淀粉微膠囊對茶多酚的載運及其對餐后血糖反應的影響

劉天棋，張根義

（江南大學 食品學院，江蘇 無錫 214122）

茶多酚（Tea polyphenols，TP）含多種羥基，具有強抗氧化性，是一種自然強抗氧化劑[1]，擁有抗腫瘤等各種生理活性[2]，能夠較好地抑制淀粉的酶解[3-9]，有助于淀粉慢消化，降低餐后血糖水平，從而能夠對有關的慢性疾病起到預防和治療的作用，是當代營養學與食品科學范疇的鉆研熱門。但茶多酚穩定性較差，對環境因素敏感，極易被破壞，因此當機體直接攝入茶多酚，茶多酚由于受到對消化環境敏感、小腸對茶多酚的轉運效率低、機體代謝速度快、膳食環境復雜等許多方面的影響[10]，造成其在達到小腸上半段充分施展其功能之前，就已經在胃里大量損失了。

為應對以上情況，本文先選取載運體系包載茶多酚，然后選用合適的壁材進行二次包埋。目前對于茶多酚的載運體系有竹葉纖維[11]、交聯PVP凝膠[12]、酸性白土[13]、脂質體[14]、酵母細胞[15]等。 這些材料都有其自身的局限性，存在工藝復雜、容易殘留、生理相容性較差等問題。輕度糊化淀粉是采用物理改性的方法，在淀粉糊化的峰值溫度以下，處理淀粉較短的時間，在其并未完全糊化的狀態下，再利用冷凍干燥技術制備的吸附力較強的一種改性淀粉[16]。同其他吸附材料對比，輕度糊化玉米淀粉不僅具有耗資少、易于操作、不添加化學試劑、無毒[17]等特點，還有較大的比表面積和孔容比，能夠將客體分子吸附到淀粉顆粒孔洞內部，依靠分子間作用力對客體分子起到類似于“包埋”的作用。因此，輕度糊化玉米淀粉是非常好的淀粉基包埋材料和緩釋劑。

海藻酸鈉是一種天然褐藻和海藻衍生的帶陰離子的多糖[18]，與Ca2+等同時存在時會發生凝膠化，且其凝膠對pH很敏感、同人體的相容程度好，具有抗酸和腸溶性特點，被廣泛應用于食品、藥品等行業[19-22]。殼聚糖是由甲殼素去掉乙酰官能團后獲取的鏈是線性的多糖，含有大量伯胺基[23]，能與海藻酸鈉的羧基形成聚電解質膜。殼聚糖具有與植物纖維素和人體骨膠原組織相似的雙重結構，生物特性極好[24]。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

1.1.1 主要材料、試劑 茶多酚購自杭州禾田生物技術有限公司；普通玉米淀粉，購自國民淀粉化學有限公司；海藻酸鈉、殼聚糖、無水CaCl2、95%乙醇、醋酸、醋酸鈉、NaOH、沒食子酸、Folin-phenol試劑、碳酸氫鈉、鹽酸、KH2PO4等和胰蛋白酶是國藥購買；HK法測定葡萄糖試劑盒購買于利德曼 （北京）；α-淀粉酶、葡萄糖苷酶、胃蛋白酶從Sigma公司購買。

1.1.2 主要儀器、動物 型號PB4001E精密電子天平：美塔雷脫立多國家股份公司；電子天平：精密科學 （上海）有限公司；DELTA320 pH計：Mettler Toledo；H0one-A恒溫磁力攪拌器：上海賽斯設備有限公司；THZ-Eight2恒溫水浴振蕩器：Guohua有限公司；DZF-1B型真空干燥箱：Abotai實驗設備有限公司（上海）；超低溫冷凍冰箱：美國瑞威克有限公司；1 mL 注射器（0.5 mm×20 mm）：無錫 SoulYu 醫療器械有限公司；80-2B型低速度離心機：安亭實驗儀器責任有限公司；光譜M5型酶標儀：美國分子器件有限公司；2800UV型紫外分光光度計：上海Unique儀器有限公司；S3500型激光粒度自動分析儀：美國麥奇克有限公司；IS10傅里葉紅外變換光譜儀：美國尼克萊特公司；FEI Quanta 200掃描電子顯微鏡、血糖測試儀、測定紙：美國強生公司；One-Touch血糖測試儀：強生（中國）醫療器材有限公司。

