賀秋紅,鞏志金,顏 梅
(曲阜師范大學 生命科學學院,山東 曲阜 273100)
脂肪酶(lipase EC3.1.1.3)是一類能催化甘油酯水解的酶的總稱,催化效率高,副產物少,反應條件溫和,不需要輔酶或輔因子的參與,已在合成反應、生物燃料、制藥工業以及洗滌劑、食品、紡織等領域得到廣泛應用。脂肪酶不僅能催化甘油酯類水解與合成,還能催化酯化反應、酯交換反應、醇解反應,促進多肽、表面活性劑和藥物等的合成反應[1]。微生物脂肪酶的研究始于20世紀初,經過100多年的研究,目前已經成為脂肪酶的主要來源。特別是近幾十年來,隨著高效篩選技術和先進基因工程技術的應用,已經實現了曲霉、毛霉和假單胞菌的相對高產,并且部分菌株已經實現工業化應用[2]。我國高質量的脂肪酶產生菌種類少,產量低,很多企業不得不依賴價格昂貴的進口脂肪酶,因此篩選和培育高產優勢脂肪酶產生菌顯得尤為重要[3]。另外,脂肪酶催化的反應類型和條件多種多樣,不同類型的脂肪酶應用方向千差萬別,因此篩選不同來源的脂肪酶是脂肪酶研究的基礎。
微生物脂肪酶的表達主要受環境因子的調節,產脂肪酶微生物需要以油脂和脂肪酸作為碳源生長,因此常用的微生物篩選來源包括油脂加工廠、乳制品工廠以及附近被油脂污染的土壤和水域等[2]。芽孢桿菌是一類潛在的優良脂肪酶生產菌株,目前用于生產脂肪酶的芽孢桿菌有枯草芽孢桿菌[4]、蠟狀芽孢桿菌[5]、類芽孢桿菌[6]和地衣芽孢桿菌[7]等。枯草芽孢桿菌所生產的脂肪酶屬于胞外酶,便于下游分離純化,適用于大規模工業化生產[8-9],并且普遍具有較高的堿耐受力[10-11],在洗滌劑和紡織等領域市場需求巨大。本研究從油脂污染水樣中分離出一株產脂肪酶菌株,對其進行形態學特征、生理生化試驗及分子生物學鑒定,并通過單因素試驗和響應面試驗對其發酵培養基組分進行優化,旨在提高脂肪酶產量,進一步對其酶學性質研究提供技術參考和實驗基礎。
1.1.1 材料
從曲阜市多個食堂和食品廠附近被油脂污染的下水道中采集樣品10份。
1.1.2 化學試劑
葡萄糖、酵母膏、磷酸氫二鈉、硫酸銨、氯化鈉、三水磷酸氫二鉀、七水硫酸鎂、瓊脂粉、蛋白胨、橄欖油、羅丹明B、聚乙烯醇(polyvinyl alcohol,PVA):國藥集團化學試劑有限公司。
1.1.3 培養基[12-14]
富集培養基:酵母膏0.2 g/L,氯化鈉0.5 g/L,磷酸氫二鈉3.5 g/L,磷酸二氫鉀1.5 g/L,七水硫酸鎂0.5 g/L,橄欖油10 mL,用蒸餾水定容至1 000 mL,121 ℃滅菌20 min。
初篩羅丹明B培養基[14]:硫酸銨0.5 g,氯化鈉4 g,磷酸氫二鉀1 g,七水硫酸鎂0.5 g,瓊脂粉15 g,三丁酸甘油脂乳化液100 mL(4%PVA∶三丁酸甘油脂=3∶1,超聲乳化),用蒸餾水定容至1 000 mL,121 ℃滅菌20 min后,待溫度降至60 ℃時加入1 mL羅丹明B 溶液(質量濃度<10 mg/mL),混勻后倒平板。
初始發酵培養基:葡萄糖5.0 g/L,蛋白陳2 g/L,尿素6.0 g/L,三水磷酸氫二鉀1.0 g/L,硫酸銨1 g/L,七水硫酸鎂0.5 g/L,三丁酸甘油脂10.0 mL,用蒸餾水定容至1 000 mL,自然pH,115 ℃滅菌15 min。
SW-CJ-1D超凈工作臺:蘇州凈化設備有限公司;SIGMA 2-16PK通用型離心機:德國Sigma公司;TS-1102立式搖床:上海天呈試驗儀器制造有限公司;CL-32L高壓蒸汽滅菌鍋:日本ALP公司;上海申安醫療器械廠;T100型PCR儀、Mini-SubCell核酸電泳儀:美國BioRad公司;CX23生物顯微鏡:日本奧林巴斯有限公司。
1.3.1 菌株的篩選
將采集的樣品分別依次進行富集培養、初篩和初始發酵復篩。樣品經過3次富集培養后,分別取50 μL菌液上清涂布于羅丹明B培養基平板,羅丹明B能與脂肪酶降解油脂產生的脂肪酸特異性結合,產酶菌落周圍會生成玫紅色,在波長365 nm紫外燈下呈現橙黃色。將羅丹明B平板放在波長365 nm紫外燈下進行觀察,選取橙黃色圈較大的菌株進行分離培養,鏡檢至無雜菌后作為出發菌種,接種于初始發酵培養基中進行復篩,選出脂肪酶高產菌株[15-17]。
1.3.2 菌種鑒定
根據《常見細菌系統鑒定手冊》[18],對所篩選的菌株進行形態學特征和生理生化鑒定。提取目的菌株的基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)為模板,以16S rDNA序列的通用引物進行聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)擴增。擴增產物送至上海博尚生物科技有限公司進行測序,并將得到的序列與GenBank數據庫中的序列進行比對分析,使用MEGA-X軟件構建系統發育樹[19]。
1.3.3 產脂肪酶菌株的種子液的制備及發酵培養
種子液的制備:將1.3.1篩選得到的菌種于無菌條件下,接種一環菌至裝液量為50 mL/250 mL的初始發酵培養基中,35 ℃、220 r/min,搖瓶培養12 h,制備成種子液。將種子液按照10%(V/V)裝液量接種至為25 mL/250 mL的發酵培養培養基中,發酵液pH=7,35 ℃、220 r/min條件下搖瓶培養40 h。
1.3.4 發酵培養基組分優化
單因素試驗:設計單因素試驗考察發酵培養基中三丁酸甘油酯添加量(1.2%、1.4%、1.6%、1.8%、2.0%、2.2%、2.4%)、葡萄糖添加量(4 g/L、5 g/L、6 g/L、7 g/L、8 g/L、9 g/L、10 g/L)及尿素添加量(6 g/L、8 g/L、10 g/L、12 g/L、14 g/L、16 g/L、18 g/L)對發酵液中粗脂肪酶活性的影響,確定各因素的中心值及水平。
響應面試驗:根據響應面分析法中Box-Behnken Design(BBD)試驗設計原理,采用上述單因素試驗確定的中心值、低水平和高水平(分別用0、-1、+1表示),以脂肪酶活力(Y)為響應值,對發酵培養基中三丁酸甘油酯添加量(A)、葡萄糖添加量(B)、尿素添加量(C)進行優化,得到最佳發酵條件組合,試驗因素與水平見表1。

