大倉鼠消化系統中酶的分布研究

徐春雨　金建麗　于成文　張雋勝　邢嚴　金志民

摘要：用聚丙烯酰胺凝膠垂直板電泳的方法對大倉鼠（Cricetulus triton）消化系統中的SOD、EST和AMY 3種酶的酶譜進行分析。結果表明，大倉鼠消化系統中共分離出SOD1～SOD11、電泳遷移率0.909～0.023的11條譜帶;共分離出EST1～EST12、電泳遷移率0.742～0.188的12條譜帶;共分離出AMY1～AMY8、電泳遷移率0.564～0.154的8條譜帶。大倉鼠消化系統中SOD、EST和AMY 3種酶均有表達，組織內和組織間譜帶的表達強度和活性均有差異，并存在明顯的組織特異性。

關鍵詞：大倉鼠（Cricetulus triton）;SOD;EST;AMY;電泳;譜帶

中圖分類號：S443.3;Q55? ? ? ? ?文獻標識碼：A

文章編號：0439-8114（2019）22-0152-03

DOI：10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2019.22.036? ? ? ? ? ?開放科學（資源服務）標識碼（OSID）：

Study on distribution of enzymes in the digestive system of Cricetulus triton

XU Chun-yu1，JIN Jian-li1，YU Cheng-wen1，ZHANG Jun-sheng1，XING Yan2，JIN Zhi-min1

（1.Mudanjiang Normal College，Mudanjiang 157011，Heilongjiang，China;2.Mudanjiang No.2 Middle School，Mudanjiang 157012，Heilongjiang，China）

Abstract： To provide basic research data for big hamster（Cricetulus triton） experimental animal research and pest control. The enzyme profiles of SOD， EST and AMY in digestive system of hamster were analyzed by means of polyacrylamide gel vertical plate electrophoresis. Results showed that eleven bands of SOD1～SOD11 and electrophoretic mobility of 0.909～0.023 were isolated from the digestive system of hamsters;twelve bands of EST1～EST12 and electrophoretic mobility of 0.742～0.188 were isolated.eight spectral bands of EST1～EST11 and electrophoretic mobility of 0.564～0.154 were isolated. The three enzymes SOD， EST and AMY were expressed in the digestive system of hamster， and the expression intensity and activity of tissue and intertissue bands were different， with obvious tissue specificity.

Key words： big hamster（Cricetulus triton）; SOD; EST; AMY; electrophoresis; band

大倉鼠（Cricetulus triton），屬倉鼠科倉鼠屬，是中國華北平原旱作區農田主要害鼠之一[1]。研究消化酶的分布是探究動物攝食、消化吸收營養物質的基礎，其活性強弱決定機體對營養物質消化的能力，從而影響機體的發育[2-5]。關于大倉鼠已有較多研究報道[6，7]，但是對于大倉鼠消化系統中酶的分布研究未見報道。本研究采用聚丙烯酰胺凝膠垂直板電泳方法，對大倉鼠胃、小腸、大腸和肝臟4種組織中SOD、EST和AMY 3種酶的活性及分布進行研究，為大倉鼠實驗動物化研究及害鼠防治提供依據。

1? 材料與方法

1.1? 材料

大倉鼠：2018年10月中旬至11月初捕于牡丹江三道關林場。

1.2? 方法

1.2.1? 樣品制備? 將大倉鼠胃、大腸、小腸、肝臟4種組織與磷酸緩沖液（m∶V=1∶10）進行混合研磨制成勻漿，然后在4 ℃、8 000 r/min的條件下離心20 min，留上清液4 ℃保存，待測。

1.2.2? 電泳方法? 采用常規聚丙烯酰胺凝膠垂直板電泳方法將大倉鼠胃、大腸、小腸、肝臟4種組織中SOD、EST、AMY進行分離分析。

1.2.3? 染色方法? SOD、EST、AMY 3種酶的染色參照文獻[8]。

2? 結果與分析

2.1? SOD電泳結果分析

大倉鼠4種組織SOD電泳譜帶分布及電泳遷移率見表1、圖1。由表1、圖1可知，大倉鼠胃、小腸、大腸、肝臟4種組織共分離出SOD1～SOD11。胃分離出SOD2、SOD5～SOD7，遷移率分別為0.884、0.379～0.265的4條譜帶;小腸分離出SOD2、SOD5～SOD8、SOD10～SOD11，遷移率分別為0.884、0.379～0.091、0.030～0.023的7條譜帶;大腸分離出SOD1、SOD5～SOD8、SOD10～SOD11，遷移率分別為0.909、0.379～0.091、0.030～0.023的7條譜帶;肝臟分離出SOD2～SOD9，遷移率分別為0.884～0.038的8條譜帶。