SPF級健康KM雄性小鼠，于Slake實驗動物公司購買，江南大學實驗動物中心飼養，飼養條件：溫度（25±2） ℃，相對濕度（60±5）%。

1.2 實驗方法

1.2.1 茶多酚用量的測定方法 選用福林酚[25-26]法量化溶液里茶多酚的量，將沒食子酸（Gallic acid）作比照品，設置適當濃度梯度與福林酚溶液作用，經過3～8 min，添加4 mL質量濃度75 g/L Na2CO3溶液，加水，然后搖勻，室溫靜置1 h，于765 nm條件下量定吸光度（Abs）并制作標準曲線。

茶多酚的包載量及包埋率的量化方法為

式中：c1為TP溶液質量濃度；V1為TP溶液體積；c2為洗滌液和濾液TP質量濃度；V2為濾液及洗滌液體積；M為干燥后微膠囊質量。

1.2.2 輕度糊化玉米淀粉的制備 取適量普通玉米淀粉（通過GB/T 21305—2007/IOS712：1998測得其水分含量為13.4%），于90℃（低于糊化溫度）處理1 min，然后立即在-40℃冰箱預凍12 h，之后冷凍干燥48 h（-80℃、真空度10 Pa），經粉碎處理后就獲得輕度糊化玉米淀粉。

1.2.3 微膠囊的制備 取適量輕度糊化玉米淀粉，加入20 mL 25 mg/mL茶多酚，放入20℃恒溫水浴振蕩器里吸附60 min，轉速設定為110 r/min，之后與海藻酸鈉10 mL攪動均勻，取一定濃度的殼聚糖和氯化鈣各25 mL攪拌均勻并調節pH。用齒輪泵將輕度糊化玉米淀粉、茶多酚與海藻酸鈉混合液勻速泵入裝有殼聚糖、氯化鈣的燒杯里，靜置20 min后過濾并水洗，將濾液和洗滌液混合之后測定總體積與吸光度，計算茶多酚含量。真空干燥即得微膠囊。

1.2.4 海藻酸質量濃度作用于微膠囊釋放茶多酚的情況 稱取輕度糊化玉米淀粉1.5 g放入燒杯，向燒杯添加20 mL 25 mg/mL茶多酚，放入20℃恒溫水浴振蕩器里，110 r/min吸附60 min。配置質量濃度分別為 0.5、1.5、2.5、3.5和 4.5 g/L的海藻酸鈉溶液，各取10 mL分別加入到上述混合液中，攪勻后泵入25 mL質量濃度1 g/L的殼聚糖和25 mL質量濃度10 g/L CaCl2構成的混合液里。將最終獲得的各微膠囊放入模擬胃、腸液里測量茶多酚的釋放情況，確定海藻酸鈉的最適質量濃度。

1.2.5 正交試驗設計 以殼聚糖質量濃度 （A）、氯化鈣質量濃度（B）、pH值（C）3要素各選取 3水平實施正交試驗，用樣品于模擬胃液、模擬腸液里處理30 min時茶多酚釋放速率做評定標準，表明各要素對茶多酚在胃腸道里釋放情況的作用水平。

1.2.6 輕度糊化玉米淀粉及微膠囊粒徑分布 選取激光粒度分析儀，對樣品的粒徑情況做測量，將微膠囊樣品置于樣品槽中，經過對粒群衍射，由計算機推算出粒群相應粒徑散布。

1.2.7 傅里葉變換紅外分析 準確稱取樣品與溴化鉀粉末（20∶1）混合均勻，研磨后壓片，通過 IS10型傅里葉紅外光譜儀進行測試，以空白溴化鉀片作為參比，測定限度為 420～4 000 cm-1。

1.2.8 SEM掃描電鏡分析 采用SEM掃描定性分析樣品顆粒。將適量的樣品進行固定、脫水、干燥和粘樣后，鍍上一層重金屬膜，便可進行鏡檢，放大適當的倍數，觀察樣品的形態變化情況。

1.2.9 微膠囊于模擬胃液環境的釋放情況 首先制備模擬胃液：將9 mL鹽酸、80 mL蒸餾水和10 g胃蛋白酶混合，攪拌均勻，pH調節至1.2，用1 000mL容量瓶定容再預熱至37℃備用。每種樣品稱1 g加入100 mL具塞錐形瓶里，添加40 mL模擬胃液，預熱至37℃，放到恒溫振蕩器（＜200 r/min）處理， 在 0、5、10、15、20、30、40、60、75、90、105 和 120 min取樣1 mL，檢測總酚含量（以空白胃液與福林酚試劑反應作為分光光度測定時候的空白對照），計算累積釋放率，并補充等量模擬液。

