮮土壤得到,并利用流動注射分析儀(QuikChem8000, LACHAT,美國)測定濃度。利用LI–2100 EP自動水分提取系統(北京理加聯合科技有限公司,中國)提取土壤水分,并經L115–I水蒸氣同位素分析儀(Picarro Inc.,美國)測量土壤水的18OH2O值,18OH2O的測量精度分別在0.1‰以下。

1.3.3 微生物過程貢獻計算方法

18O(N2O–H2O)vs. SP 雙同位素圖譜能夠更準確地評估N2O產生的微生物過程和N2O還原程度。該方法由Lewicka-Szczebak等[28]提出,主要用于評估細菌硝化作用/真菌反硝化作用(BN/FD)的貢獻份額()和細菌反硝化作用/硝化細菌反硝化作用(BD/ND)的貢獻份額(1-),并結合瑞麗模型[29]進一步定量了反硝化過程中N2O還原為N2的程度(F)。相關公式如下[28]:

18OSoil=18OBN/FD+(1?)18OBD/ND+18Oredln(1?F) (4)

SPSoil=SPBN/FD+(1?)SPBD/ND+SPredln(1?F)(5)

式中下標Soil、BN/FD、BD/ND和red分別表示土壤排放、細菌硝化作用/真菌反硝化作用、細菌反硝化作用/硝化細菌反硝化作用和N2O完全還原為N2。根據Lewicka-Szczebak等[28]的研究結果,18OBN/FD和SPBN/FD分別為43.6‰和34.8‰,18OBD/ND和SPBD/ND分別為21‰和?3.9‰,18Ored和SPred分別為?15‰和?5‰(表1)。因此,通過表1數據建立18O(N2O–H2O)vs. SP 圖譜,代入平均值數據得到式(6)和式(7),計算和F

18OSoil=43.6‰+21‰(1?)?15‰ln(1?F)(6)

SPSoil=34.8‰?3.9‰(1?)?5‰ln(1?F)(7)

表1 同位素圖譜分析方法中N2O四種產生途徑包含的18O凈同位素效應(η18O(N2O-H2O))和15N位嗜值(SP)對應的最小值、最大值和平均值[28]

值得注意的是,N2O樣品是土壤(soil)排放的和空氣(air)中原有的混合值(mix),需要利用式(8)進行校正[5]。當N2O混合濃度小于1.1倍的大氣中N2O濃度(air)時土壤排放同位素值將不會被使用(此研究中Cmix<385 nmol/mol,即8月27日及之前數據(前20天)可用,這些天也稱N2O主要排放階段)。

Soil=(mixmix+airair)/(mix?air)(8)

式中和分別表示N2O的同位素特征值值(‰)和濃度(nmol/mol)。

1.3.4 數據處理和分析

利用Office 2019對數據進行前處理,采用SigmaPlot 12.5作圖分析,并運行IBM SPSS Statistics 20進行統計分析和單因素方差分析及最小顯著差異法(Least Significant Difference,LSD)法比較處理間的顯著差異。

2 結果與分析

2.1 氮素及水分含量變化

銨態氮(NH4+)含量只有在NPK處理中呈現明顯先升后降的趨勢(圖2a),并在第2天達到最高值47.0 mg/kg;其他處理在試驗階段均無明顯變化,含量在0.7~3.9 mg/kg。所有取樣日期加權平均值的單因素方差顯示,僅NPK處理的NH4+含量顯著高于其他處理(<0.05,表2)。硝態氮(NO3-)含量在各處理上都呈現出先升后降的趨勢(圖2b),NPK、M、WS和NF處理分別在第6、3、5和8天達到最大值,依次為77.5、22.3、18.3和9.3 mg/kg。所有取樣日期加權平均值的單因素方差分析顯示,僅NPK處理的NO3-含量顯著高于其他處理(<0.05,表2)。N2O排放通量在所有處理中均呈下降趨勢(圖2c),NPK、M、WS和NF處理均在第1天達到最大值,分別為26.6、3.2、0.6、0.8 mg/(m2·h)。所有取樣日期加權平均值的單因素方差分析顯示,NPK處理(1 074±242.2g/(m2·h))的N2O排放通量顯著高于M(146.5±34.4g/(m2·h))、WS(116.2±32.8g/(m2·h))和NF(112.9±26.5g/(m2·h))處理(<0.05,表2)。土壤水分則呈波動性變化(圖2d),所有處理都在40%~80%之間。土壤水分在前20天(N2O主要排放階段,以下簡稱N2O主排期)和整個取樣期間的單因素方差分析顯示,各處理間并無顯著差異,但是NPK和NF處理WFPS的加權平均值要大于其他處理,前20天中NPK處理平均值最高,整個取樣期NF處理加權平均值最高。另外,相關分析表明N2O排放通量與NH4+和NO3-顯著正相關(<0.01),而與WFPS沒有表現顯著相關性(表2)。