表1 發酵條件優化響應面試驗因素與水平Table 1 Factors and levels of response surfer experiments for fermentation conditions optimization
1.3.5 發酵液中脂肪酶活力的檢測
粗酶液的制備:將發酵液低溫離心去除菌體,4 ℃、5 500 r/min條件下離心15 min,除菌體。上清用0.22 μm濾膜過濾,制成粗酶液于4 ℃保存備用。
脂肪酶活力檢測:參考國標GB/T 23535—2009《脂肪酶制劑》[20]。脂肪酶活力定義:在pH7.5,40 ℃條件下,每分鐘產生1 μmol可滴定脂肪酸所需的酶量為1個酶活力單位(U/mL)。
經過初篩和富集培養,從10份樣品中篩選分離得到4株橙黃色圈較大的菌株,分別編號為U1、U2、U4、U5,再分別進行搖瓶發酵培養,測定各發酵液中產脂肪酶的活力值,結果見表2。由表2可知,菌株U5脂肪酶酶活最高,為3.3 U/mL,其余3株菌脂肪酶酶活較低,均在1.3~2.9 U/mL范圍內。因此,選擇菌株U5作進一步鑒定。
2.2.1 菌株U5形態學特征
菌株U5的菌落及細胞形態見圖1。由圖1A可知,在瓊脂平板上,菌落乳白色,邊緣不規則,不透明,菌落表面粗糙,略有突起。由圖1B可知,菌體呈圓桿狀,無莢膜,有鞭毛。