大倉鼠4種組織之間SOD酶活性表達強度為肝臟>大腸>小腸>胃，其中SOD5～SOD7為共有譜帶，遷移率0.379～0.265，肝臟表達活性最強。SOD1為大腸的特有譜帶，遷移率0.909;SOD9為肝臟的特有譜帶，遷移率0.038。

2.2? EST電泳結果分析

大倉鼠4種組織EST酶電泳譜帶分布及電泳遷移率見圖2、表2。由圖2、表2可知，大倉鼠胃、小腸、大腸、肝臟4種組織共分離出EST1～EST12。胃分離出EST2～EST5、EST7、EST9～EST12，遷移率分別為0.714～0.679、0.382、0.259～0.188的9條譜帶;小腸分離出EST1～EST5、EST7、EST9～EST12，遷移率分別為0.742～0.679、0.382、0.259～0.188的10條譜帶;大腸分離出EST2～EST5、EST9～EST12，電泳遷移率分別為0.714～0.679、0.259～0.188的8條譜帶;肝臟分離出EST3～EST6、EST8～EST12，電泳遷移率分別為0.696～0.661、0.321～0.188的9條譜帶。

大倉鼠4種組織之間SET酶活性表達強度為小腸>肝臟>大腸>胃，其中EST9～EST12和EST3～EST5為共有譜帶，遷移率0.259～0.188和0.696～0.679，且小腸表達活性最強。EST1為小腸特有譜帶，遷移率0.742;EST6和EST8為肝臟特有譜帶，遷移率0.661、0.321。

2.3? AMY電泳結果分析

大倉鼠的4種組織AMY酶電泳譜帶分布及電泳遷移率見圖3、表3。由圖3、表3可知，大倉鼠胃、小腸、大腸、肝臟4種組織共分離出AMY1～AMY8。胃分離出AMY1～AMY8，電泳遷移率為0.565～0.154的9條譜帶;小腸分離出AMY5～AMY8，電泳遷移率為0.231～0.154的4條譜帶;大腸分離出AMY5～AMY8，電泳遷移率為0.231～0.154的4條譜帶;肝臟分離出AMY5～AMY6，電泳遷移率為0.231～0.205的2條譜帶。

大倉鼠4種組織之間AMY酶活性表達強度為大腸>小腸>胃>肝臟，其中AMY5～AMY6為共有譜帶，遷移率0.231～0.205，大腸活性表達最強。AMY1～AMY4為胃的特有譜帶，遷移率0.564～0.496。

3? 小結與討論

SOD是生物機體抗氧化防御的酶，能夠催化超氧陰離子自由基發生歧化反應，能清除體內產生的自由基。這因為肝臟不但是機體消化腺，能夠分泌參與食物消化的酶，還是生物體內最大的解毒組織，保護機體免受超氧陰離子自由基的損傷。大倉鼠4種組織均有SOD分布，肝臟SOD的譜帶分布廣且SOD活性最強，這與肝臟功能相關。

EST參與生命活動的基礎代謝，存在于各種組織中。小腸是機體消化食物和營養吸收的主要場所，大量的酯類化合物在小腸進行水解反應，這需要大量的EST酶進行催化，肝臟在糖類、脂類、蛋白質等物質代謝中起著重要作用。大倉鼠小腸中EST酶的譜帶表現出較強的活性，這與小腸的功能相適應。肝臟中EST酶的譜帶表達活性較強，而且分離出來的譜帶數多于胃和大腸，這與肝臟功能有關。

AMY是以淀粉或糖原為底物。食物進入體內先經過胃的初步分解成可溶性淀粉，再到小腸進行主要的消化和分解。大倉鼠胃分離出的AMY譜帶最多，這與胃作為機體消化過程中的重要場所物質代謝旺盛相符。肝臟參與淀粉的消化過程，經腸道消化吸收的單糖到達肝臟轉化為肝糖原貯存，本研究小腸和大腸中AMY活性高于肝臟中AMY活性，這與周健愷等[9]關于銀鯧不同消化器官中消化酶活性的研究結果不同，但與于洋[10]關于平貝母不同階段培養體淀粉酶研究結果相同，有待于進一步研究。

SOD、EST、AMY在大倉鼠體內均有表達，4種組織表達強弱不同，但在小腸中均有較強的表達。在4種組織中存在譜帶缺失的現象，這些差異是由有關基因表達和調控的差異造成的，酶活性存在的差異與組織的功能相關，顯示出4種組織功能及代謝活躍程度。

參考文獻：

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[10] 于? 洋.組培平貝母不同階段培養體淀粉酶電泳及其活力的研究[J].中國農學通報，2010，26（7）：52-54.