注:NPK,無機肥;M,有機肥;WS,水溶肥;NF,無肥。下同。

表2 白菜產量及其生長期內N2O排放通量、NH4+含量、NO3-含量、WFPS和C/N的加權平均值

注:同列不同小寫字母之間表示不同處理間顯著性差異(<0.05),下同。

Note: Different lowercase letters at same column indicate significant differences (<0.05) among treatment and the same below.

表3 SP和N2O與其他指標之間的皮爾遜相關系數

注:*,<0.05;**,<0.01;nc表示沒有計算。

Note:*,<0.05;**,<0.01; nc indicate no calculation.

2.2 N2O主排期的同位素變化

土壤排放的N2O有效同位素值經計算只能取8月27日及之前數據(前20天,N2O主排期),校正同位素如圖3所示,各處理均有一定的波動。15Nbulk值在M、WS和NF處理中有較高值,分別在?12.6‰~?2.1‰、?9.4‰~?1.4‰和?8.7‰~?0.3‰之間,而在NPK處理中有較低值在?47.8‰~23.2‰且呈隨時間呈上升趨勢。單因素方差分析顯示,僅NPK處理的15NbulkN2O值顯著低于其他處理(<0.05,表4)。18ON2O值在NPK、M、WS和NF處理間差異較大,分別在19.9‰~30.2‰、37.7‰~40.0‰、27.1‰~37.0‰和36.2‰~42.9‰之間。方差分析顯示,WS處理的18ON2O值顯著低于M和NF處理,顯著高于NPK處理(<0.05,表4)。SP值的波動較大,NPK、M、WS和NF處理中分別在9.8‰~18.1‰、13.2‰~28.5‰、13.1‰~27.8‰和15.1‰~35.3‰之間。單因素方差顯示,僅NPK處理的SP值顯著低于其他處理(<0.05,表4)。相關分析表明SP與15NbulkN2O和18ON2O均表現顯著正相關(<0.01),與N2O排放通量(<0.01)和WFPS(<0.05)則呈顯著負相關關系(前20天數據比較,表3)。

圖3 不同肥料處理下δ15NN2O、δ18ON2O和SP的動態變化

表4 白菜生長的前20天δ15N、δ18O、SP和WFPS的加權平均值及相應的BN/FD貢獻份額(x)和N2O還原程度(Fr)

2.3 N2O主排期的微生物作用過程貢獻

根據Lewicka-Szczebak等[28]構建雙同位素圖譜方法,結合測量的土壤水18OH2O值(11.0‰±0.2‰,樣本數12,18OH2O與肥料處理和時間都無顯著關系),構建18O(N2O–H2O)vs. SP雙同位素圖譜如圖4所示。NPK處理的樣品同位素值均落在混合區域內,并更接近BD和ND區域;WS處理的樣品同位素值大部分落在混合區域內和少部分落在BN和FD重疊區域。M處理的樣品同位素值大部分落在混合區域外,少部分落在混合區域內;NF處理的樣品同位素值則分布在BN區域內、混合區域內和混合區域外等3個區域。樣品同位素值落在混合區域外與N2O發生還原有關,因此直接觀察的結果有一定的偏差。為此,采用式(5)和式(6)對各處理的均值進行校正和定量分析,結果顯示NPK、M、WS和NF處理中的BN/FD貢獻分別約為38%、46%、54%和49%;N2O還原程度(F)分別約為14%、71%、46%和70%(表4)。可見,NPK處理的BN/FD貢獻和N2O還原程度均最低,WS處理的BN/FD貢獻最高和M處理N2O還原程度最高。

