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耳蝸螺旋動(dòng)脈上連接蛋白43與老年性耳聾的關(guān)系研究

2019-09-23 02:51:00司超張治平范志茹張亮李麗司軍強(qiáng)李新芝馬克濤
中國全科醫(yī)學(xué) 2019年27期
關(guān)鍵詞:意義血清差異

司超 ,張治平 ,范志茹 ,張亮 ,李麗 ,司軍強(qiáng) ,李新芝 ,馬克濤 *

老年性耳聾是指隨著年齡的增長而緩慢出現(xiàn)聽力閾值增加的疾病[1-3]。耳蝸螺旋動(dòng)脈(SMA)是供應(yīng)耳蝸血液循環(huán)系統(tǒng)的唯一動(dòng)脈[4]。研究發(fā)現(xiàn),耳蝸血流量減少、機(jī)體缺氧和炎性反應(yīng),與老年性耳聾的聽力損傷關(guān)系密切[5]。SMA上相鄰的細(xì)胞間存在大量的縫隙連接通道,細(xì)胞間的通訊依賴于縫隙連接[6-7],連接蛋白(Cx)是構(gòu)成縫隙連接的基本單位,在血管壁上Cx43的表達(dá)尤為豐富[8-9]。AAP10為縫隙連接的激動(dòng)劑,可以增強(qiáng)縫隙連接的功能及表達(dá)。研究證明,耳蝸外側(cè)壁螺旋韌帶上Cx26、Cx30表達(dá)下調(diào)可導(dǎo)致耳蝸內(nèi)電位減少和聽力損失[10],而SMA上Cx43隨年齡變化的特點(diǎn)尚不清楚。因此,本實(shí)驗(yàn)通過研究D-半乳糖(D-gal)致豚鼠和原代平滑肌細(xì)胞衰老情況下SMA上Cx43的表達(dá)變化,探討Cx43在老年性耳聾中可能發(fā)揮的作用。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及研究時(shí)間 無耳疾3月齡SPF級(jí)豚鼠36只,雌雄不拘,購自新疆醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心,動(dòng)物使用許可證批號(hào):CXK New(2003-0001)。所有豚鼠低噪音環(huán)境下常規(guī)飼養(yǎng),溫度20 ℃,濕度45 %。飼養(yǎng)及實(shí)驗(yàn)過程嚴(yán)格按照《石河子大學(xué)醫(yī)學(xué)倫理委員會(huì)條例》進(jìn)行。研究時(shí)間為2018年5月。

1.2 主要試劑及儀器 D-gal、牛血清白蛋白(BSA)(美國Sigma公司);超氧化物歧化酶(SOD)測(cè)定試劑盒、丙二醛(MDA)測(cè)定試劑盒(南京建成生物工程研究所);DMED/F-12培養(yǎng)基、胎牛血清(FBS)(美國Hyclone公司);DAPI溶液(北京索萊寶科技有限公司);小鼠單克隆Cx43抗體、平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-SM-actin)抗體(美國Abcam公司);Connexin 43 FITC標(biāo)記二抗(北京聯(lián)科生物公司);AAP10(杭州中肽生化有限公司)、RNeasy Mini Kit試劑盒(德國 QIAGEN 公司);β-actin一抗、二抗(北京中杉金橋公司);激光共聚焦顯微鏡(LSM510,德國Carl Zeiss公司)、CFX96Touch熒光定量PCR檢測(cè)系統(tǒng)(Bio-Rad美國)。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 豚鼠衰老模型的制備 將豚鼠隨機(jī)分為Control組、NS組及D-gal組,每組12只。D-gal組在正常飼養(yǎng)的基礎(chǔ)上,頸背部皮下注射D-gal 500 mg·kg-1·d-1;NS組在正常飼養(yǎng)的基礎(chǔ)上,頸背部皮下注射0.9%氯化鈉溶液(體積等同D-gal組);Control組正常飼養(yǎng),不做任何處理;共6周。

