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I群禽腺病毒4型IgG抗體間接ELISA檢測方法的建立

2019-09-06 03:22:28張啟龍孫丹韋海濤宋彥軍周德剛馮小宇王林
中國獸藥雜志 2019年8期
關鍵詞:血清檢測

張啟龍,孫丹,韋海濤,宋彥軍,周德剛,馮小宇,王林*

(1.北京市動物疫病預防控制中心,北京 102629;2.北京市獸藥監察所,北京 102629)

肝炎-心包積液綜合征(Hepatitis and hydropericardium syndrome,HHS)是由禽腺病毒4型(Fowl adenovirus serotype 4, FAdV-4)新基因型引起的以禽心包積液、肝臟黃染、腫大和出血為特征的傳染病[1]。HHS首次于1987年在巴基斯坦的安卡拉地區發生,又名安卡拉病,隨后在亞洲、歐洲和南美洲等地區流行[2-4]。2013年以來該病在我國河南、山東、江蘇、河北、陜西等地大面積流行,給家禽養殖業造成了巨大經濟損失[5-7]。FAdV-4屬于禽腺病毒Ⅰ群,呈二十面體對稱結構,病毒粒子大小在70~90nm[8]。FAdV-4病毒粒子有252個衣殼粒,包含240個六鄰體(Hexon)和12個五鄰體(頂點衣殼粒)[9]。研究表明,Hexon蛋白是特異性抗原決定簇,可以引發極強的中和反應,當六鄰體發生變異將導致中和免疫的缺失,可作為診斷型和群的首選蛋白[10-11]。FAdV-4的Hexon抗原表位主要集中在前段、中段,推測其具有型和群特異性表位[12-13]。為此,本試驗利用前期重組表達的FAdV-4 Hexon蛋白作為包被抗原,通過一系列條件的優化,建立I群FAdV-4 IgG抗體間接ELISA檢測方法,為臨床檢測和有效防控提供技術支撐。

1 材 料

1.1 抗原與對照抗體 純化重組Hexon蛋白,由北京市動物疫病預防控制中心制備;I群FAdV-4 IgG陰、陽性對照抗體,由河北農業大學提供。

1.2 試劑 0.05 mol/L PBS、PBST均購自Thermo Scientific公司; HRP-兔抗雞二抗購自Sigma公司;底物溶液購自湖州生物技術有限公司;PCR引物由上海生工生物工程股份有限公司合成。

1.3 臨床樣品 臨床樣品由北京市動物疫病預防控制中心采集。

2 方 法

2.1 FAdV-4抗體間接ELISA操作基本方法 將純化的重組Hexon蛋白用0.05 mol/L的碳酸鹽緩沖液稀釋后包被96孔酶標板,每孔100 μL,37 ℃孵育5 h后2~8 ℃作用14~18 h。棄去孔中的包被液,每孔加入250 μL PBST洗滌酶標板5次,每次3 min。按每孔200 μL加入封閉液,37 ℃封閉2 h后棄去,每孔加入250 μL PBST洗滌酶標板1次,每次3 min。加入待檢樣品,100 μL/孔,37 ℃孵育30~120 min。棄去液體,每孔加入250 μL PBST洗滌酶標板5次,每次3 min。加入稀釋的HRP-兔抗雞二抗,100 μL/孔,置37 ℃孵育30~120 min。棄去液體,每孔加入250 μL PBST洗滌酶標板5次,每次5 min。每孔加入底物顯色液100 μL,37 ℃避光顯色5~15 min,然后每孔加入2 mol/L H2SO4溶液50 μL,終止反應。利用酶標儀測定每孔OD450nm吸光值。

2.2 抗原最佳包被濃度及最佳樣品稀釋度的確定

用棋盤法對重組Hexon蛋白包被濃度和FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照稀釋度進行優化:包被液濃度從8 μg/mL倍比稀釋至0.5 μg/mL,100 μL/孔。FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照分別以PBST做1∶100、1∶200、1∶400、1∶800、1∶1600稀釋,做方陣試驗。根據P/N值(陽性樣品OD450nm/陰性樣品OD450nm)篩選出抗原最佳包被濃度和樣品最佳稀釋度。

2.3 最佳封閉液的選擇 在不包被Hexon蛋白和包被Hexon蛋白后,分別以1%牛血清白蛋白(BSA)、5%脫脂乳、10%馬血清和1%明膠作為封閉液進行封閉。檢測FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照,根據P/N值選擇最佳封閉液。