圖4 18O凈同位素效應值(η18ON2O-H2O)vs. SP方法分析產生N2O的BN、FD、BD和ND圖解

2.4 白菜產量和C/N比率及氮素利用效率

不同肥料處理的白菜產量和C/N比率結果如表2所示。在白菜產量上,單因素方差分析顯示M(116.5 t/hm2)和WS(127.5 t/hm2)處理顯著低于NPK(147.9 t/hm2)處理和顯著高于NF(86.4 t/hm2)處理(<0.05,表2);在C/N比率上,單因素方差分析顯示僅NPK處理(C/N為1.2)顯著低于WS(C/N為3.3)和NF(C/N為3.5)處理(<0.05),而M處理的C/N比率(2.6)則介于其他3個處理之間(表2)。

由于無機水溶肥處理施肥量顯著低于其他處理,因此采用氮素利用效率(Nitrogen Use Efficiency,NUE)對比處理間的差異。肥料的NUE可以利用簡單的公式進行計算,即NUE=(n-0)/FN,n和0分別為肥料處理和未施肥處理的白菜含氮量(%),FN為肥料處理施用的氮素總量。一般情況下,1 t的大白菜含氮量為2.2 kg。基于此,計算NPK、M和WS的NUE分別為45.1%、22%和45.2%。

3 討 論

3.1 影響N2O排放的因子

施肥后N2O排放量在各處理中總體呈下降趨勢,這與以往研究基本相同[30],其中NPK處理顯著高于其他處理(<0.05)。一般而言NH4+和NO3-等底物濃度是決定N2O排放的主要因子,在本研究中NH4+和NO3-含量均表現為NPK處理顯著高于其他處理(<0.05),表明N2O排放量與不同肥料提供給土壤的NH4+和NO3-含量多少有關。相關分析顯示N2O排放與NH4+和NO3-含量呈極顯著正相關關系(<0.01),其中與NH4+的相關系數更高且變化趨勢基本相同,進一步表明在本研究中NH4+是N2O排放的決定因子。而NO3-含量呈先上升后下降的趨勢,這與NH4+向NO3-的轉變有關。因此本研究中N2O的產生主要是由NH4+觸發的兩段式排放,即硝化作用和反硝化作用都可能占主導作用。而土壤水分含量是決定微生物過程的重要因子,一般認為WFPS在60%以下N2O產生以硝化作用為主,反之則以反硝化作用為主[31],而本研究中WFPS與N2O排放沒有顯著相關關系,WFPS的變化范圍也在40%~80%之間浮動,因此利用底物濃度和水分含量的變化很難界定N2O產生的微生物過程。另外,相比NF處理,3種肥料處理的C/N比率均有所下降,其中NPK處理顯著低于其他處理,這種差異主要源于NKP處理提供了大量氮素卻沒有提供碳素有關。而C/N比率能夠影響反硝化作用中的N2O還原進程,C/N比率越低N2O還原程度越低[32],因此NPK處理可能有最低N2O還原程度。肥料對N2O產生的微生物過程影響也會表現在白菜產量上,白菜通過對NH4+和NO3-的吸收進一步提高產能,NPK處理也因此表現出最高的產量。M處理則因存在較高的C/N比率加強了對氮素的固定而降低其氮素利用效率和產量[33],因此單施有機肥不利于作物對養分的吸收。WS處理NH4+和NO3-整體含量低于NPK處理,然而氮素利用效率卻最高。雖然施肥量也會影響氮素利用效率[34],但一般認為滴灌下水肥一體化技術能夠在一定程度上提高白菜對氮素的吸收效率。