1.3.2 原代SMA血管平滑肌細(xì)胞(VSMCs)培養(yǎng) 取Control組豚鼠交配產(chǎn)下的新生豚鼠3只,麻醉后脫頸處死,無菌條件下迅速分離SMA,磷酸鹽緩沖液(PBS)沖洗后,于EP管中剪成4 mm左右的小塊,滴入少量含20% FBS的DMEM/F-12培養(yǎng)基后,均勻置于培養(yǎng)皿底部,將培養(yǎng)皿倒扣于培養(yǎng)箱內(nèi),2 h后將培養(yǎng)皿翻轉(zhuǎn)并加入含20% FBS的DMEM/F-12培養(yǎng)基3 ml,培養(yǎng)箱內(nèi)靜置3 d,3 d后進(jìn)行換液,6 d后可見細(xì)胞自組織塊邊緣處長出,細(xì)胞呈梭形,并呈“谷-峰狀”分布,待細(xì)胞長滿培養(yǎng)皿底的90%后,進(jìn)行傳代。

1.3.3 細(xì)胞衰老模型制備 取第3代原代培養(yǎng)的SMA VSMCs進(jìn)行細(xì)胞衰老模型的制備。對(duì)照組為正常培養(yǎng)48 h;衰老組為在正常培養(yǎng)基礎(chǔ)上加入30 g/L D-gal培養(yǎng)48 h;AAP10組為在正常培養(yǎng)基礎(chǔ)上加入100 nmol/L AAP10預(yù)處理,而后加入30 g/L D-gal培養(yǎng)48 h;收集各組細(xì)胞置于-80 ℃冰箱備用。

1.3.4 Morris水迷宮測(cè)試實(shí)驗(yàn) 圓形水池均分為4個(gè)象限,灌入適量清水后將圓柱平臺(tái)置于第三象限中心處。豚鼠于平臺(tái)對(duì)側(cè)象限放入池內(nèi),每次60 s或當(dāng)其找到平臺(tái)時(shí)訓(xùn)練結(jié)束(60 s內(nèi)),2次/d,共訓(xùn)練 5 d。每只豚鼠找到平臺(tái)的時(shí)間即為逃避潛伏期(若在60 s內(nèi)未找到平臺(tái),則記為60 s)。第6天時(shí)移去平臺(tái),記錄60 s內(nèi)豚鼠穿越平臺(tái)的次數(shù)。

1.3.5 聽性腦干反應(yīng)(ABR)檢測(cè) 采用2%戊巴比妥鈉將豚鼠麻醉后置于測(cè)試室內(nèi),銀質(zhì)電極分別置于其頂部、雙側(cè)耳乳突部及鼻尖。短聲刺激雙耳并記錄閾值,刺激由70 dB nHL開始遞減,掃描時(shí)間10 μs,疊加次數(shù)1 024,刺激間隔11.10次/s,測(cè)得閾值時(shí)停止檢測(cè)。觀察各組豚鼠ABR閾值的變化。

1.3.6 超氧化物歧化酶(SOD)活性、丙二醛(MDA)水平檢測(cè) 各組豚鼠麻醉后,心臟采血,離心法分離血清備用。采血后處死豚鼠,迅速分離肝組織、腦組織和SMA,置于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆茫话凑誗OD、MDA檢測(cè)試劑盒說明書進(jìn)行相關(guān)檢測(cè)。計(jì)算各組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性、MDA水平,以及各組VSMCs內(nèi)SOD活性、MDA水平。

1.3.7 qRT-PCR法檢測(cè)各組豚鼠SMA上Cx43 mRNA表達(dá)水平 取各組豚鼠SMA,采用RNeasy Mini Kit試劑盒提取總RNA,經(jīng)70 ℃預(yù)變性5 min,42 ℃退火60 min,4 ℃延伸5 min反轉(zhuǎn)錄為cDNA后,擴(kuò)增目的基因和內(nèi)參。Cx43:上游引物5'-GCTCCACTCTCGCTATGTC-3',下游引物:5'-TAGTTCGCCCAGTTTTGCTC-3',長度1 1 3 b p;β-a c t i n:上游引物5'-CGTAAAGACCTCTATGCCAACA-3', 下游引物5'-AGCCACCAATCCACACAGAG-3', 長 度 163 bp;qRT-PCR反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性 2 min,94 ℃變性30 s,55 ℃退火 30 s,循環(huán) 40 次。采用2-ΔΔCt法對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。