圖1 菌株U5的菌落(A)及細胞(B)形態Fig.1 Colony morphology (A) and cell morphology (B) of strain U5
2.2.2 生理生化鑒定
菌株U5能利用甘露醇、檸檬酸鹽、葡萄糖,接觸酶試驗、硝酸鹽還原、V-P試驗、7%氯化鈉生長均為陽性。根據菌株U5的形態特征和生理生化特性,可以初步鑒定菌株為芽孢桿菌屬(Bacillussp.)。
2.2.3 分子生物學鑒定
以菌株U5基因組DNA為模板,采用細菌16S rDNA通用引物進行PCR擴增,PCR產物經1%瓊脂糖凝膠電泳分析,結果發現擴增條帶約1 500 bp,測序結果見圖2。

圖2 菌株U5 16S rDNA測序結果Fig.2 Sequencing results of 16S rDNA of strain U5
由圖2可知,擴增片段長1 406 bp,符合細菌16S rDNA序列特征。將擴增序列結果同美國國家生物技術信息中心(national center of biotechnology information,NCBI)中的Genbank核酸數據庫進行基本局部比對搜索工具(basic local alignment search tool,BLAST)同源性比對分析,用MEGA-X構建系統發育樹,結果見圖3。

圖3 菌株U5 16S rDNA序列系統發育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain U5 based on 16S rDNA sequence
由圖3可知,菌株U5與Bacillus subtilisstrain IAM10(MH815091.1)位于同一族群,親緣關系最近,再結合形態學觀察和生理生化試驗結果,進一步證實菌株U5為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)。
2.3.1 單因素試驗結果
分別對發酵組分中三丁酸甘油酯(1.2%~2.4%)、葡萄糖(4~10 g/L)、尿素(6~18 g/L)的添加量進行單因素試驗設計,結果如圖4所示。
由圖4a可知,隨著三丁酸甘油酯添加量的增加,脂肪酶活力呈現先升后降的趨勢,當三丁酸甘油酯添加量為1.8%時,脂肪酶活力最高,達到4.0 U/mL,故將1.8%作為響應面設計中三丁酸甘油酯含量的中心點,中心點左、右兩側等距離的因變量1.6%和2.0%作為低水平和高水平。
由圖4b可知,隨著葡萄糖添加量的增加,脂肪酶活力整體呈現先上升后略微下降的趨勢,當葡萄糖添加量為8 g/L時,脂肪酶活力達到最高;葡萄糖添加量>8 g/L后略有下降,故葡萄糖含量的中心點設為8 g/L,低水平和高水平分別為7 g/L和9 g/L。
由圖4c可知,隨著尿素添加量的增加,脂肪酶活力呈現先上升后下降的趨勢,當尿素添加量為10 g/L時,脂肪酶活力達到最高,為3.7 U/mL;尿素添加量>10 g/L脂肪酶活力顯著下降,故將10 g/L作為響應面設計中尿素含量的中心點,中心點左、右兩側等距離的因變量8 g/L和12 g/L作為低水平和高水平。