3.2 不同處理間N2O同位素特征值差異分析

N2O同位素特征值對辨析N2O來源具有重要作用,其中15NbulkN2O和18ON2O取決于N2O前體物同位素組成和氮素轉化過程造成的同位素分餾[21]。本研究中NPK處理的15NbulkN2O、18ON2O和SP值均顯著低于其他處理(<0.05),一般認為無機肥的15N值與有機肥和土壤自身的15N值相比要小的多,但WS和NPK處理同屬無機肥卻表現較大差異,可見2種肥料處理在氮素轉化過程中同位素分餾的不同是造成這一現象的主要原因,而NPK處理與M和NF處理間的差異則是兩種原因綜合作用的結果。N2O中O的來源一般認為只有H2O[35],因此18ON2O值在4種處理中的顯著差異主要來自同位素分餾,即氮素轉化過程中4種處理觸發的微生物過程存在差異。SP作為區分氮素轉化過程的有效手段,能夠不受N2O前體物的影響,其值越高硝化作用越強,反之則反硝化作用強[36]。在N2O主排期,NPK處理的SP值最低因而可能存在最低的硝化作用,M、WS和NF處理的SP值都比較接近且較高因而硝化作用可能較強。相關分析也表明SP值與15NbulkN2O和18ON2O值(與微生物過程相關的N2O同位素值)之間都顯示出正相關關系,且與N2O排放量和WFPS都顯示負相關關系,可見SP值與N2O排放及其產生過程密切相關。盡管SP值與18ON2O值都能直接反映不同微生物過程的發生情況,但是WS處理與M和NF處理之間的SP值并未像18ON2O值一樣展現顯著差異,這可能是不同處理的N2O還原為N2程度存在差異,研究表明反硝化作用確定的同位素值是基于其終產物為N2O,而N2O進一步還原為N2能夠顯著增加N2O分子中15NbulkN2O、18ON2O和SP值[21, 28]。因此,在利用N2O同位素分析微生物過程貢獻時,不能忽略反硝化過程中的N2O還原效應。

3.3 微生物過程貢獻的雙同位素圖譜分析

土壤中可能同時存在多種微生物的產生途徑,因此確定N2O復雜來源是十分困難的[37-38]。近年來,N2O同位素特征值尤其是SP已被應用于解析包括BN、FD、BD和ND[22, 36]。為了校正反硝化作用中N2O還原對N2O同位素值和微生物過程貢獻分析的影響,有研究采用雙同位素圖譜(15NbulkN2Ovs. SP和18O(N2O–H2O)vs. SP)解析相應的貢獻[25, 39]。N2O中氮的來源有NH4+、NO3-和NO2-等多種前體物,而前體物的15N可能存在較大變異;氧的來源被認為只有H2O,其18O值較為穩定,因此最近研究建議采用18O(N2O–H2O)vs. SP構建的雙同位素圖譜校正反硝化作用中N2O還原的影響和定量微生物作用貢獻[26, 28]。盡管該方法可能因為同位素值的變化和N2O還原發生情況的不同存在一定不確定性[40],但目前仍為最有效的分析方法。本研究基于Lewicka-Szczebak 等[28]提出的模型構建18O(N2O–H2O)vs. SP 圖譜進行研究,其中BN與FD或BD與ND之間很難進行區分,結果表明4種處理中NPK處理有最低BN/FD(硝化作用)貢獻和最低N2O還原程度,WS處理有最高的BN/FD(硝化作用)貢獻和較低N2O還原程度。無論如何,大多數研究均表明與施用有機肥和不施肥的土壤相比,無機肥處理的土壤硝化作用更強,而N2O還原程度則更低[7, 36]。可見,WS處理與多數研究的結果相同,而NPK處理的硝化作用沒有顯示這一現象,主要與NPK處理水分含量明顯高于其他處理有關(表2)。在本研究中,NPK處理由于所處地勢較低,且其與NF處理均位于滴灌主管路的中間位置,導致其在滴灌過程中含水率明顯高于其他處理。水分含量是控制微生物過程的主要因子之一,硝化作用在一定范圍內隨水分含量的增加而減小[41]。因此,對于NPK處理而言,水分含量對硝化作用的影響要強于肥料效應。研究表明N2O還原程度取決于土壤C/N比率,C/N比率的下降會降低N2O還原程度[32],這一點在NPK處理上表現最為明顯,主要與NPK提供了大量的氮卻缺乏碳的輸入有關。NPK處理的微生物在進行氮素轉化過程中,土壤有機碳作為N2O還原的電子受體由于相對匱乏制約了N2O的進一步還原[42]。M處理相對NF處理的C/N比率無顯著差異,其提供了可利用的有機碳較為豐富,能在一定情況下為N2O進一步還原提供支撐,也是其N2O還原程度最高和排放量最低的主要原因。Zhang等[43]研究也表明有機肥能夠顯著降低凈全球升溫潛能和溫室氣體強度,因此適量施用有機肥對N2O減排具有重要意義。