1.3.8 Western blotting法檢測(cè)豚鼠SMA上Cx43表達(dá)水平 收集各組豚鼠SMA置于EP管中剪碎,加入蛋白裂解液充分裂解,離心后取上清液,BCA法測(cè)蛋白濃度后加入上樣緩沖液,煮沸變性。經(jīng)電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉后,依次孵育β-actin一抗、Cx43一抗(1∶1 000)、二抗(1∶20 000)。暗室中曝光,采集圖像后進(jìn)行分析。

1.3.9 免疫熒光技術(shù)鑒定原代VSMCs細(xì)胞、觀察Cx43表達(dá)和分布情況 取第三代細(xì)胞進(jìn)行爬片和干預(yù),經(jīng)固定、透化、封閉后,分別加入α-SM-actin一抗和Cx43一抗過夜。次日加入熒光二抗和DAPI溶液染核后封片,應(yīng)用激光共聚焦顯微鏡采像。

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,Graphpad Prism 6.01軟件繪制圖表。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以(±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn);多組間不同時(shí)間點(diǎn)比較采用多因素重復(fù)測(cè)量方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 三組豚鼠測(cè)試第1、2、3、4、5天逃避潛伏期比較 組別與時(shí)間在逃避潛伏期中存在交互作用(F交互=6.99,P交互<0.05);組別與時(shí)間在逃避潛伏期中主效應(yīng)顯著(F組間=53.43,F(xiàn)時(shí)間=38.15;P組間<0.05,P時(shí)間<0.05)。三組豚鼠測(cè)試第1、2天逃避潛伏期比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。三組豚鼠測(cè)試第3、4、5天逃避潛伏期比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);其中D-gal組豚鼠測(cè)試第3、4、5天逃避潛伏期長于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);Control組和NS組豚鼠測(cè)試第3、4、5天逃避潛伏期比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖1)。

2.2 三組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)比較 三組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=26.71,P<0.01);其中D-gal組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)少于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);Control組和NS組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖2)。2.3 三組豚鼠ABR閾值比較 三組豚鼠ABR閾值比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=35.31,P<0.01);其中D-gal組豚鼠ABR閾值高于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);Control組和NS組豚鼠ABR閾值比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖3)。

圖1 三組豚鼠測(cè)試第1、2、3、4、5天逃避潛伏期比較Figure 1 Comparison of the escape latency in three groups on day 1,2,3,4 and 5

圖2 三組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)比較Figure 2 Comparison of the number of times of crossing the platform in three groups on day 6

圖3 三組豚鼠ABR閾值比較Figure 3 Comparison of ABR threshold in three groups

2.4 三組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性、MDA水平比較 三組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F肝組織=52.94,P肝組織<0.01;F腦組織=148.40,P腦組織<0.01;F血清=115.60,P血清<0.01);其中D-gal組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性低于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);Control組和NS組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖4)。

三組豚鼠肝組織、腦組織、血清MDA水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F肝組織=116.10,P肝組織<0.01;F腦組織=26.43,P腦組織<0.01;F血清=52.53,P血清<0.01);其中D-gal組豚鼠肝組織、腦組織、血清MDA水平高于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);Control組和NS組豚鼠肝組織、腦組織、血清MDA水平比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖5)。

2.5 對(duì)照組、衰老組、AAP10組VSMCs內(nèi)SOD活性、MDA水平比較 對(duì)照組、衰老組、AAP10組VSMCs內(nèi)SOD活性、MDA水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(FSOD=64.19,P<0.01;FMDA=80.42,P<0.01); 其 中衰老組VSMCs內(nèi)SOD活性低于對(duì)照組和AAP10組,MDA水平高于對(duì)照組和AAP10組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);AAP10組VSMCs內(nèi)SOD活性低于對(duì)照組,MDA水平高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01,見圖6)。