圖4 三丁酸甘油(a)、葡萄糖(b)及尿素(c)添加量對脂肪酶活力的影響Fig.4 Effects of tributyrin (a),glucose (b) and urea (c) addition on lipase activity
2.3.2 Box-Behnken Design試驗結果
根據單因素確定的中心點和因素水平,運用DesignExpert 8.0.5b中BBD試驗設計原理進行3因素3水平的響應面試驗設計,試驗設計方案和結果見表3,方差分析見表4。對表3中進行多元回歸擬合,建立二階回歸模型,找到最優響應因子水平,多元二次回歸方程如下所示:


表3 Box-Behnken試驗設計及結果Table 3 Design and results of Box-Behnken experiments
由模型的回歸結果分析和方程方差分析可知,該二次模型顯著(P=0.000 9<0.05),失擬項不顯著(P=0.495 7>0.05),決定系數R2=0.950 1,說明有95.01%的變差能夠由該模型解釋;變異系數為2.21%,說明變異(偏離)程度較小。由圖5可知,各因素間有一定的交互作用,最佳預測點在試驗考查范圍內。因此,該二階歸模型具有良好的擬合度,能真實地描述各因素與響應值之間的關系,可對菌株U5發酵產脂肪酶條件進行預測和分析。一次項A、B,交互項AC,二次項B2對結果影響極顯著(P<0.01)。

表4 響應面試驗回歸模型方差分析Table 4 Variance analysis of response surface experiments
由回歸方程預測得到三丁酸甘油脂添加量為2.00%,葡萄糖添加量為8.84 g/L,尿素添加量為8.00 g/L,發酵獲得粗脂肪酶活力預測值為4.36 U/mL。為方便實際培養基配制,選取三丁酸甘油脂添加量為2%,葡萄糖添加量為9 g/L,尿素添加量為8 g/L。在此優化培養基條件下,發酵獲得粗脂肪酶活力實際值為4.30 U/mL,與預測值基本接近,說明所建模型擬合良好且可靠。因此通過響應面優化后得到的最佳發酵培養基配方為三丁酸甘油脂2%,葡萄糖9 g/L,尿素8 g/L,蛋白陳2 g,K2HPO4·3H2O 1.0 g/L,(NH4)2SO41.0 g/L,MgSO4·7H2O 0.5 g/L;發酵條件為接種量10%,初始pH值=7,溫度35 ℃,轉速220 r/min,搖瓶培養40 h。

圖5 三丁酸甘油脂、葡萄糖及尿素添加量對發酵產脂肪酶活力影響的響應面及等高線Fig.5 Response surface plots and contour line of effects of interaction of between tributyrin,glucose and urea addition on lipase activity
為檢驗模型可靠性和有效性,分別用模型預測的最優培養基配方和原始培養基配方進行搖瓶發酵,每組試驗設置3個平行,檢測不同取樣時間時的脂肪酶活力,結果見圖6。由圖6可知,脂肪酶活力最高為4.3 U/mL,比未優化前的活力3.7 U/mL提高16.22%。模型的預測值與實際發酵結果十分接近說明模型預測性良好。

圖6 培養基組分優化前后脂肪酶活力的變化Fig.6 Changes of lipase activity before and after culture medium optimization
研究從富油水樣中篩選出一株脂肪酶產生菌株U5,經形態觀察、生理生化試驗及16SrDNA序列分析鑒定其為枯草芽孢桿菌(Bacillussubtilis),利用單因素及響應面試驗優化,得到菌株U5發酵產脂肪酶的培養基中最佳配方為三丁酸甘油2%,葡萄糖9 g/L,尿素8 g/L,在此培養基組分下所產脂肪酶活力為4.3 U/mL,比未優化前的酶活力提高16.22%,研究可繼續對U5芽孢桿菌發酵產脂肪酶的菌種進行工程化改造、發酵過程控制優化、發酵罐放大試驗等方面做進一步探索,逐步提高芽孢桿菌U5產脂肪酶的能力和活力。