2.3.1 直接封閉 不包被任何蛋白,每孔加入300 μL相應封閉液,37 ℃封閉2 h。

2.3.2 包被后封閉 以1 μg/mL的純化重組Hexon蛋白包被ELISA板,分別用不同的封閉液封閉,每孔加300 μL,37 ℃封閉2 h。

2.4 樣品孵育時間的優化 將FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照的孵育時間設置30 min、60 min、90 min、120 min四個梯度,分別進行FAdV-4 ELISA試驗,根據P/N值結果篩選出最佳樣品孵育時間。

2.5 HRP-兔抗雞二抗最佳工作濃度的測定 將HRP-兔抗雞二抗分別進行1∶2000、1∶4000、1∶8000和1∶16000倍稀釋,按照以上操作程序進行FAdV-4 ELISA試驗,根據P/N值結果篩選出二抗最佳工作濃度。

2.6 HRP-兔抗雞二抗最佳孵育時間的優化 將二抗以1∶8000稀釋后分別孵育30 min、60 min、90 min、120 min,按照以上操作程序進行FAdV-4 ELISA試驗,根據P/N值結果篩選純化二抗最佳工作時間。

2.7 底物(TMB)反應時間的優化 將底物的作用時間分別設置為5 min、7 min、10 min、15 min,按照以上操作程序進行FAdV-4 ELISA試驗,根據P/N值結果篩選出底物最佳作用時間。

2.8 臨床樣品檢測 采集160只臨床雞只血清進行新建間接ELISA方法檢測,同時對雞只采集拭子依據《Ⅰ群血清4型禽腺病毒核酸PCR檢測技術規程》(DB 34/T 3121-2018)進行PCR檢測,對比兩種方法的一致性。

3 結果與分析

3.1 抗原最佳包被濃度及最佳樣品稀釋度的確定

不同濃度的抗原和不同稀釋度的FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照按正交試驗的方法進行組合,每組設置2個重復取平均值。由表1可知,在抗原包被濃度為1 μg/mL,FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照稀釋400倍時,P/N值最大,非特異性最小,試驗的靈敏度最高,所以確定包被抗原的濃度為1 μg/mL,FAdV-4 IgG抗體陰、陽性對照稀釋400倍時檢測效果最佳。

表1 包被濃度和樣品稀釋度的確定

3.2 最佳封閉液的選擇 如表2所示,在不包被任何蛋白的情況下,用1%明膠、10%馬血清封閉時,FAdV-4 IgG抗體陽性對照的OD450nm值較高,都在0.5以上,表明FAdV-4 IgG抗體陽性對照與封閉液之間存在非特異性結合。而用5%脫脂奶和1% BSA封閉時,FAdV-4 IgG抗體陽性對照的OD450nm值基本都在0.2以下,表明FAdV-4 IgG抗體陽性對照與這兩種封閉液之間的非特異性結合程度較小。在包被Hexon蛋白抗原后,用1% BSA和5%脫脂奶進行封閉,陰陽性區分明顯,表明1% BSA和5%脫脂奶作為封閉液時對抗原抗體特異性結合干擾較小,選擇P/N值較大的1% BSA作為最佳封閉液。

表2 最佳封閉液的確定

3.3 樣品孵育時間的優化 在以上優化的基礎上,按確定的抗原包被條件、樣品稀釋度及最佳封閉液,將抗原和抗體作用的時間分別設為30 min、60 min、90 min和120 min,其他條件相同,選擇樣品最佳孵育時間。結果見表3,發現樣品作用時間為30 min時P/N值最小,作用60 min、90 min和120 min時P/N接近,考慮到ELISA反應時間越短越便利,因此選擇60 min為最佳樣品孵育時間。

3.4 HRP-兔抗雞二抗最佳稀釋度的確定 將酶標二抗按1∶2000、1∶4000、1∶8000和1∶16000倍稀釋加入酶標板中,其他條件相同,選擇最佳二抗稀釋度,結果發現HRP-兔抗雞二抗稀釋度為1∶8000時,P/N的比值最大,因此HRP-兔抗雞二抗抗體的最佳稀釋度為1∶8000,結果見表4。

