Aβ1-42寡聚體對α-syn過表達SHSY5YA53T細胞自噬功能的影響☆

郭曼莉 高玉元 張晴曦 聶坤 王麗娟

帕金森病（Parkinson disease，PD）是最常見的神經退行性疾病之一，其主要的病理改變是黑質-紋狀體多巴胺能神經元的脫失。α-突觸核蛋白（alpha-synuclein，α-syn）異常聚集形成的的路易小體，與神經元的死亡密切相關[1]。α-突觸核蛋白基因（SNCA）A53T點突變是家族性PD常見致病突變類型[2-3]。β淀粉樣蛋白（Aβ）級學說是阿爾茲海默病（Alzheimer disease，AD）的主流學說，Aβ1-42是AD主要病理成分，有多種聚合形態，其中Aβ1-42寡聚體毒性最強。研究表明，Aβ1-42參與PD的病理發病過程，與PD患者認知損害和步態障礙相關[4-5]。Aβ1-42寡聚體可促進α-syn的聚集和神經元的死亡。自噬是神經元內重要的蛋白途徑，αsyn的自噬性降解障礙被認為是PD的重要病理過程。Aβ1-42對PD自噬功能的影響鮮有文獻報道。本研究將建立α-synA53T過表達的帕金森病體外模型，檢測Aβ1-42寡聚體處理前后細胞自噬相關蛋白 p62、LC3、Beclin-1的變化，以探究 Aβ1-42寡聚體在PD中對細胞自噬的影響。

1 材料與方法

1.1 細胞培養SHSY5Y細胞由廣州賽庫生物技術有限公司進行STR鑒定，以含體積分數0.10的胎牛血清、100 U/mL的青鏈霉素雙抗的DMEM/F-12培養基培養，置于37°C、含體積分數0.05的CO2培養箱中傳代培養，每2～3 d傳代1次。

1.2 細胞慢病毒轉染在轉染前1 d，將處于對數生長期的SHSY5Y細胞按每孔105個細胞接種于24孔板中，使其在轉染次日達到80%的融合度。24 h后吸去舊培養液，加入新的無血清培養液，在培養液中分別加入純化的攜帶SNCAA53T慢病毒液和攜帶空載體病毒液 （廣州復能基因有限公司），12 h更換為含 10%FBS的 DMEM/F12培養基繼續培養;慢病毒感染72 h后，細胞培養時加入終濃度為 1 μg/mL嘌呤霉素篩選 SNCAA53T穩定過表達的 SHSY5Y細胞（SHSY5YA53T組），以及空載體對照細胞（SHSY5YCON組），細胞繼續擴增培養。

1.3 熒光實時定量PCR(RT-qPCR)法檢測SNCA在SHSY5Y細胞中的表達細胞轉染慢病毒后嘌呤霉素篩選 7 d，將 SHSY5YA53T組，SHSY5YCON組，SHSY5Y正常細胞組細胞用Trizol法提取總RNA，進行逆轉錄和熒光實時定量PCR擴增，以檢測SNCAmRNA的表達情況。引物使用Primer-BLAST在線設計，華大基因科技有限公司合成。SNCA引物的上游序列為：5'-AA GAGGGTGTTCTCTATGTAGGC-3'，下游序列為：5'-GCTCCTCCAACATTTGTCACTT-3'；內參照ACTB引物的上游序列為：5'-GGCACCCAGCACAATGAAG-3'，下游序列為：5'-CCGATCCACACGGAGTACTTG-3'。 qPCR 反應參數為：95°C 預變性 30 s，95°C 5 s、60°C 30 s，循環 40 次。

1.4 CCK-8法檢測細胞增殖將處于對數生長期的細胞按每孔105接種于96孔板中，加入不同濃度的 Aβ1-42寡聚體，置于 37°C、體積分數 0.05 CO2。培養箱中培養24 h后，每孔加入 10 μL CCK-8溶液，細胞培養箱內繼續避光孵育4 h;在酶標儀450 nm測定吸光度。