4 結 論

本研究采用18O凈同位素效應(18O(N2O–H2O)) vs.15N位嗜值雙同位素圖譜分析在滴灌下不同肥料處理對蔬地N2O來源的影響。結果表明:無機復合肥、有機肥、無機水溶肥和無肥處理,N2O排放通量分別為1 074、146.5、116.2和112.9g/(m2·h);無機復合肥、有機肥和無機水溶肥處理的氮肥利用效率分別為45.1%、22%、45.2%。綜合N2O排放量、氮素利用效率等各項綜合指標分析,發現無機復合肥處理有較高的氮素利用效率,但同時N2O排放也最高,無機水溶肥處理則顯示最高的氮素利用效率和較低的N2O排放量,然而2種無機肥處理在N2O主排期的N2O還原程度都相對較低,不利于反硝化過程中的N2O減排,其中無機水溶肥處理N2O排放相對較低可能主要與N2O產生過程以硝化作用為主有關。相比其他處理,有機肥處理在N2O主排期有最高的N2O還原程度,是減少反硝化作用N2O產生的主要途徑。盡管有機肥氮素利用效率低,但是其在改良土壤結構和蔬菜品質上有著重要作用,且N2O排放量小。因此,本研究認為菜地施肥可以采用有機肥作為底肥,管理過程中配合水肥一體化技術及時補充蔬菜生產各階段所需的養分和水分,既能保證蔬菜產量也能減少N2O排放。

[1]Pachauri R K, Allen M R, Barros V R, et al. IPCC[M]. Cambridge and New York: Cambridge University Press, 2014.

[2]World Meteorological Organization. The state of greenhouse gases in the atmosphere based on global observations through 2018[J]. WMO Greenhouse Gas Bulletin (GHG Bulletin), 2019, 15: 1-7.

[3]Li B, Bi Z, Xiong Z. Dynamic responses of nitrous oxide emission and nitrogen use efficiency to nitrogen and biochar amendment in an intensified vegetable field in Southeastern China[J]. Gcb Bioenergy, 2017, 9(2): 400-413.

[4]齊玉春,郭樹芳,董云社,等. 灌溉對農田溫室效應貢獻及土壤碳儲量影響研究進展[J]. 中國農業科學,2014,47(9):1764-1773.

Qi Yuchun, Guo Shufang, Dong Yushe, et al. Advances in research on the effects of irrigation on the greenhouse gases emission and soil carbon sequestration in agro-ecosystem[J]. Scientia Agricultura Sinica, 2014, 47(9): 1764-1773. (in Chinese with English abstract)

[5]Lin W, Ding J, Xu C, et al. Evaluation of N2O sources after fertilizers application in vegetable soil by dual isotopocule plots approach[J]. Environ Res, 2020, 188:109818. https://doi.org/10.1016/j.envres.2020.109818.

[6]Ding J, Fang F, Lin W, et al. N2O emissions and source partitioning using stable isotopes under furrow and drip irrigation in vegetable field of North China[J]. Sci Total Environ, 2019, 665: 709-717.

[7]林偉,丁軍軍,李玉中,等. 有機肥和無機肥對菜地土壤 N2O 排放及其來源的影響[J]. 應用生態學報,2018,29(5):1470-1478.

Lin Wei, Ding Junjun, Li Yuzhong, et al. Effects of organic and inorganic fertilizers on emission and sources of N2O in vegetable soils[J]. Chinese Journal of Applied Ecology, 2018, 29(5): 1470-1478. (in Chinese with English abstract).

[8]李勇先. 稻田土壤中氧化亞氮的釋放機制及控制[D]. 杭州:浙江大學,2003.

Li Yongxian. Mechanism of N2O Emission and Its Control in Paddy Soils[D]. Hangzhou: Zhejiang University, 2003. (in Chinese with English abstract).

[9]Decock C, Six J. How reliable is the intramolecular distribution of15N in N2O to source partition N2O emitted from soil[J]. Soil Biol Biochem, 2013, 65: 114-127.

[10]Liu R, Hayden H L, Hu H, et al. Effects of the nitrification inhibitor acetylene on nitrous oxide emissions and ammonia-oxidizing microorganisms of different agricultural soils under laboratory incubation conditions[J]. Appl Soil Ecol, 2017, 119: 80-90.

