電針刺激后大鼠血清對成骨細胞OPG、RANKL mRNA及其蛋白表達的影響

金俊健

電針刺激后大鼠血清對成骨細胞OPG、RANKL mRNA及其蛋白表達的影響

金俊健

(臨海市第二人民醫院,臨海 317016)

觀察電針刺激去卵巢骨質疏松癥模型大鼠的血清對體外培養成骨細胞的骨形成因子骨保護素(osteoprotegerin, OPG)和骨吸收因子(receptor activator for nuclear factor-kB ligand, RANKL)mRNA表達及其蛋白濃度的影響。將45只雌性SD大鼠,隨機分為空白組(A組)、模型組(B組)、電針刺激組(C組),每組15只。除A組外,B組、C組均切除雙側卵巢。造模成功后,C組給予電針刺激,B組正常飼養,A組不做任何處理,常規正常飼養。12周后,采用水合氯醛麻醉各組大鼠,心臟采血,經過處理后加到體外培養的大鼠成骨細胞培養液中。采用堿性磷酸酶(ALP)檢測成骨細胞活性,RT-qPCR法檢測大鼠血清對OPG、RANKL mRNA表達的影響,ELISA法檢測大鼠血清對OPG、RANKL蛋白濃度的影響。各組大鼠血清處理成骨細胞后,與A組比較,B組ALP的活性明顯降低(＜0.05),C組電刺激后成骨細胞內ALP的活性明顯增加(＜0.05)。與B組比較,A組及C組OPG mRNA表達及其蛋白濃度表達明顯降低(＜0.05);與A組比較,C組OPG mRNA表達及其蛋白濃度均明顯降低(＜0.05)。與B組比較,C組及A組RANKL mRNA表達及其蛋白濃度表達明顯降低(＜0.05);與A組比較,C組RANKL mRNA及蛋白濃度明顯降低(＜0.05)。C組大鼠骨密度明顯高于B組(＜0.05)。電刺激后的大鼠血清可以提升ALP、OPG水平,降低RANKL水平,其治療骨質疏松癥的機制可能與此有關。

針刺療法;電針;骨質疏松;成骨細胞;骨保護素;骨吸收因子;大鼠

隨著我國人口老齡化現象的加劇,患骨質疏松癥的人數在逐年增加[1],其嚴重威脅人們的身體健康及生存生活質量[2],因此積極尋找有效的防治方法具有重要意義。中醫是我國的瑰寶,其中應用針灸療法治療一些疾病具有顯著療效,近年來發現針灸治療骨質疏松癥具有一定的治療效果[3],并且通過電針刺激法治療骨質疏松癥也已經成為國內外專家學者的研究點。在骨質疏松癥發生發展過程中,OPG、RANKL系統在成骨細胞與破骨細胞相互調節的過程中起著重要作用。本文旨在通過研究電針刺激后的大鼠血清對體外培養的大鼠成骨細胞OPG、RANKL蛋白及mRNA表達的影響,探討電針刺激療法治療骨質疏松癥的機制。

1 材料和方法

1.1 實驗動物與分組

采用3月齡SD大鼠45只(90 d),雌性,體質量為(280±20)g;SD乳鼠10只,購自北京維通利華實驗技術有限公司[許可證號SCXK(京)2011-0011],飼養溫度為25℃～27℃,濕度保持在50%～70%。實驗對動物的處理方法符合中華人民共和國科學技術部頒發的《關于善待實驗動物的指導性意見》。實驗地點為臨海市第二人民醫院動物實驗中心。動物適應性飼養1周后,將45只大鼠隨機分為空白組(A組)15只和造模組30只。造模成功后,造模組再隨機分為2組,模型組(B組)15只,電針刺激組(C組)15只。

1.2 主要試劑與儀器

10%水合氯醛(山東嘉穎化工科技有限公司);胎牛血清、DMEM培養基、胰酶、雙抗(Gibico,美國);大鼠OPG、RANKL ELISA試劑盒(中國武漢博士德生物工程有限公司);堿性磷酸酶(ALP)試劑盒(南京建成生物工程研究所);RT-PCR試劑盒(日本,Takara)。

