玉米醇溶蛋白顆粒和海藻酸丙二醇酯制備的新型雙層乳液的理化特性

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(1.北京食品營養與人類健康高精尖創新中心,教育部北京市共建功能乳品重點實驗室,北京 100083; 2.中國農業大學食品科學與營養工程學院,北京 100083)

玉米醇溶蛋白是玉米中的主要貯藏蛋白,屬于食品級[1]醇溶性多肽。由于其疏水性以及能溶于乙醇水溶液[2]的特性,可通過調節溶劑的溶解性能,從而形成帶正電的玉米醇溶蛋白顆粒(ZCP),達到運載生物活性成分的效果。海藻酸丙二醇酯(PGA)是一類食品級多糖[3],目前主要用作一種增加粘度、改善乳化性、包被活性成分的食品添加劑[4]。

與表面活性劑通過降低表面張力使乳液穩定的機制不同,Pickering乳液是一種由固體顆粒制備的乳液,固體顆?？商峁┲旅艿奈锢砀魧?從而防止液滴聚結,穩定乳液[5]。Pickering乳液的潤濕性、粒徑、形狀、表面性質和濃度會受到顆粒類型的影響[6]。

由于傳統的單層乳液在某些條件下穩定性較差,為了提升乳液的穩定性,可以采用化學改性[7]、低能乳化[8]、微乳液聚合[9]、逐層靜電沉積技術(LBL)[10]等方法制備多層乳液。逐層靜電沉積技術(LBL)是一種依靠帶電聚合物之間的靜電作用力,促使電性相反的帶電聚合物逐層構建靜電薄膜結構的技術[11-12]。通過這種技術構建的多層乳液,其油/水界面常由多層蛋白質、多糖或脂質組成[13],可以保護封裝組分免受化學降解[14],并根據特定環境觸發因素釋放封裝組分[15]。

本實驗采用逐層靜電沉積技術(LBL),在顆粒和乳化劑的共同存在下制備了雙層乳液。該雙層乳液的油/水界面由ZCP和PGA組成,并系統地研究了不同濃度的PGA以及ZCP與PGA的加入順序,對雙層乳液物理穩定性和微觀結構的影響,并采用光學顯微鏡和激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM)對此新型雙層乳劑的形態特征進行觀察,以期為這種由顆粒和乳化劑復合穩定的新型雙層乳液提供一些新的理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

玉米醇溶蛋白91.3%(w/w) Sigma-Aldrich公司(美國);無水乙醇99.99%(v/v)、固體氫氧化鈉99.0%(w/w)、液體鹽酸36%(w/w) Eshowbokoo生物技術有限公司(中國北京);食品級海藻酸丙二醇酯(PGA)87.9%(w/w) 漢駿糖業有限公司(中國上海);中鏈甘油三酯(MCT)50%(w/w) Lonza Inc.(美國);所有其他化學試劑 均為分析純。

Ultra Turrax model T25高速剪切機 IKA公司(德國);LS230?激光散射粒度儀 貝克曼公司,(美國);Zetasizer NanoZS90 馬爾文激光粒度儀 Malvern公司(英國);Leica DMD 108光學顯微鏡,Leica TCS SP5激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM) 徠卡公司(德國);LUM 290 LUMiSize穩定性分析儀 LUM公司(德國);SPSS 18.0 for Windows IBM公司(美國)。

1.2 實驗方法

1.2.1 ZCP和PGA溶液的制備 將4 g玉米醇溶蛋白溶于800 mL 70%(v/v)乙醇水溶液中,600 r/min攪拌3 h,然后45 ℃旋蒸30 min[16],所得液體用蒸餾水稀釋至200 mL,1000 r/min離心10 min,取上清液,用0.1 mol/L HCl溶液將所得樣品pH調節至4.0,保存于5 ℃的冰箱。