圖6 對(duì)照組、衰老組和AAP10組細(xì)胞VSMCs內(nèi)SOD活性、MDA水平比較Figure 6 Comparison of SOD activity and MDA level in VSMCs in three groups

圖4 三組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性Figure 4 SOD activity of liver tissue,brain tissue and serum in three groups

圖5 三組豚鼠肝組織、腦組織、血清MDA水平Figure 5 MDA level of liver tissue,brain tissue and serum in three groups

2.6 三組豚鼠SMA上Cx43 mRNA表達(dá)水平 三組豚鼠SMA上Cx43 mRNA表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=221.40,P<0.01);D-gal組 豚 鼠 SMA上 Cx43 mRNA表達(dá)水平低于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);Control組和NS組豚鼠SMA上Cx43 mRNA表達(dá)水平比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖7)。

圖7 三組豚鼠SMA上Cx43 mRNA表達(dá)水平Figure 7 Expression of Cx43 mRNA on SMA in three groups

2.7 三組豚鼠SMA上Cx43蛋白表達(dá)水平比較 三組豚鼠SMA上Cx43蛋白表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=221.40,P<0.01);其中 D-gal組豚鼠SMA上Cx43蛋白表達(dá)水平低于Control組和NS組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);Control組和NS組豚鼠SMA上Cx43 蛋白表達(dá)水平比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見圖 8~9)。

2.8 原代VSMCs鑒定及對(duì)照組、衰老組、AAP10組VSMCs中Cx43表達(dá)水平比較 細(xì)胞免疫熒光結(jié)果顯示,在原代培養(yǎng)的細(xì)胞中,VSMCs特異性表達(dá)的肌動(dòng)蛋白(α-SM-actin,即綠色熒光),陽性表達(dá)率達(dá)90%以上(見圖10)。對(duì)照組、衰老組、AAP10組VSMCs中Cx43表達(dá)水平比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=477.60,P<0.01);其中衰老組VSMCs中Cx43表達(dá)水平低于對(duì)照組和AAP10組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);AAP10組VSMCs中Cx43表達(dá)水平低于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見圖11~12)。

圖8 三組豚鼠SMA上Cx43表達(dá)電泳圖Figure 8 Electrophoresis pattern of Cx43 expression on SMA in three groups

圖9 三組豚鼠SMA上Cx43表達(dá)水平Figure 9 Expression of Cx43 on SMA in three groups

圖10 原代平滑肌細(xì)胞免疫熒光染色圖(×200)Figure 10 Immunofluorescence staining of primary smooth muscle cells

圖12 對(duì)照組、衰老組、AAP10組VSMCs中Cx43表達(dá)水平比較Figure 12 Comparison of Cx43 expression in VSMCs among the control group,aged group and AAP10 group

3 討論

目前制備衰老模型的主要方法有D-gal給藥法[11]、快速老化小鼠[12]等,其中D-gal給藥法因?yàn)槠涑赡:臅r(shí)短、價(jià)格低廉和結(jié)果穩(wěn)定的優(yōu)點(diǎn),已被廣泛應(yīng)用于國內(nèi)外相關(guān)研究[13-15],其主要的機(jī)制是短時(shí)間內(nèi)大量注射D-gal,使細(xì)胞內(nèi)半乳糖含量增高,半乳糖在體內(nèi)被還原成無法通過細(xì)胞膜進(jìn)行代謝的半乳糖醇,從而在細(xì)胞內(nèi)聚集,影響細(xì)胞滲透壓,導(dǎo)致組織腫脹、功能障礙、代謝異常,最終機(jī)體發(fā)生衰老[11,16];此外,D-gal在機(jī)體作用下產(chǎn)生O2-和H2O2等大量活性氧,導(dǎo)致SOD活性下降和MDA水平升高,進(jìn)而引起機(jī)體老化[17-18]。本實(shí)驗(yàn)Morris水迷宮行為測(cè)試顯示,D-gal組豚鼠測(cè)試第3、4、5天逃避潛伏期長于Control組和NS組,D-gal組豚鼠測(cè)試第6天穿越平臺(tái)次數(shù)少于Control組和NS組;表明D-gal組豚鼠腦功能下降,而Control組和NS組均無明顯變化,說明D-gal組豚鼠體內(nèi)自由基含量增加,引起豚鼠機(jī)體老化,衰老模型制備成功。D-gal造模完成后,D-gal組豚鼠肝組織、腦組織、血清SOD活性顯著降低,MDA水平顯著升高。有研究顯示,在CBA小鼠和FBN大鼠衰老模型中,ABR閾值隨年齡增長而升高[19-20]。本實(shí)驗(yàn)對(duì)各組豚鼠ABR閾值檢測(cè)結(jié)果分析發(fā)現(xiàn),D-gal組豚鼠ABR閾值較Control組和NS組明顯升高,提示D-gal組豚鼠出現(xiàn)老年性耳聾。