電針儀(廣州市健玲醫療器械有限公司);多功能酶標儀(美國Bio-Rad公司);恒溫箱(北京長安儀器廠);二氧化碳培養箱(Thermo Scientific);低溫離心機型(美國Sigma公司);大鼠成骨細胞專用培養基(武漢普諾賽生命科技有限公司);PCR儀(美國ABI公司);微量移液器等。

1.3 模型建立[4]

大鼠腹腔注射10%水合氯醛(3 mL/kg)進行麻醉,固定于手術臺上,經背部正中切口入路切除雙側卵巢后,逐層關閉,縫合肌肉、皮膚。乙醇消毒后,術后肌肉注射青霉素預防感染。術后第2天連續3 d做陰道細胞涂片,經證實卵巢切除完全,采用QDR4500A型雙能X線骨密度測定儀測定大鼠骨密度(BMD,美國歐力士),采用放射免疫法測定血清雌二醇(BE,試劑盒購自上海信帆生物科技有限公司),大鼠BMD及BE明顯降低,復制骨質疏松癥模型成功。

A組不做任何處理,常規飼養。

B組造模成功后,常規飼養。

C組模型成功后,參照丁巖等[5]電針刺激方法干預大鼠,選背部L1-4夾脊、環跳(右側)、足三里穴進行針刺。針刺深度為6～8 mm,針身接刺激儀指數曲線波3 Hz,強度控制在局部可見輕微肌肉收縮,留針刺激20 min。隔日1次,持續12周。

1.4 大鼠成骨細胞的體外培養

將SD乳鼠置于75%乙醇中浸泡,在無菌條件下取下顱骨(除去骨膜、結締組織),用PBS清洗3次后將顱骨剪碎成約1 mm3。將骨片轉到裝有0.25%胰酶培養瓶中,消化完畢后去掉上清液;再用0.1%的Ⅱ型膠原酶消化收集合并上清液,終止消化,并將其用200目濾網過濾3次,1000 r/min離心10 min,棄掉上清,加入培養基制成細胞混懸液,接種于培養瓶,于5% CO2培養箱中37℃條件下培養,每3 d換液1次,直到80%細胞融合。細胞進行常規消化、傳代,收集第二代細胞用于實驗。

1.5 成骨細胞的血清處理方法

10%水合氯醛(3 mL/kg)麻醉各組大鼠后,心臟取血,冷置1 h,2500 r/min離心25 min,棄去沉淀物,保留上層血清。將上層血清采用56℃水浴滅活30 min,并用0.22mm的濾網抽濾除菌。將各組制備的血清按照10%的比例加入成骨細胞中培養3 d。

1.6 觀察指標

1.6.1 ALP活性檢測

收集各組血清處理后的成骨細胞上清液,按照試劑盒說明書操作,檢測ALP活性。

1.6.2 RT-qPCR法檢測成骨細胞OPG、RANKLmRNA表達的影響

收集各組血清處理后的成骨細胞上清液,提取細胞總RNA,于PCR儀中行逆轉錄,按照預先設定熒光定量PCR反應程序進行擴增,計算OPG、RANKL基因與GAPDH基因擴增條帶表達量的比值表示。

1.6.3 ELISA法檢測成骨細胞OPG、RANKL蛋白濃度的影響

收集各組血清處理后的成骨細胞上清液,嚴格按照試劑盒說明書操作。

1.7 統計學方法

所有數據采用SPSS19.0軟件進行統計處理。符合正態分布的計量資料以均數±標準差表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間比較采用檢驗。以＜0.05表示差異具有統計學意義。

2 結果

2.1 各組大鼠骨密度測定

A組大鼠的骨密度值為(0.22±0.06)g/cm2,B組大鼠的骨密度值為(0.12±0.05)g/cm2,C組大鼠的骨密度值為(0.16±0.06))g/cm2,3組大鼠骨密度值比較差異有統計學意義(=11.603,=0.000),其中A組骨密度明顯高于B組及C組(=6.811、3.406,均＜0.05),C組明顯高于B組(=3.406,＜0.05)。

2.2 各組大鼠血清對成骨細胞ALP活性的影響

表1 各組大鼠成骨細胞ALP活性比較 (±s,U/gprot)