1.2.10 微膠囊于模擬腸液環境的釋放情況 制備模擬腸液：稱取6.8 g磷酸二氫鉀，用250 mL蒸餾水溶解，添加190 mL 0.2 mol/L的氫氧化鈉和400mL水，加入10 g胰蛋白酶，調節pH值為7，用1 000 mL容量瓶定容后預熱至37℃備用。分離出上述模擬胃液中處理0.5和2.0 h的微膠囊，洗滌后放到盛有50 mL模擬腸液（預熱到37℃）錐形瓶里，放入恒溫振蕩器（＜300 r/min）里處理，在 10、20、30、60、90、120、150和180 min取樣1 mL，檢測總酚含量（以空白腸液與福林酚試劑反應作為分光光度測定時候的空白對照），獲得釋放率的累計值，并增補同樣體積的模擬液。

1.2.11 微膠囊對小麥粉體外消化性的影響 稱取95 mg小麥粉與5 mg茶多酚和相應質量的各樣品（使得茶多酚占淀粉質量的5%）于具塞試管中，加入pH為5.2的醋酸-醋酸鈉緩沖溶液5 mL，再加入攪拌子，95℃水浴20 min，磁力攪拌速度為500 r/min。冷卻至37℃后，分別移取1 mL樣品，加入備好到37℃的1 mL α-淀粉酶及葡萄糖苷酶（290 U/mL∶15 U/mL）酶液里，在 37℃前提下處理，分別在酶解反應的第0～120 min內每隔20 min抽樣100μL，加入 900 μL 無水乙醇，離心 3 min（轉速 1 000 r/min）后采用己糖激酶（HK）法[27]測量反應后體系里葡萄糖的量，并按如下方法求出小麥粉體外消化率，計算快消化淀粉、慢消化淀粉及抗性淀粉所占比例。

淀粉體外消化率=葡萄糖含量×0.9×100%

RDS 快消化淀粉（%）=（G20-FG）×0.9/TS

SDS 慢消化淀粉（%）=（G120-G20）×0.9/TS

RS 抗性淀粉（%）=[TS-（RDS+SDS）]/TS

其中：FG為淀粉中游離的葡萄糖含量，G20為樣品水解20 min后的葡萄糖含量，G120為樣品水解120 min后的葡萄糖含量，TS為總淀粉含量。

1.2.12 微膠囊對小鼠餐后血糖反應的影響 選取禁食5 h后空腹血糖正常的小鼠，隨機劃成4組，各組6只，設定為空白組、對照組1、對照組2及樣品組 （組間差不大于1.1 mmol/L）[28]。空白組按照0.1mL/10 g給小鼠灌胃糊化后的小麥粉；對照組1灌胃糊化后的小麥粉與茶多酚（占總質量的5%）混合物；對照組2灌胃糊化后的小麥粉與未包埋茶多酚的微膠囊；樣品組灌胃糊化后的小麥粉與包埋了茶多酚的微膠囊（保證樣品組的茶多酚含量與對照組1 的相等）， 并在 0、15、30、45、60、90 和 120 min 選擇尾尖取血，利用強生血糖儀測量血糖值。

2 結果與討論

2.1 沒食子酸標準曲線

獲得回歸方程y=0.011 32x+0.009 77，R2=0.999 5。其中：x為沒食子酸的質量濃度，y為吸光值。

2.2 海藻酸質量濃度作用于微膠囊釋放茶多酚的情況

海藻酸鈉的黏度相對較大，與干燥后微膠囊釋放茶多酚的速度也有較大關系，因此，尋找適當的海藻酸鈉質量濃度，對于實現茶多酚在胃中被保護及在小腸上端迅速定點釋放很重要。實驗顯示，若海藻酸鈉的質量濃度較高（3.5和4.5 g/L），形成的微膠囊在胃中120 min時的TP釋放率分別為9.12%和7.30%，緩釋效果較好，但在腸中30 min的釋放率分別為43.0%和37.7%，釋放較慢，無法實現在小腸上半段的定點釋放；而當質量濃度較低（0.5和1.5 g/L）時，TP在腸中釋放率較高分別為61.0%和60.99%，但在胃中120 min的釋放率分別為31.0%和19.9%，釋放率較大，無法有效保護茶多酚；若海藻酸鈉質量濃度是2.5 g/L，微膠囊在胃中120min釋放率為13.32%，釋放率較低，而在腸中30 min的釋放率為59.7%，釋放較快。因此，綜合在胃和腸道的釋放效果，選擇海藻酸鈉的質量濃度為2.5 g/L。