將不同質量的PGA粉末溶解于蒸餾水中,制備不同質量濃度(0.01%、0.05%、0.1%、0.25%、0.5%、0.75%、1.0%、1.25%、1.5%)的PGA溶液,溶液于600 r/min下攪拌過夜(約12 h),然后用1 mol/L NaOH將溶液pH調節至4.0。

1.2.2 ZCP和PGA雙層乳液的制備 以50%(v/v)MCT油作為分散相,制備兩種不同添加順序的雙層乳液,雙層乳液總體積為30 mL,所有乳液在室溫(25 ℃)下貯藏12 h。

1.2.2.1 ZCP/PGA雙層乳液的制備 將7.5 mL ZCP分散液(2.0%,w/v)緩慢加入15 mL MCT(油相)中并同時于12000 r/min下進行剪切,待ZCP分散液全部加入油相后繼續剪切5 min,得到初級乳液。再在同樣的剪切速度下分別向初級乳液中緩慢加入7.5 mL不同濃度的PGA水溶液(0.01%～1.5%,w/v),待PGA水溶液全部加入初級乳液后,將混合物繼續剪切5 min,得到次級乳液。從而制備出z-0.01p,z-0.05p,z-0.1p,z-0.25p,z-0.5p,z-0.75p,z-1.0p,z-1.25p和z-1.5p的ZCP/PGA雙層乳液。

1.2.2.2 PGA/ZCP雙層乳液的制備 將7.5 mL PGA水溶液(0.01%～1.5%,w/v)緩慢加入15 mL MCT(油相)中并同時于12000 r/min下進行剪切,待PGA水溶液全部加入油相后繼續剪切5 min,得到初級乳液。再在同樣的剪切速度下向不同濃度PGA的初級乳液中分別緩慢加入7.5 mL ZCP分散液(2.0%,w/v),待ZCP分散液全部加入初級乳液后,將混合物繼續剪切5 min,得到次級乳液。從而制備出0.01p-z,0.05p-z,0.1p-z,0.25p-z,0.5p-z,0.75p-z,1.0p-z,1.25p-z和1.5p-z的PGA/ZCP雙層乳液。

1.2.2.3 對照組的制備 將15 mL ZCP分散液(2.0%,w/v)緩慢加入15 mL MCT(油相)中并同時于12000 r/min的速度下進行剪切,待ZCP分散液全部加入油相后,將混合物繼續剪切5 min,作為對照,得到初級乳液,命名為“zein”。

1.2.3 乳液類型鑒別 取一滴乳液(約0.02 mL)分別加入到純MCT和純水(約10 mL)中,如果乳滴在水中迅速分散而在MCT中保持聚集,則認為是水包油(o/w)型乳液,否則為油包水(w/o)型乳液[17]。

1.2.4 粒徑和電位測定 粒徑測定:使用激光散射粒度分析儀,測量乳液的平均液滴粒徑和粒徑分布。MCT和水的折射率分別為1.52和1.33。計算體積面積(D3,2)以衡量乳液液滴大小,計算公式如下:

式中：ni是直徑為di的顆粒數量。

電位測定:使用馬爾文激光粒度儀測定雙層乳液的Zeta(ζ)電位。用pH4.0的去離子水稀釋乳液至0.005wt%。設定平衡120 s,所有數據重復測量三次。

1.2.5 物理穩定性分析

1.2.5.1 離心穩定性分析 使用LUMiSizer穩定性分析儀,測量乳液的離心穩定性。在2 mL離心管中加入1.8 mL乳液,設定轉速3000 r/min,離心時間3600 s,溫度25 ℃[18],測量不同離心時間下乳液透光率大小。

1.2.5.2 貯藏穩定性分析 測量貯藏1、7、14、21、28 d后乳液的液滴粒徑和ζ電位,并通過拍照記錄觀察乳液表觀特征的變化。

1.2.6 微觀結構觀察

1.2.6.1 光學顯微鏡觀察 用pH4.0去離子水將乳液稀釋10倍,用光學顯微鏡觀察稀釋后乳液的微觀結構。

1.2.6.2 激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM)觀察 用尼羅藍(0.1%)和尼羅紅(0.1%)混合熒光染料溶液對乳液進行染色,ZCP被尼羅藍染成藍色,MCT被尼羅紅染成紅色。用激光共聚焦掃描顯微鏡(CLSM)進一步觀察染色乳液的界面結構。

