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NEDD9表達下調對結腸癌生物學行為的影響

2019-10-22 10:38:32李豪杰徐庭凱王連迪
胃腸病學 2019年8期
關鍵詞:結腸癌檢測

李豪杰 徐庭凱 王連迪

河南省漯河市郾城區人民醫院外二科1(462300) 心內科2

背景:NEDD9在細胞遷移、趨化、凋亡、細胞周期中發揮重要作用,NEDD9 siRNA可有效降低基因表達,并從不同水平上促進細胞凋亡、阻斷腫瘤細胞遷移和侵襲。目的:探討NEDD9在結腸癌組織中的表達以及siRNA干擾NEDD9表達對結腸癌Caco-2細胞增殖、凋亡、遷移和侵襲的影響。方法:收集2017年1月—2018年1月漯河市郾城區人民醫院確診的結腸癌組織和相應癌旁組織。常規培養結腸癌Caco-2細胞,采用LipofectamineTM 2000轉染細胞,并將細胞分為對照組、陰性對照組和siRNA干擾組。采用qRT-PCR法檢測結腸癌組織和細胞中NEDD9 mRNA表達,CCK-8法檢測細胞增殖,流式細胞術檢測細胞凋亡,Transwell實驗檢測細胞遷移和侵襲,蛋白質印跡法檢測NEDD9、MMP-9、Bcl-2、Bax、TIMP1蛋白表達。結果:結腸癌組織NEDD9 mRNA表達顯著高于癌旁組織(P<0.05)。與對照組相比,siRNA干擾組NEDD9 mRNA表達明顯降低(P<0.05),細胞增殖、遷移和侵襲能力受到明顯抑制(P<0.05),細胞凋亡增強(P<0.05),NEDD9、MMP-9、Bcl-2蛋白表達顯著降低(P<0.05),Bax、TIMP1蛋白表達顯著增加(P<0.05)。結論:NEDD9基因可通過凋亡相關基因Bcl-2和Bax以及侵襲相關基因MMP-9和TIMP1來調控結腸癌Caco-2細胞增殖、凋亡、遷移和侵襲能力。

結腸癌為常見的惡性腫瘤,目前手術切除和化療是其主要的治療方法,但臨床療效并不理想,復發率較高,侵襲轉移是治療失敗和患者死亡的主要原因[1]。因此,早期準確診斷和及時治療尤其重要,但由于該病起病比較隱匿,早期無癥狀,早發現、早診斷和早治療存在一定難度[2]。探討結腸癌侵襲轉移相關的分子標志物并闡明其發生機制,對結腸癌的治療具有一定的意義[3]。神經前體細胞表達發育下調基因9(neural precursor cell expressed developmentally down-regulated gene 9, NEDD9)為Cas蛋白家族成員,在腫瘤細胞的侵襲、遷移、趨化、凋亡、細胞周期中發揮重要作用[4],與患者預后的關系密切。研究表明,NEDD9參與了乳腺癌、胃癌、大腦膠質瘤、肺癌、胰腺癌、皮膚黑色素瘤等腫瘤的發生和進展[5-7]。結腸癌中NEDD9的相關研究較少,具體的作用機制亦尚未闡明。本研究通過檢測NEDD9在結腸癌組織中的表達,并采用siRNA干擾技術下調結腸癌細胞中NEDD9表達,旨在探討其對結腸癌侵襲轉移的影響。

材料與方法

一、主要材料與試劑

人結腸癌細胞Caco-2購于上海中國科學研究院細胞研究所;NEDD9 Human siRNA(OriGene公司);BeyoFastTMSYBR Green qPCR Mix (2×)(上海碧云天生物技術有限公司);CCK-8(上海碧云天生物技術有限公司);Annexin V-FITC/PI雙染細胞凋亡檢測試劑盒(南京建成生物工程研究所);LipofectamineTM2000(Invitrogen公司);Transwell小室(美國Corning Costar公司);兔抗人NEDD9、MMP-9、TIMP1抗體(Santa Cruz公司);Bcl-2、Bax蛋白抗體、羊抗兔HRP標記的二抗(上海碧云天生物技術有限公司)。

二、方法

1. 組織標本:選擇2017年1月—2018年1月漯河市郾城區人民醫院病理科術后診斷的16例結腸癌組織及其相應癌旁組織(距結腸腫瘤切緣>5 cm的正常結腸黏膜組織),均于手術半小時內置于液氮罐中凍存。標本采集和使用均經患者知情同意,研究方案由漯河市郾城區人民醫院倫理委員會審批通過。