1.5 Aβ1-42寡聚體的制備[6-7]冰上用HFIF將Aβ1-42多肽（英國ABCAM）充分溶解至1mmol/L，室溫下于通風處內揮發過夜，制備得Aβ1-42肽膜。使用時用預冷的無水DMSO溶解肽膜至5 mmol/L，加入PBS獲得100 μmol/L的Aβ1-42單體母液。取適量的Aβ1-42單體母液于4℃放置24 h，制備得Aβ1-42寡聚體。

1.6 細胞接種與處理細胞吹打制成單細胞懸液，用DMEM/F-12培養液將細胞密度稀釋為1×106/L，每孔2000 μL接種至多聚-L-賴氨酸預處理的6孔板中，于37°C、含體積分數0.05的 CO2培養箱中培養。分組處理：A53T組：無血清培養基孵育SHSY5YA53T24 h；CON組：無血清培養基孵育SHSY5YNC24 h；A53T+Aβ 單組：10 μmol/L 的Aβ1-42單體孵育SHSY5YA53T24h；CON+Aβ單組： 用10 μmol/L的Aβ1-42單體孵育SHSY5YNC24 h。A53T+Aβ寡組：10 μmol/L 的 Aβ1-42寡聚體孵育SHSY5YA53T24 h；CON+Aβ 寡組：用 10 μmol/L 的Aβ1-42寡聚體孵育SHSY5YNC24 h。

1.7 Western blot法測定 p62、LC3、Beclin-1 表達變化 各組細胞處理后，使用RIPA（碧云天）裂解提取總蛋白，用BCA法進行蛋白定量后，按20 μg加樣量進行免疫沉淀。SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白，濕轉法電轉移到PVDF膜上，將PVDF膜用脫脂奶粉常溫封閉2 h，分別置于p62（1：1000，CST，兔多克隆抗體）、LC3 一抗(1∶1000，CST)、Beclin-1(1：1000，CST)、GAPDH 一抗(1：10000，CST)孵育，4°C搖床過夜，然后與 HRP標記的山羊抗兔二抗(1∶10000)室溫孵育1 h后，用 ECL化學發光試劑盒曝光顯色，條帶的強弱用ImageJ分析軟件進行灰度分析。以 Beclin-1、p62、LC3-Ⅱ與GAPDH的平均灰度的比值表示 Beclin-1、p62、LC3-Ⅱ蛋白的表達水平。

1.8 統計學方法采用GraphPad Prism6軟件進行統計分析，實驗結果以±s表示，兩組間比較采用單因素方差分析。檢驗水準α=0.05。

2 結果

2.1 外源SNCA在SHSY5Y細胞中的表達細胞轉染慢病毒后嘌呤霉素篩選7 d，SHSY5YA53T組mRNA和α-syn表達水平較SHSY5Y組明顯增高（P＜0.05），基因過表達 41 倍。 SHSY5YCON組和SHSY5Y正常細胞比較無統計學意義 （P＞0.05）。SNCAmRNA RT-qPCR結果和α-syn Western blot結果見圖1。

圖1 外源α-syn基因在SHSY5Y細胞中的表達 A為SNCA mRNA在各組細胞中的表達；B為α-syn在各組細胞中的表達量。 *P＜0.05

2.2 SHSY5Y組、SHSY5YCON 組、SHSY5YA53T組細胞增殖不受抑制SHSY5Y組、SHSY5YCON組、SHSY5YA53T組細胞分別接種至 96孔板，1×104細胞/孔，相同條件下培養，CCK-8法連續5日檢測細胞活力，結果顯示，各組細胞生長狀況良好。各組細胞增殖速度無統計學差異（P＞0.05）。

2.3 Aβ1-42寡聚體抑制細胞的增殖不同濃度的Aβ1-42寡聚體處理 SHSY5YCON組、SHSY5YA53T組細胞24 h，細胞的增殖均受抑制，隨著Aβ1-42寡聚體濃度的增加，細胞增殖的抑制效果更明顯。SHSY5YA53T組的抑制效果較SHSY5YCON組顯著。

圖2 不同濃度Aβ1-42寡聚體干預細胞24 h后細胞的活力檢測*：與 SHSY5YCON對照組相比，P＜0.05;#：與 0 μmmol/LAβ1-42寡聚體處理組相比，P＜0.05