1.3 數據處理

所有獲得的數據均取三次測定的平均值,并用SPSS進行方差統計分析。統計學差異通過單因素方差分析(ANOVA)和Duncan檢驗來確定,p<0.05表示差異顯著。

2 結果與分析

2.1 雙層乳液的表觀特征分析

由實驗1.2.3可知,將zein和雙層乳液滴在MCT和純水中,它們在水相中的分散速度明顯快于在MCT相中的分散速度,表明它們是水包油型乳液。圖1顯示在室溫(25 ℃)下貯藏12 h后,zein乳液、不同濃度PGA和不同添加順序對雙層乳液的外觀和物理穩定性的影響。由ZCP單獨穩定的zein乳液不穩定,乳液的上相有大量油相釋放,并有明顯分層現象,這可能是由于ZCP的潤濕性不足[2,16],不能很好地穩定在油水界面,從乳滴表面脫離,從而導致乳液分層。低濃度PGA(≤0.1%)形成的的Z/P雙層乳液(圖1A、C),表觀特征與zein相似,均在上相很快釋放出油相,并有明顯分層現象,說明低濃度PGA基本上不能覆蓋zein乳液的液滴,導致乳液液滴聚結。而且,帶負電的PGA的加入降低了ζ電勢,使其不能提供足夠的靜電排斥,以保持乳液穩定。隨著PGA濃度的升高(0.01%～0.5%),Z/P雙層乳液的乳化相體積不斷增加。當PGA濃度達到0.5%以上時,乳液均一穩定,沒有明顯的油析或分層現象。添加順序不同時,與Z/P雙層乳液相比,使用P/Z雙層乳液均呈乳白色,而Z/P雙層乳液則由淡黃色逐漸轉變為乳白色。該現象的出現可能有兩個原因:一是PGA為兩親性多糖,具有比ZCP更快的界面吸收速度和更強的液滴乳化能力,所以當先加入PGA時,乳液可以形成更均勻和小粒徑的液滴。二是PGA的充分覆蓋改善了液滴的穩定性,從而改變了乳液的外觀。

圖1 zein乳液(E),Z/P(A、B)和P/Z(C、D)雙層乳液的表觀特征Fig.1 Visual appearance of zein-based emulsion,ZCP/PGA and PGA/ZCP bilayer emulsions

2.2 粒徑分布和ζ電位測定結果

圖2A和圖2C給出了ZCP和PGA不同添加順序形成的雙層乳液的平均液滴粒徑和ζ電位值,圖2B和2D顯示了相應的液滴粒徑分布。可以發現,大部分雙層乳液的平均液滴小于80 μm(除了0.01p-z)。與果膠和玉米醇溶蛋白穩定的Pickering乳液[16]相比,液滴粒徑相對較小,證明PGA具有比果膠更好的乳化性。就Z/P雙層乳液而言,當低濃度的PGA(0.01%和0.05%)加入到由ZCP穩定的Pickering乳液中時,液滴粒徑增加。同時,Z/P雙層乳液的Zeta電位值由正電荷(41.3±3.9) mV降至負電荷(-9.53±2.66) mV和(-10.25±2.98) mV,說明PGA中和了液滴表面上的相反電荷,而要達到靜電穩定,ζ電位值的絕對值必須超過30 mV,并且在絕對值5～15 mV之間,發生耗盡絮凝[19]。因此,當PGA濃度較低時,液滴間由于靜電排斥力不足,不具有足夠的穩定性來防止聚結和分層。這與在添加低濃度PGA的Z/P雙層乳液中觀察到的分層和油相釋放表觀特征相一致(圖1A)。