[11]Scheer C, Meier R, Brüggemann N, et al. An improved15N tracer approach to study denitrification and nitrogen turnover in soil incubations[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2016, 30(18): 2017-2026.

[12]Toyoda S, Yoshida N, Koba K. Isotopocule analysis of biologically produced nitrous oxide in various environments[J]. Mass Spectrom Rev, 2017, 36(2): 135-160.

[13]Pérez T, Trumbore S E, Tyler S C, et al. Identifying the agricultural imprint on the global N2O budget using stable isotopes[J]. Journal of Geophysical Research: Atmospheres, 2001, 106(D9): 9869-9878.

[14]Yamulki S, Toyoda S, Yoshida N, et al. Diurnal fluxes and the isotopomer ratios of N2O in a temperate grassland following urine amendment[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2001, 15(15): 1263-1269.

[15]Bol R, Toyoda S, Yamulki S, et al. Dual isotope and isotopomer ratios of N2O emitted from a temperate grassland soil after fertiliser application[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2003, 17(22): 2550-2556.

[16]Sutka R L, Ostrom N E, Ostrom P H, et al. Distinguishing nitrous oxide production from nitrification and denitrification on the basis of isotopomer abundances[J]. Appl Environ Microbiol, 2006, 72(1): 638-644.

[17]Rohe L, Anderson T H, Braker G, et al. Dual isotope and isotopomer signatures of nitrous oxide from fungal denitrification-A pure culture study[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2014, 28(17): 1893-1903.

[18]Duan P, Zhang Q, Zhang X, et al. Mechanisms of mitigating nitrous oxide emissions from vegetable soil varied with manure, biochar and nitrification inhibitors[J]. Agr Forest Meteorol, 2019, 278: 107672. https://doi.org/10.1016/j.agrformet. 2019.107672

[19]Lin W, Ding J, Li Y, et al. Determination of N2O reduction to N2from manure-amended soil based on isotopocule mapping and acetylene inhibition[J]. Atmos Environ, 2020: 117913. https://doi.org/10.1016/j.atmosenv.2020.117913

[20]Park S, Pérez T, Boering K A, et al. Can N2O stable isotopes and isotopomers be useful tools to characterize sources and microbial pathways of N2O production and consumption in tropical soils[J]? Global Biogeochem Cy, 2011, 25(1): GB1001. https://doi.org/10.1029/2009GB003615

[21]Ostrom N E, Pitt A, Sutka R, et al. Isotopologue effects during N2O reduction in soils and in pure cultures of denitrifiers[J/OL]. Journal of Geophysical Research: Biogeosciences, 2007, 112: G02005. https://doi.org/10.1029/ 2006JG000287

[22]Zou Y, Hirono Y, Yanai Y, et al. Isotopomer analysis of nitrous oxide accumulated in soil cultivated with tea () in Shizuoka, central Japan[J]. Soil Biol Biochem, 2014, 77: 276-291.

[23]Lewicka Szczebak D, Well R, Bol R, et al. Isotope fractionation factors controlling isotopocule signatures of soil-emitted N2O produced by denitrification processes of various rates[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2015, 29(3): 269-282.

[24]Lewicka-Szczebak D, Dyckmans J, Kaiser J, et al. Oxygen isotope fractionation during N2O production by soil denitrification[J]. Biogeosciences, 2016, 13(4): 1129-1144.

[25]Ibraim E, Wolf B, Harris E, et al. Attribution of N2O sources in a grassland soil with laser spectroscopy based isotopocule analysis[J]. Biogeosciences, 2019, 16(16): 3247-3266.

[26]Buchen C, Lewicka Szczebak D, Flessa H, et al. Estimating N2O processes during grassland renewal and grassland conversion to maize cropping using N2O isotopocules[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2018, 32(13): 1053-1067.

[27]Toyoda S, Yoshida N. Determination of nitrogen isotopomers of nitrous oxide on a modified isotope ratio mass spectrometer[J]. Anal Chem, 1999, 71(20): 4711-4718.

[28]Lewicka-Szczebak D, Augustin J, Giesemann A, et al. Quantifying N2O reduction to N2based on N2O isotopocules-validation with independent methods (helium incubation and15N gas flux method)[J]. Biogeosciences, 2017, 14(3): 711-732.