注:與B組比較1)＜0.05

3組成骨細胞ALP活性比較,差異具有統計學意義(=476.75,＜0.01)。其中A組、C組大鼠成骨細胞ALP的活性均明顯高于B組(=39.127,＜0.05;=36.359,＜0.05)。詳見表1、圖1。

注:與A組比較*P＜0.05;與B組比較#P＜0.05

2.3 各組大鼠血清OPG、RANKL mRNA表達比較

與B組比較,A組及C組OPG mRNA表達明顯降低(=55.578、34.064,＜0.05),與A組比較,C組OPG mRNA表達明顯降低(=21.514,＜0.05)。與B組比較,A組及C組RANKL mRNA表達明顯升高(=47.881、52.234,＜0.05),與A組比較,C組RANKL mRNA表達顯著升高(=4.353,＜0.05)。與B組比較,A組及C組OPG/RANKL比值明顯升高(=18.006、7.982,＜0.05),與A組比較, C組OPG/RANKL比值明顯降低(=10.024,＜0.05)。詳見表2。

表2 各組大鼠成骨細胞OPG、RANKL mRNA表達比較 (±s)

注:與A組比較1)＜0.05;與B組比較2)＜0.05

2.4 各組大鼠血清OPG、RANKL蛋白濃度比較

表3 各組大鼠成骨細胞OPG、RANKL蛋白濃度表達比較 (±s)

注:與A組比較1)＜0.05;與B組比較2)＜0.05

相較于B組,A組及C組RANKL蛋白濃度均明顯升高(=70.048、57.418,均＜0.05);與A組比較,C組RANKL蛋白濃度顯著降低(=12.630,＜0.05)。與B組比較,A組及C組OPG蛋白濃度明顯降低(=30.168,＜0.05;= 21.589,＜0.05);與A組比較,C組OPG蛋白濃度顯著降低(=8.580,＜0.05)。與B組比較,A組及C組OPG/ RANKL比值均明顯升高(=24.186，＜0.05;=9.315,＜0.05);與A組比較,C組OPG/RANKL比值明顯降低(=14.871,＜0.05)。詳見表3。

3 討論

有研究報道,通過探究生化、骨密度、生物力學、蛋白和基因等一些指標,表明針灸、電針刺激可以治療骨質疏松癥[6-9]。電刺激對成骨細胞有增殖的作用,可以影響骨的重建,而治療骨質疏松癥[10]。電刺激治療骨質疏松癥的機制可能是,調節破骨細胞骨破壞,促進成骨細胞的增殖與分化,影響骨的代謝,從而起到促進骨形成、抑制骨吸收,達到預防和治療骨質疏松癥的效果[11]。成骨細胞在骨組織的生長、發展過程中發揮著重要作用,可以合成、分泌骨基質,因此促進成骨細胞的成骨功能是防治骨質疏松癥的主要療法之一。本實驗通過電針刺激血清學的方法,在蛋白及基因水平上進一步探究其對成骨細胞的骨形成及骨吸收的影響。

ALP是成骨細胞分化的一種酶蛋白,是成骨細胞分化的早期指標,成骨細胞分化越多ALP的表達就越多,ALP活性越高成骨細胞的形成越好,是骨形成指標。本實驗結果顯示,B組大鼠血清作用于體外培養的成骨細胞時相較于A組,ALP的活性明顯下降,電針刺激后可以增加ALP的活性,提示電針刺激療法能促進成骨細胞的分化,促進骨形成。