2.3 正交試驗結果分析

經過分析，選取1.5 g輕度糊化玉米淀粉、質量濃度2.5 g/L的海藻酸鈉10 mL、25 mg/mL的茶多酚溶液20 mL、殼聚糖和氯化鈣都是25 mL。實施的正交試驗的結果如表1所示。

表1 正交試驗設計及結果Table 1 Orthogonal experiment design and results

由表1可知，各因素影響茶多酚在胃中和腸中的釋放率的順序都為氯化鈣質量濃度＞pH值＞殼聚糖質量濃度。最佳工藝為A2B2C2，即殼聚糖質量濃度1 g/L、氯化鈣質量濃度10 g/L、pH值3.5。表2方差分析表明，要素殼聚糖質量濃度（A）、氯化鈣質量濃度（B）、pH值（C）于茶多酚在胃中的釋放率都存在顯著性影響（P＜0.05），從表3可知，要素氯化鈣質量濃度（B）于茶多酚在腸中的釋放率存在顯著影響（P＜0.05），因素殼聚糖的質量濃度（A）、pH 值（C）沒有顯著影響。為檢驗這個最佳試驗水平，再做3次重復試驗，得到微膠囊對茶多酚的包埋率分別是86.32%、84.5%、81.42%，平均包埋率為84.08%；包載量分別是214.7、207.13和201.97 mg/g，平均包載量為207.6 mg/g；在胃液中處理30 min時的茶多酚釋放率分別是12.3%、9.57%、8.4%，平均釋放率是10.09%；在腸液中處理30 min時的茶多酚釋放率分別是65.5%、60.7%、58.06%，平均釋放率是61.42%。3次試驗的數據相差不大，證明這個制備條件相對穩定，試驗可行性強，獲得的微膠囊外觀形狀規則、不粘連。

表2 方差分析（胃液中30 min釋放率）Table 2 Analysis of variance（release rate of 30 min in gastric juice）

表3 方差分析（腸液中30 min釋放率）Table 3 Analysis of variance（release rate of 30 min in the intestinal fluid）

當不添加殼聚糖時，測定微膠囊的茶多酚包埋率為（42.37±1.4）%，包載量為（90.4±3.67） mg/g，飽滿效果較差，且制備的微膠囊在胃液中30 min的釋放率較大，為（37.56±1.21）%，無法實現對茶多酚的有效保護，因此在制備微膠囊時須添加殼聚糖。

2.4 輕度糊化玉米淀粉及微膠囊粒徑分布

用激光粒度儀將輕度糊化玉米淀粉、沒有包載芯材茶多酚的壁殼和包載了茶多酚的微膠囊做了分析，結果如圖1所示。

圖1 輕度糊化玉米淀粉粒徑分布Fig.1 Particle size distribution of mild gelatinized corn starch

由圖1可知，和普通玉米淀粉相比，經過輕度糊化處理的淀粉粒徑稍有增大，但增大幅度不明顯。分析其原因是糊化過程水分子進入到淀粉顆粒內部使得淀粉膨脹，之后水分子經預凍后結冰并升華，淀粉顆粒框架不變，致使粒徑增大[29]。

如圖2所示，微膠囊的粒徑分布為：1 100～1 000 μm 占 1.1%；1 000～830 μm 占 9.79%；830～600 μm 占 16.1%；600～530 μm 占 41.26%；530～400 μm 占 21.79%；400～330 μm 占 6.4%；330～250 μm占2.66%；250～175 μm 占 0.9%，符合高斯分布。 且同未包載芯材茶多酚的外壁相比較，微膠囊的粒徑有所增大，推測是由于外壁包載了茶多酚，使得微膠囊的粒徑增加。

圖2 輕度糊化玉米淀粉、殼聚糖、海藻酸鈉組成的外壁及微膠囊粒徑分布Fig.2 Particle size distribution of microcapsules and wall shell formed by mild gelatinized starch，sodium alginate and chitosan