2.4 細胞自噬相關蛋白的表達Western blot結果顯示，與SHSY5YCON對照組相比，Aβ1-42單體和寡聚體處理后，SHSY5YA53T組細胞Beclin-1和LC3-Ⅱ蛋白表達減少，差異有統計學意義（P＜0.05）見圖3。兩組間P62蛋白表達均有增加趨勢，差異無統計學意義（P=0.489）。

3 討論

本研究通過構建α-synA53T過表達的SHSY5Y細胞模型模擬PD神經元的病理特點，結果提示，α-synA53T過表達的SHSY5Y細胞，增殖存活率無明顯下降，α-synA53T過表達對細胞無明顯的毒性作用，PAL、SCARLATA等[8-9]研究認為只有在特定的氧化應激或炎癥等誘發因素干擾下，過表達αsyn才有細胞毒性作用。

圖3 Western Blot法檢測自噬相關蛋白的表達 A：自噬相關蛋白的表達情況；B：LC3-Ⅱ的相對表達水平；C：p62蛋白的相對表達水平；D：Beclin-1蛋白的相對表達水平 *P＜0.05，**P＜0.001

相關臨床研究發現與健康對照相比，Aβ1-42在PD患者腦組織中沉積增多[4]，且與PD患者認知損害和步態障礙相關[4-5]。GILBERT等[10]發現降低Aβ的表達可以延緩α-syn相關的神經退行性改變。本研究結果發現，Aβ1-42寡聚體處理后，αsynA53T過表達SHSY5Y細胞和對照組SHSY5Y細胞增殖受抑制，在兩組細胞中均具有明顯的細胞毒性，對α-synA53T過表達組細胞的毒性作用更顯著，與LIN等[11]研究結果相符。自噬是神經元清除異常折疊蛋白的重要途徑，在AD中，Aβ1-42可損害自噬功能引起tau蛋白的沉積[12-13]。本研究對比Aβ1-42寡聚體處理前后，SHSY5YA53T組和SHSY5YCON對照組自噬相關蛋白 LC3-Ⅱ，p62，Beclin-1的表達水平，SHSY5YA53T組LC3-Ⅱ蛋白和Beclin-1蛋白的表達相比對照組減少，p62蛋白表達未見統計學差異。 LC3-Ⅱ是目前最廣泛檢測的自噬指標，隨細胞內自噬功能激活增多，Beclin-1下調提示細胞自噬功能活性受抑制[14]。α-synA53T過表達的細胞中，Aβ1-42寡聚體可抑制細胞的自噬功能，在對照組細胞中，未觀察到自噬相關蛋白的改變。p62作為另一重要的自噬指標，可連接LC3-Ⅱ，介導泛素化底物的自噬性降解，本研究兩組細胞中，p62蛋白改變均不明顯，可能與p62蛋白變化的滯后性相關[15]。本研究設立Aβ1-42單體處理對照組，自噬蛋白變化趨勢與Aβ1-42寡聚體處理組相符，可能為細胞37℃孵育過程與寡聚化處理過程相似，Aβ1-42單體產生聚集[7]。

綜上所述，通過慢病毒轉染構建人α-synA53T過表達的SHSY5Y細胞模型，可以穩定模擬PD神經元α-syn過表達的病理表現，可作為PD發病機制研究的體外模型。Aβ1-42寡聚體抑制該細胞模型的存活和增殖，與對照組細胞相比，Aβ1-42寡聚體處理后，過表達組LC3-Ⅱ、Beclin-1自噬相關蛋白表達減少，提示Aβ1-42寡聚體通過抑制細胞的自噬功能在PD發病過程中促進神經元的死亡。本研究的不足之處是，Aβ1-42寡聚體在PD體外模型中抑制自噬相關蛋白Beclin-1、LC3-Ⅱ的表達，Aβ1-42寡聚體也可能是PD自噬功能受損的產物，后續研究仍需進一步探索Aβ1-42寡聚體在PD自噬損傷過程的具體機制。