圖2 不同濃度及添加順序的ZCP與PGA形成乳液的液滴大小、Zeta電位(A、C)和粒徑分布(B、D)Fig.2 Droplet size,zeta-potential(A,C)and size distribution(B,D)of zein-based Pickering emulsion and bilayer emulsions with two different adding sequences at various mass ratios of ZCP to PGA

而當PGA的濃度從0.1%升高至1.0%時,液滴的平均粒徑從(36.58±0.64) μm逐漸減小至最小值(12.46±0.03) μm。同時,液滴的ζ電位從(-14.1±2.69) mV降低至最小值(-29.63±1.19) mV。當PGA濃度大于1.0%時,液滴粒徑和ζ電位均未出現明顯波動,表明此含量的PGA已提供了足夠的靜電排斥和機械阻隔,以穩定乳液防止液滴聚集。此外,吸附在液滴上的PGA分子提高了乳化效率,使得液滴粒徑逐漸減小。但由于一些PGA分子可能與ZCP存在界面競爭吸附,并隨后通過降低界面的表面張力來減小液滴粒徑,所以當PGA濃度高于1.0%時,由于連續相中存在過量的游離PGA而促進液滴聚集,液滴粒徑略微增加。此結果表明,1.0%的PGA可能是完全覆蓋油/水界面和穩定Z/P雙層乳液所需的最低濃度。

在P/Z雙層乳液中發現了類似的規律。在低濃度PGA(0.01%)下,與Z/P雙層乳液相比,P/Z雙層乳液((155.2±2.5) μm)的液滴粒徑顯著增加(p<0.05),這表明乳液中發生了液滴聚集現象。這些乳液的PGA濃度太低,無法使油相大量乳化,并且PGA分子的負電荷被ZCP中和,靜電排斥作用降低。而當PGA濃度升至0.05%時,P/Z雙層乳液的液滴粒徑迅速降至(73.93±0.47) μm,表明PGA具有較好的乳化性,能夠更有效地降低雙層乳液的液滴粒徑。隨著PGA濃度的升高(0.05%～0.5%),液滴粒徑從(73.93±0.47) μm降低至(19.74±0.03) μm(p<0.05)。當PGA濃度高于0.5%時,液滴粒徑下降至最小值(12.23±0.04) μm,這說明PGA完全被液滴表面吸附。如表1所示,zein乳液和兩種類型雙層乳液的D3,2顯著受PGA水平的影響(p<0.05)。不同添加順序并未影響平均液滴粒徑的變化趨勢,但它們的D3,2遠小于其各自的液滴的平均粒徑。

表1 不同濃度的玉米醇溶蛋白與PGA雙層乳液的D3,2Table 1 D3,2 of bilayer emulsions with two different adding sequences at different mass ratios of zein and PGA

圖2B和圖2D中分別顯示了Z/P和P/Z雙層乳液的液滴粒徑分布。zein乳液表現出較寬的粒徑分布單峰,這表明單獨用ZCP穩定的Pickering乳液,粒徑不均勻。當添加較低濃度PGA時(0.01%和0.05%),Z/P雙層乳液表現出大致均勻的粒徑分布和窄峰,這可能是由于在pH4.0時,帶負電的PGA分子會與鄰近的帶正電荷的液滴相互作用,引起絮凝。隨著PGA濃度的升高,液滴的粒徑分布從窄單峰模式變為雙峰模式,并且在0.1%和0.25%的PGA水平可以清楚地觀察到兩個疊加峰。這可能是由于PGA分子逐漸被液滴表面吸附,但仍不足以完全覆蓋液滴表面,從而產生不均勻粒徑的液滴。當PGA濃度大于0.5%時,液滴粒徑分布從雙峰再次變為單峰,峰值逐漸下降。就P/Z雙層乳液而言,粒徑分布較為均勻,在低PGA濃度(0.01%和0.05%)下具有窄峰。在PGA存在下,雙層乳液中出現寬雙峰模式(0.1%)和兩個重疊峰(0.25%),隨著PGA含量增加到0.5%以上,液滴粒徑分布變為近單峰,峰縱坐標值逐漸減小。