2. siRNA干擾序列的合成:共采用3對干擾序列。1號正義鏈:5’-UUA AGA CAG CAU UAA GCA CUG-3’,反義鏈:5’-GUG CUU AAU GCU GUC UUA ACU-3’;2號正義鏈:5’-UUU UCC UAC ACU AGU UAA GAC-3’,反義鏈:5’- CUU AAC UAG UGU AGG AAA ACG-3’;3號正義鏈:5’-UAU CAU AGA CGU CCU UUU GGU-3’,反義鏈:5’-CAA AAG GAC GUC UAU GAU AUC-3’;三條等量混合。僅含有NEDD9陰性序列的正義鏈:5’-GUA AUG ACA AUU AGA UCA CGC-3’,反義鏈:5’-UUG CGU AAU UGU GCA UCU AUC-3’。

3. 細胞分組和轉染:將細胞分為對照組(未作任何處理)、陰性對照組(僅含有NEDD9陰性序列)、siRNA干擾組(含有NEDD9基因干擾序列)。采用DMEM培養基,含10%胎牛血清,在37 ℃、5% CO2培養箱中培養,傳代。選擇對數生長期細胞接種于6孔板,當生長至70%左右時進行轉染,具體步驟按照LipofectamineTM2000說明書進行操作,轉染6 h后,改換含10%胎牛血清的DMEM培養基繼續培養。

4. qRT-PCR:收集結腸癌組織和細胞,以Trizol裂解并提取RNA,反轉錄生成 cDNA。采用Light Cycler?96實時熒光定量PCR儀(美國Roche公司),引物序列由上海英駿生物技術有限公司合成。NEDD9(NM_001271033.1)上游序列:5’-CAC CGC AGT GCT TAA TGC TG-3’,下游序列:5’-GGG GGT TAT CAC CTT ATA CTT CAT-3’,產物大小87 bp;內參GAPDH(NM_001289745.2)上游序列:5’-GAA GAC GGG CGG AGA GAA AC-3’,下游序列:5’-CCA TGG TGT CTG AGC GAT GT-3’,長度117 bp。采用2-△△Ct法測定NEDD9 mRNA表達。

5. 細胞生長抑制實驗:采用CCK-8法檢測細胞增殖情況。將結腸癌Caco-2細胞以1×104個/mL密度接種于96孔板,每組設置3個復孔,轉染24 h、48 h、72 h、96 h后,每孔加入CCK-8溶液 10 μL,培養2 h。于波長450 nm處測定吸光度(A)值,繪制細胞生長曲線。

6. 流式細胞儀檢測細胞凋亡:取對數生長期結腸癌Caco-2細胞,轉染72 h后,胰酶消化,1 000×g離心5 min,收集細胞,PBS重懸計數。取5×104重懸細胞,1 000×g離心5 min,加入結合液500 μL重懸細胞,加入Annexin V-FITC 5 μL,然后加入PI 5 μL,混勻,室溫孵育10 min,上流式細胞儀檢測細胞凋亡情況。

7. 細胞遷移實驗:細胞轉染72 h后,將密度為4×104的結腸癌Caco-2細胞100 μL加入Transwell小室上室。下室加入含10%胎牛血清的DMEM培養基800 μL,培養24 h,以棉簽刮凈濾膜上層細胞,室溫甲醛固定10 min,Giemsa染色,拍照計數。

8. 細胞侵襲實驗:Transwell上室膜面鋪上Matrigel。細胞轉染72 h后,將密度為4×104的結腸癌Caco-2細胞100 μL加入Transwell小室上室。下室加入含10%胎牛血清的DMEM培養基800 μL,培養24 h,以棉簽刮凈濾膜上層細胞,室溫甲醛固定10 min,Giemsa染色,拍照計數。

9. 蛋白質印跡法:收集轉染72 h的結腸癌Caco-2細胞,常規方法提取蛋白質,調整各樣本蛋白總量,行SDS-PAGE凝膠電泳,分別加入一抗(NEDD9、MMP-9、Bcl-2、Bax、TIMP1和β-actin的工作濃度均為1∶1 000)和HRP標記的二抗(工作濃度為 1∶1 000),Bio-Rad凝膠成像系統成像拍照,以β-actin作為內參,計算目的蛋白的相對表達量。