OPG、RANKL屬于腫瘤壞死因子(TNF)家族,由成骨細胞表達,是破骨細胞分化、調節的信號因子,通過調控OPG、RANKL的表達可以調控骨吸收,是骨吸收、骨重建的重要因素[12-15]。成骨細胞可以通過分泌OPG、RANKL, OPG可與RANKL競爭RANK受體抑制破骨的形成及活性[16-19]。OPG是一種可溶性分泌型糖蛋白在成骨細胞中高表達[20],是RANKL的受體,可以與破骨細胞表面的RANK競爭性結合RANKL,阻斷骨吸收信號傳遞以及破骨細胞的分化,抑制破骨細胞吸收活性。本研究結果顯示,電針刺激后大鼠血清可以上調成骨細胞OPG mRNA的表達及蛋白濃度,提示電針刺激療法可能通過促進成骨細胞OPG的表達,從而增加OPG與RANKL的結合,抑制破骨細胞的活性,以此來達到治療骨質疏松癥的效果。RANKL是影響骨吸收的關鍵因子,與破骨細胞表面的RANK結合,促進破骨細胞的分化,抑制其凋亡[21]。本實驗結果顯示,與A組血清相比,B組血清成骨細胞RANKL mRNA的表達及蛋白濃度明顯升高,電針刺激后RANKL蛋白、mRNA顯著下調,提示電針刺激療法后的大鼠血清可能通過抑制RANKL的表達,來抑制破骨細胞的功能,從而治療骨質疏松癥。OPG/RANKL在機體中處于動態平衡,當比值下降時,會引起一些骨代謝疾病,而當比值升高時,會減弱破骨細胞的分化成熟[22]。在本實驗中,電針刺激后大鼠血清作用于體外培養的成骨細胞可以使OPG/RANKL的比值增加,抑制破骨細胞分化,增加骨形成。對大鼠骨密度測試顯示,電針刺激對大鼠的骨密度下降程度有所抑制。

目前,治療骨質疏松癥的方法主要是以藥物為主,患者又大部分是老年人,由于年齡及身體因素的影響,對藥物吸收較差,受副作用影響較大。OPG/RANKL/RANK信號系統是骨代謝的重要信號通路,是骨代謝疾病治療的新靶點。

綜上所述,骨質疏松癥模型大鼠血清使成骨細胞ALP、OPG水平明顯下降,RANKL水平增高,且OPG/RANKL顯著下降,電刺激后的大鼠血清可以提升ALP、OPG水平,降低RANKL水平,調節OPG/RANKL的比值,在成骨細胞重建上,電針刺激后大鼠血清能影響OPG與RANKL的蛋白、mRNA水平表達,是治療骨質疏松癥的一種治療方法,因此電針刺激療法的應用將具有重要意義。

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Effect of Rat Serum after Electroacupuncture Stimulation on the Expressions of Osteoblastic OPG and RANKL mRNAs and Their Proteins

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317016,

To investigate the effect of ovariectomized osteoporosis rat serum after electroacupuncture stimulation on the expressions of in vitro cultured osteoblastic bone formation factor osteoprotegerin (OPG) and bone resorption factor receptor activator of nuclear factor-kB ligand (RANKL) mRNAs and the concentrations of their proteins.Forty-five female SD rats were randomized to a blank group (group A), a model group (group B) and an electroacupuncture stimulation group (group C), 15 rats each. Bilateral ovaries were excised in groups B and C except group A. After successful model making, group C was given electroacupuncture stimulation and group B, fed regularly. Group A was fed regularly without any treatment. After 12 weeks, each group of rats was anesthetized with chloral hydrate and blood was taken from the heart. The blood was processed and put in culture fluid for in vitro cultured rat osteoblasts. Osteoblast activity was measured using alkaline phosphatase (ALP). The effect of rat serum on the expressions of osteoblastic OPG and RANKL mRNAs was assessed using RT-qPCR. The effect of rat serum on the concentrations of OPG and RANKL proteins was determined using ELISA.After osteoblasts were treated with rat serumin in each group of rats, ALP activity decreased significantly in group B (＜0.05), and osteoblastic ALP activity increased significantly in group C after electroacupuncture stimulation (＜0.05), in comparison with group A. OPG mRNA expression and its protein concentration decreased significantly in groups A and C compared with group B (＜0.05) and in group C compared with group A (＜0.05). RANKL mRNA expression and its protein concentration decreased significantly in groups C and A compared with group B (＜0.05) and in group C compared with group A (＜0.05). Bone mineral density was significantly higher in group C of rats than in group B (＜0.05).Rat serum after electroacupuncture stimulation can increase ALP and OPG levels and decrease RANKL levels, which may be related to the mechanism by which electroacupuncture treats osteoporosis.

Acupuncture therapy; Electroacupuncture; Osteoporosis; Osteoblast; Osteoprotegerin; Bone resorption factor; Rats

R2-03

A

10.13460/j.issn.1005-0957.2019.07.0798

1005-0957(2019)07-0798-05

2019-01-10

金俊健(1976—),男,主治醫師