[29]Mariotti A, Germon J C, Hubert P, et al. Experimental determination of nitrogen kinetic isotope fractionation: some principles; illustration for the denitrification and nitrification processes[J]. Plant Soil, 1981, 62(3): 413-430.

[30]林偉,張薇,李玉中,等. 有機肥與無機肥配施對菜地土壤N2O排放及其來源的影響[J]. 農業工程學報,2016,32(19):148-153.

Lin Wei, Zhang Wei, Li Yuzhong, et al. Effects of combined application of manure and inorganic fertilizer on nitrous oxide emissions and sources in vegetable soils[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2016, 32(19): 148-153. (in Chinese with English abstract)

[31]Ruser R, Flessa H, Russow R, et al. Emission of N2O, N2and CO2from soil fertilized with nitrate: Effect of compaction, soil moisture and rewetting[J]. Soil Biol Biochem, 2006, 38(2): 263-274.

[32]Weymann D, Geistlinger H, Well R, et al. Kinetics of N2O production and reduction in a nitrate-contaminated aquifer inferred from laboratory incubation experiments[J]. Biogeosciences, 2010, 7(6): 1953-1972.

[33]Zhou J, Li B, Xia L, et al. Organic-substitute strategies reduced carbon and reactive nitrogen footprints and gained net ecosystem economic benefit for intensive vegetable production[J]. J Clean Prod, 2019, 225: 984-994.

[34]Chen H, Zhou J, Li B, et al. Yield-scaled N2O emissions as affected by nitrification inhibitor and overdose fertilization under an intensively managed vegetable field: A three-year field study[J]. Atmos Environ, 2019, 206: 247-257.

[35]Kool D M, Wrage N, Oenema O, et al. Oxygen exchange between (de) nitrification intermediates and H2O and its implications for source determination of NO and N2O: A review[J]. Rapid Commun Mass Sp, 2007, 21(22): 3569-3578.

[36]Toyoda S, Yano M, Nishimura S I, et al. Characterization and production and consumption processes of N2O emitted from temperate agricultural soils determined via isotopomer ratio analysis[J]. Global Biogeochem Cy, 2011, 25(2): GB2008. https://doi.org/10.1029/2009GB003769

[37]Hayatsu M, Tago K, Saito M. Various players in the nitrogen cycle: Diversity and functions of the microorganisms involved in nitrification and denitrification[J]. Soil Sci Plant Nutr, 2008, 54(1): 33-45.

[38]Hénault C, Grossel A, Mary B, et al. Nitrous oxide emission by agricultural soils: A review of spatial and temporal variability for mitigation[J]. Pedosphere, 2012, 22(4): 426-433.

[39]Wei J, Ibraim E, Brüggemann N, et al. First real-time isotopic characterisation of N2O from chemodenitrification[J]. Geochim Cosmochim Ac, 2019, 267: 17-32.

[40]Wu D, Well R, Cardenas L M, et al. Quantifying N2O reduction to N2during denitrification in soils via isotopic mapping approach: Model evaluation and uncertainty analysis[J]. Environ Res, 2019, 179:108806. https://doi.org/10.1016/j.envres.2019.108806

[41]Lin W, Ding J, Li Y, et al. Partitioning of sources of N2O from soil treated with different types of fertilizers by the acetylene inhibition method and stable isotope analysis[J]. Eur J Soil Sci, 2019, 70(5): 1037-1048.

[42]Saggar S, Jha N, Deslippe J, et al. Denitrification and N2O: N2production in temperate grasslands: Processes, measurements, modelling and mitigating negative impacts[J]. Sci Total Environ, 2013, 465: 173-195.

[43]Zhang M, Li B, Xiong Z Q. Effects of organic fertilizer on net global warming potential under an intensively managed, vegetable field in southeastern China: A three-year field study[J]. Atmos Environ, 2016, 145: 92-103.