三、統計學分析

結 果

一、NEDD9在結腸癌組織和細胞中的mRNA表達

結腸癌組織中NEDD9 mRNA表達顯著高于癌旁組織(1.712±0.374對0.732±0.512;t=2.947,P<0.05)。

結腸癌Caco-2細胞中,對照組、陰性對照組、siRNA干擾組NEDD9 mRNA表達分別為1.513±0.259、1.506±0.217、0.704±0.158,三組間相比差異有統計學意義(F=117.85,P<0.05)。其中siRNA干擾組NEDD9 mRNA表達顯著低于對照組(t=4.619,P<0.05)。

二、siRNA對結腸癌Caco-2細胞增殖的影響

與對照組相比,siRNA干擾組不同時間點的A值顯著降低(P<0.05);而對照組與陰性對照組相比差異無統計學意義(P>0.05)(圖1)。

三、siRNA對結腸癌Caco-2細胞凋亡的影響

圖1 siRNA對結腸癌Caco-2細胞增殖的影響(CCK-8法)

*與對照組比較,P<0.01

與對照組相比,siRNA干擾組細胞凋亡率顯著升高(P<0.05),而對照組與陰性對照組相比差異無統計學意義(P>0.05)(圖2)。

四、細胞遷移能力

與對照組相比,siRNA干擾組穿膜細胞數顯著降低(P<0.05),而陰性對照組與對照組相比差異無統計學意義(P>0.05)(圖3)。

五、細胞侵襲能力

與對照組相比,siRNA干擾組穿膜細胞數顯著降低(P<0.05),而陰性對照組與對照組穿膜細胞數相比差異無統計學意義(P>0.05)(圖4)。

六、蛋白表達

與對照組相比,siRNA干擾組NEDD9、MMP-9、Bcl-2蛋白表達顯著降低(P<0.05),Bax、TIMP1蛋白表達顯著增加(P<0.05)。而陰性對照組上述指標與對照組相比差異無統計學意義(P>0.05)(圖5)。

*與對照組比較,P<0.05

*與對照組比較,P<0.05

*與對照組比較,P<0.05

討 論

NEDD9為一種骨架蛋白,對細胞凋亡、遷移、侵襲、趨化、周期以及分化具有特異性的調控作用,并與多個信號通路有聯系[8]。國內周森君[9]發現,NEDD9敲減后肝癌細胞的遷移和侵襲能力明顯下降,而NEDD9過表達能增強肝癌細胞株遷移和侵襲能力。韋林等[10]的研究結果顯示,NEDD9在食管癌組織中特異性高表達,參與食管癌的侵襲、轉移,并與食管癌預后相關。Sima等[11]的研究發現,過表達NEDD9可通過酪氨酸磷酸化FAK和SRC促進宮頸癌的遷移和侵襲。本研究中,結腸癌組織NEDD9 mRNA表達明顯高于相應癌旁組織。細胞學實驗表明,結腸癌Caco-2細胞轉染NEDD9 siRNA后,NEDD9 mRNA表達較對照組明顯降低,細胞增殖明顯下降,凋亡率明顯增加。提示NEDD9表達可能與結腸癌的發生、進展有關。進一步行蛋白質印跡法發現,siRNA干擾72 h后,Bcl-2蛋白表達明顯降低,Bax蛋白表達明顯增加。而Bcl-2、Bax水平及其比值對癌細胞接受凋亡信號起有關鍵作用,說明siRNA可能通過Bcl-2/Bax信號通路來調控細胞凋亡。

已有研究表明,腫瘤細胞外基質的消化與腫瘤侵襲有關。腫瘤細胞分泌的MMP家族成員可降解細胞外基質成分,而內源性TIMP1為MMP的重要抑制劑。因此,MMP-9和TIMP1表達變化是癌細胞遷移和侵襲的重要原因[12-13]。已有研究[14]表明,沉默NEDD9可下調MMP-9表達,進而抑制腫瘤的侵襲能力。本研究中,siRNA干擾NEDD9基因表達后,結腸癌Caco-2細胞遷移和侵襲能力明顯降低,且MMP-9表達明顯下調,TIMP1表達明顯上調。因此,降低NEDD9基因表達可進一步調控MMP-9和TIMP1表達,從而抑制Caco-2細胞的遷移和侵襲。

總之,沉默NEDD9基因可通過凋亡相關基因Bcl-2和Bax以及侵襲相關基因MMP-9和TIMP1來調控結腸癌Caco-2細胞的增殖、凋亡、遷移和侵襲能力。故抑制NEDD9基因表達有望成為結腸癌基因治療的新策略。

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