2.5 傅里葉紅外分析

由圖3可見，殼聚糖的O-H特征峰在3 415 cm-1，-NH2的吸收峰在 1 575 cm-1；海藻酸鈉的 O-H特征峰在3 400 cm-1，苯環的C-H振動在2 930 cm-1，1 615 cm-1是-COO-不對稱伸縮振動峰；輕度糊化玉米淀粉的O-H的特征峰出現在3 000～3 500 cm-1，而707 cm-1處出現淀粉的特征峰。這些表明了殼聚糖上氨基與海藻酸鈉上羧基相結合成了聚電解質膜，包載了輕度糊化玉米淀粉。

輕度糊化玉米淀粉+壁材吸收峰幅度明顯減小，可能是因為形成的壁殼是復合凝聚物。輕度糊化玉米淀粉-TP微膠囊圖譜的TP的峰顯著削弱，并且組合體的圖譜和壁殼的類似，說明茶多酚進到了微膠囊的內腔，羥基的特征吸收峰在3 000～3 700 cm-1，這一波段代表了不同羥基的波數，包埋了茶多酚的微膠囊的峰比胃包埋茶多酚的壁殼的峰強度高，說明微膠囊包埋了茶多酚，壁殼和茶多酚之間形成了更多的羥基，羥基的種類和數量有所增加。這些都證明了包埋物的生成。

圖3 各組分及微膠囊的FTIR圖Fig.3 FTIR spectrum of each component and microcapsule

2.6 SEM掃描表征分析

從圖4可看出，未添加茶多酚時的外壁褶皺較為明顯且外觀粗糙，可能是外壁表面有較多孔隙，而加入茶多酚之后，微膠囊褶皺相對平淺，外觀相對平滑，這或許是茶多酚被包埋造成的。且從圖中褶皺處可以看出由壁材包埋形成的外壁層較薄，這將有利于微膠囊在進入小腸時快速釋放茶多酚，以實現茶多酚的定點釋放。

圖4 壁殼、輕度糊化玉米淀粉-TP微膠囊及微膠囊群體的掃描電鏡圖Fig.4 SEM images of wall，mild gelatinized corn starch-TP microcapsulesand mild gelatinized corn starch-TP microcapsule group

2.7 微膠囊于模擬胃液環境的釋放情況

同時研究了幾種不同組合方式微膠囊，從圖5可以看出有突釋情況，這是沒有被包載的殘留在微膠囊表面的TP造成的，在突釋后的釋放過程中，茶多酚從微膠囊里釋放的同時也會遭到胃液的破壞，所以釋放率曲線表現出波動的狀況。

輕度糊化玉米淀粉在吸附TP后，在沒有添加壁材時，在模擬胃液里的釋放速度較快，釋放率也較高，使得TP損失較多，不能對TP起到較好的保護作用，而添加了壁材之后，TP于胃里的釋放速率和釋放量降低明顯，證明了添加壁材的重要性。

以改性淀粉為芯材載體的微膠囊與以普通玉米淀粉為芯材載體形成的微膠囊相比，在胃中對TP的保護效果更好，這是因為與普通玉米淀粉相比，改性淀粉由于其自身物理結構的改變，吸附TP的能力更強，因此在胃中的釋放更為緩慢，釋放率也更低。

微膠囊在胃液里的釋放率為 0.5 h：（10.09±0.25）%，2.0 h：（16.22±0.84）%。 表明在 pH1.2 時，包埋物的釋放較緩慢。

圖5 微膠囊于模擬胃液的釋放情況Fig.5 Release of microcapsules in simulated gastric fluid

2.8 微膠囊于模擬腸液環境的釋放情況

從圖6可以看出，在胃液里停留0.5與2.0 h的微膠囊在腸液里都出現了快速釋放，在腸液里反應0.5 h時，在胃液里停留0.5 h的微膠囊釋放速率達到（61.42±1.13）%，在胃里停留 2.0 h的微膠囊的釋放率達到了（72.40±1.32）%，后者在腸中的釋放率稍快，但兩者沒有顯著差異，說明制備的微膠囊在胃中比較穩定，不因為在胃中停留的時間過長而結構被破壞，在進入腸中以后受腸液pH的影響快速釋放出茶多酚，能夠達到包埋物于胃中少溶于腸中快速釋放。

圖6 胃液分別處理0.5 h和2.0 h后微膠囊在模擬腸液里的釋放情況Fig.6 Release of microcapsules in simulated intestinal fluid after being treated by simulated gastric fluid for 0.5 and 2.0 hours