Evaluation of N2O sources from Chinese cabbage fields affected by fertilizer types under drip irrigation based on dual isotopocule plot method

Lin Wei1,2, Li Yujia1, Wang Yu1, Zheng Qian3, Zhuang Shan3, Ding Junjun3, Li Yuzhong3※

(1.610213,; 2100081,; 3100081,)

Nitrous oxide (N2O) is an important greenhouse gas. High input of water and fertilizer in vegetable production results in large N2O emission. Though drip irrigation is the most commonly used irrigation method in vegetable production, it is still unclear how water and fertilizer interaction under drip irrigation affects N2O emission. Therefore, the objective of this study was to analyze the effects of different fertilizer treatments under drip irrigation on N2O emission and isotopic signatures, and thus provide a theoretical support for reducing N2O emission in vegetable production mainly driven by microbial activity that included Bacterial Nitrification (BN), Bacterial Denitrification (BD), Nitrifier Denitrification (ND), Fungal Denitrification (FD) and N2O reduction to N2. The study was conducted in at the environmental research station of the Chinese Academy of Agricultural Sciences, situated in the Shunyi District, Beijing, China (40°15′N, 116°55′E). The soil of the experiment field was classified as calcareous fluvo–aquic. The Chinese cabbage was sown on 7 August 2015. Under drip irrigation, four fertilizer treatments were evaluated, including inorganic NPK compound fertilizer (NPK), organic fertilizer of sheep manure (M), water-soluble fertilizer of amino acid (WS), and no-fertilizer (NF). Gas and soil samples were collected throughout the study phase. The concentration and isotopic signature values (15NbulkN2Oand18ON2Oof N2O), ammonium (NH4+) and nitrate (NO3-) content of soil, soil C/N, and yield of Chinese cabbage were analyzed. Net isotope effect between N2O and H2O and15N site preference in N2O molecule (SP) were also analyzed and used to distinguish BN/FD and BD/ND and to calculate the extent of N2O reduction to N2. The results showed that the SP had significant positive correlation with both15NbulkN2Oand18ON2O(<0.01), and significant negative correlation with N2O emission fluxes (<0.01) and Water Filled Pore Space (WFPS,<0.05). It indicated that using SP vs.18ON2Oto quantitatively analyze production and consumption pathways of N2O was feasible and water content significantly affected the activity of soil microorganisms.Under approximately 60% WFPS condition, for the NPK, M, WS and NF treatments, the N2O emission were 1 074, 146.5, 116.2 and 112.9g/(m2·h), respectively. The Nitrogen Use Efficiency (NUE) of the NPK, M and WS were 45.1%, 22% and 45.2%, respectively. The yield of Chinese cabbage of the NPK, M, WS and NF were 147.9, 116.5, 127.5and 86.4 t/hm2, respectively, and the contribution of nitrification were 38%, 46%, 54% and 49%, respectively, and the extent of N2O reduction were 14%, 71% 46%, and 70%, respectively. The water-soluble fertilizer treatment showed the highest NUE and relatively low N2O emission, and both inorganic fertilizer treatments showed the low extent of N2O reduction, which was unfavorable for reducing N2O emission during denitrification. In contrast, organic fertilizer treatment had the highest the extent of N2O reduction, which was the main pathway to reduce N2O emission during denitrification. Therefore, this study suggests that organic fertilizer may be used as the base fertilizer with water and fertilizer integration technology as a management practice during the growing season for reducing N2O emission and enhancing NUE.

isotopes; fertilizers; N2O; emission reduction; drip irrigation; organic fertilizer

林偉,李昱佳,王宇,等. 基于雙同位素圖譜評估肥料類型對滴灌白菜地N2O來源的影響[J]. 農業工程學報,2020,36(23):109-116.doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2020.23.013 http://www.tcsae.org

Lin Wei, Li Yujia, Wang Yu, et al. Evaluation of N2O sources from Chinese cabbage fields affected by fertilizer types under drip irrigation based on dual isotopocule plot method[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2020, 36(23): 109-116. (in Chinese with English abstract) doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2020.23.013 http://www.tcsae.org

2020-07-17

2020-10-11

國家自然科學基金(41473004,41701308);中國農業科學院科技創新工程(ASTIP-CAAS);國家成都農業科技中心地方財政專項(NASC2020AR09)

林偉,助理研究員,主要從事農業氮素循環研究。Email:linwei01@caas.cn

李玉中,研究員,主要從事農業氮素循環研究。Email:liyuzhong@caas.cn

10.11975/j.issn.1002-6819.2020.23.013

TQ126.2+4;S162.4+3

A

1002-6819(2020)-23-0109-08

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