3.5 HRP-兔抗雞二抗最佳反應時間的確定 在以上優化的條件下,試驗酶標二抗不同孵育時間的P/N值。結果如表5所示,當酶標二抗反應時間為60 min時,P/N值最大,因此酶標二抗最佳反應時間為60 min。

3.6 底物(TMB)顯色時間的確定 結果如表6顯示,當顯色反應為10 min時,P/N的值最大,因此底物(TMB)最佳顯色時間為10 min。

3.7 陰、陽性標準臨界值的確定 取50份FAdV4抗體為陰性的血清樣品,按照確定的條件進行間接ELISA,用酶標儀在450 nm波長下測定OD值,計算OD450nm的平均值及標準方差(s),為消除每次間接ELISA檢測時,試驗環境及操作的影響,每次檢測時加入標準陽性血清和標準陰性血清作為對照,陽性血清OD450nm約等于1.0,否則結果無效;經計算,50份陰性血清OD450nm的平均值為0.174,標準差s為0.0764,因此間接ELISA陰陽性的臨界值(平均值+3s)為0.403(表7),為計算方便定為0.4。因此,當樣品OD450nm≥0.4時,判定I群FAdV抗體水平為陽性,當樣品OD450nm<0.4時,判定I群FAdV抗體陰性。

表3 樣品反應時間的優化

表4 HRP-兔抗雞二抗最佳稀釋度的確定Tab 4 Determination of the optimal dilution ofHRP- rabbit anti - chicken secondary antibody

表5 HRP-兔抗雞二抗最佳反應時間的確定Tab 5 Determination of HRP- rabbit anti-chickensecond antibody optimal reaction time

表6 底物最佳顯色時間的確定

表7 陰陽性標準臨界值的確定Tab 7 Determination of negative and positive standard critical value

3.8 臨床樣品I群FAdV-4抗體的檢測 對160份臨床雞血清樣品,按照確定的條件進行間接ELISA檢測以及拭子PCR檢測,結果見表8。經分析統計兩者kappa值為0.924(P<0.001),結果表明兩種檢測方法一致性較好。160份血清樣本用建立的間接ELISA進行檢測有46份樣本為陽性,血清陽性率為28.75%,說明北京市部分雞群中存在I群FAdV-4感染。

表8 兩種方法檢測臨床樣品的一致性結果

4 討論與結論

HHS是主要由FAdV-4引起的一種具有高度傳染性和高死亡率的新型家禽疾病。2000年前后,國內報道的FAdV病毒的血清型主要為1型、2型、8型、9型、10型和12型。2012年FAdV-4引起的HHS在我國許多地區零星散發,2013年呈現出暴發式增長[14-16],2015-2018年國內報道的FAdV的血清型仍然主要是4型[17-20]。

FAdV-4病毒衣殼蛋白主要由六鄰體、纖突蛋白、五鄰體和五鄰體周圍蛋白等構成。六鄰體是腺病毒最豐富的結構蛋白,含有大量的型特異性抗原,同時也是病毒對免疫壓力最弱的地方[21]。本研究利用前期分離到I群FAdV-4 新基因型克隆表達的Hexon蛋白作為包被抗原,建立了FAdV-4 ELISA檢測方法,并對該檢測方法的各個步驟進行了條件優化,確定該檢測方法的最適條件:樣品稀釋400倍檢測;抗原最佳包被濃度為1 μg/mL;最適合的封閉液為含1% BSA的磷酸鹽緩沖液;最合適的樣品孵育時間為1 h;最適合的二抗稀釋濃度和反應時間為1∶8000稀釋反應1 h;最適合的底物顯示時間為10 min。取50份FAdV4抗體為陰性的血清樣品進行ELISA檢測,通過平均值+3s的方法計算確定本ELISA方法的臨界值為0.4。

目前國內I群FAdV-4尚沒有相關血清學檢測標準,根據專業知識,血清學檢測與病原學檢測存在較大相關性,故本研究在臨床樣品檢測階段與現有PCR方法進行了一致性比較,結果較好。在當前我國尚未使用疫苗對HHS進行普遍防疫的情況下,加強HHS血清流行病學調查,可為HHS早期有效的防控措施提供指導。ELISA具有快速、可操作性強、高通量等優點,常被作為血清流行病學調查的主要方法。部分臨床樣品檢測表明北京市雞群存在FAdV-4感染,應當引起重視,及時采取有效防控措施。

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