2.9 微膠囊對小麥粉體外消化性的影響

由圖7和表4可知，直接添加茶多酚的小麥粉組與單獨的小麥粉組的體外消化結果并無明顯差異，說明直接添加茶多酚時，茶多酚由于未被保護而大量損失，無法發揮促進淀粉慢消化的效果；沒有包載茶多酚的輕度糊化玉米淀粉微膠囊組與單獨的小麥組的消化結果無明顯差異，說明芯材載體輕度糊化玉米淀粉的慢消化作用可忽略不計；而含有等量茶多酚的輕度糊化玉米淀粉-TP組的快消化淀粉含量減少了16.13%，抗性淀粉的含量增加13.51%，表明微膠囊較好地保護了茶多酚，且茶多酚發揮了有效的促進淀粉慢消化的功能。

圖7 微膠囊對小麥粉體外消化性的影響Fig.7 Effects of microcapsules on the digestive properties of wheat flour in vitro

表4 不同樣品中的 RDS、SDS、RS 的含量（x±s，n=3）Table 4 Content of fast digested starch （RDS），slow digested starch （SDS） and resistant starch（RS）in different samples

2.10 微膠囊對小鼠餐后血糖反應的影響

將以輕度糊化玉米淀粉為芯材載體的茶多酚微膠囊對小鼠實施灌胃，并觀測小鼠的餐后血糖波動，結果如圖8所示。

由圖8可以看出，單獨只灌胃小麥粉后，小鼠餐后血糖迅速升高，并在30 min血糖升高了5.90 mmol/L，達到餐后血糖峰值，且與小麥粉直接和茶多酚混合組相比，并無顯著差異。

圖8 灌胃微膠囊的小鼠餐后血糖反應曲線Fig.8 Blood glucose response curve after meals of mice fed with microcapsules

與只灌胃小麥粉組和小麥粉直接與茶多酚混合組相比，具有等量茶多酚的輕度糊化玉米淀粉-TP微膠囊組的餐后血糖反應明顯較低，微膠囊組在餐后15 min的血糖含量僅為小麥粉組的61.80%左右，為小麥粉直接加茶多酚組的64.64%左右，餐后30 min的血糖相比小麥組降低了32.15%，相比小麥粉直接加茶多酚組降低了29.87%，血糖明顯降低。

微膠囊組的餐后血糖的峰值出現在45 min，推遲了15 min，且血糖最大波動值分別僅為4.20 mmol/L，證明茶多酚微膠囊能夠使餐后血糖波動整體趨勢相對平緩。

3 結 語

本實驗采用輕度糊化玉米淀粉包載茶多酚，再利用抗酸與腸溶性、且對pH敏感、生物相容較高的海藻酸鈉、殼聚糖為壁材，對芯材進行包埋，壁材的質量濃度及比例在經優化后既能成膜包裹芯材載體及芯材，又不至于影響芯材在小腸中的快速釋放，實現壁殼在胃中穩定，減少茶多酚在胃中的損失，而到達小腸上半段快速溶解，定點釋放茶多酚。確定制備條件是1.5 g輕度糊化玉米淀粉，20 mL 25 mg/mL的茶多酚，10 mL 2.5 g/L的海藻酸鈉，25 mL 1 g/L的殼聚糖，25 mL 10 g/L的氯化鈣，用NaHCO3調節pH為3.5，在最佳條件下獲得的輕度糊化玉米淀粉-TP微膠囊的茶多酚包埋率達84.08%，平均包載量為207.6 mg/g。若只采用海藻酸鈉和殼聚糖來包載茶多酚，干燥之后骨架脆弱，整體呈片狀，而本實驗通過添加改性淀粉，克服了這一缺點，使微膠囊形態得到完善，包埋率也得到提高。

將微膠囊進行小麥粉體外消化實驗，結果表明相對于未經保護的茶多酚直接與小麥粉的消化結果，經微膠囊化的茶多酚能很好地實現淀粉慢消化，且在小鼠實驗中也得到了驗證，相對于直接灌胃茶多酚的小鼠，灌胃微膠囊組的小鼠餐后血糖波動整體趨勢相對平緩，血糖峰值明顯降低，且峰值出現的時間推遲了15 min。淀粉微膠囊實現淀粉慢消化及對餐后血糖反應影響的原理還有待進一步研究。