耳蝸的血液供應(yīng)來自SMA,SMA功能的下降與耳蝸側(cè)壁血管紋損傷、耳蝸微循環(huán)缺血及聲音信號(hào)傳導(dǎo)障礙有著密切的聯(lián)系[21]。SMA由內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞組成,細(xì)胞間存在大量的縫隙連接,縫隙連接的存在對(duì)血管收縮和舒張功能至關(guān)重要[22]。有研究證明,血管是人體最先衰老的組織,主要表現(xiàn)為動(dòng)脈彈性降低、結(jié)構(gòu)重塑等[23-25]。

縫隙連接是一種細(xì)胞與細(xì)胞間的連接形式,由Cx組成,在機(jī)體內(nèi)廣泛表達(dá),耳蝸內(nèi)螺旋韌帶上主要表達(dá) Cx26、Cx30[10],血管壁上主要表達(dá) Cx37、Cx40、Cx43 及 Cx45[8-9,26]。耳蝸外側(cè)壁螺旋韌帶上 Cx26、Cx30表達(dá)下調(diào)可導(dǎo)致耳蝸內(nèi)電位減少和聽力損失[10];特異性敲除Cx37和Cx40將造成全身多器官的血管畸形[27];血管平滑肌細(xì)胞發(fā)生增殖時(shí)Cx43表達(dá)上升,抑制Cx43的表達(dá)可以限制新生內(nèi)膜的過度增生[28],說明縫隙連接在維持正常聽力和血管正常功能上有重要意義,但Cx43與年齡相關(guān)的聽力損失的關(guān)系尚不清楚。本實(shí)驗(yàn)利用免疫熒光技術(shù)和qRT-PCR、Western blotting法對(duì)各組豚鼠SMA和原代VSMCs上Cx43表達(dá)水平進(jìn)行檢測(cè),結(jié)果表明,D-gal組豚鼠SMA上Cx43 mRNA及Cx43表達(dá)水平均較Control組和NS組下降。衰老組VSMCs中Cx43表達(dá)水平低于對(duì)照組和AAP10組,AAP10組VSMCs中Cx43表達(dá)水平低于對(duì)照組,表明原代VSMCs經(jīng)D-gal干預(yù)后,Cx43蛋白熒光強(qiáng)度較對(duì)照組降低,給予縫隙連接激動(dòng)劑AAP10預(yù)處理后再給予D-gal干預(yù)可上調(diào)Cx43的表達(dá)。

綜上所述,本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)在D-gal致衰老的情況下,豚鼠SMA上Cx43表達(dá)的變化可能與老年性耳聾有關(guān),但是其具體的作用機(jī)制尚不清楚需進(jìn)一步研究,這為臨床后續(xù)的研究方向奠定了基礎(chǔ),也為老年性耳聾的預(yù)防和診治提供了新的方向。

注:連接蛋白=Cx;DAPI為細(xì)胞核DAPI染色(藍(lán)色熒光);Merge為Cx43在VSMCs的表達(dá)與細(xì)胞核DAPI染色的重疊

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