2.3 雙層乳液的物理穩定性分析

2.3.1 離心穩定性分析 雙層乳液的離心穩定性隨離心時間變化如圖3所示。如圖3A所示,zein乳液的離心過程中透光率呈不斷上升的趨勢,且最終乳液透光率最大,乳液非常不穩定。在低濃度PGA下,由于PGA不能完全覆蓋液滴,PGA的加入反而導致靜電斥力的下降而使液滴間絮凝。隨著PGA濃度的增加,穩定性增強,說明吸附在液滴表面的PGA不斷增加,雖然0.5%PGA的Z/P雙層乳液的穩定性仍然比zein乳液的穩定性差,但當PGA水平為0.75%時,Z/P雙層乳液的穩定性高于zein乳液,并且隨著PGA濃度的繼續升高,透光率的波動逐漸平緩,說明雙層乳液的物理穩定性隨著PGA濃度的上升而不斷提高,這可能是由于Z/P雙層乳液液滴外層PGA的分子結構更加靈活,可以滲透界面空隙中,提供靜電斥力和空間位阻,在大豆可溶性多糖和甜菜果膠對乳鐵蛋白包覆橙油雙層乳液實驗[20]中也出現了類似的現象。當PGA濃度高于1.0%時,分層速率有所降低但不顯著,說明ZCP穩定的液滴已經完全被PGA分子覆蓋,并且由于水相中過量的PGA分子提高了相粘度,從而改善了Z/P雙層乳液的物理穩定性,所以幾乎不會發生液滴的絮凝。

如圖3B所示,在相同PGA水平下,相比于Z/P雙層乳液,P/Z雙層乳液的透光率較小,乳液的乳化速率明顯增大,加入的陽離子顆粒會與多個陰離子液滴結合,導致液滴絮凝。而當PGA濃度升高至0.5%時,P/Z雙層乳液比zein乳液和Z/P雙層乳液表現出更好的穩定性。并且隨著PGA濃度的逐漸增大,波動極小的透光率可以反映出雙層乳液良好的物理穩定性,說明高濃度PGA的添加會降低初級乳液的液滴粒徑。在液滴表面被完全覆蓋之后,水相中過量的PGA分子將增加雙層乳液的粘度,由斯托克斯定律可知,乳液的物理穩定性與乳液的粘度正相關,穩定性的提升可能是粘度升高的原因[21]。

圖3 不同濃度的Z/P雙層乳液(A)和P/Z雙層乳液(B)的透光率變化曲線Fig.3 Transmission profiles of ZCP/PGA bilayer emulsion(A) and PGA/ZCP bilayer emulsion(B) at different mass ratios of zein to PGA

2.3.2 貯藏穩定性分析 圖4表示在25 ℃下貯藏一段時間后,zein乳液和與雙層乳液的粒徑和ζ電位變化。如圖4A所示,貯藏時間對不同PGA濃度的Z/P雙層乳液的液滴粒徑和ζ電位具有不同的影響。zein乳液液滴的粒徑和ζ電位變化最大,說明僅由ZCP穩定的Pickering乳液并不穩定。而且zein乳液液滴粒徑和ζ電位的大幅波動,也表明ZCP在液滴表面發生反復的吸附和解吸,這可能是ZCP在界面的潤濕性較差。低濃度PGA的Z/P雙層乳液,由于乳液的不穩定性以及液滴的變形,從而導致液滴粒徑比zein乳液還要略微增加,ζ電位也有明顯波動。隨著PGA濃度的不斷升高,Z/P雙層乳液的貯藏穩定性顯著提高(p<0.05),并且由于稠化界面和高粘度連續相的存在,乳液液滴遷移率降低,貯藏不穩定性下降[22]。

圖4 ZCP/PGA雙層乳液(A)和PGA/ZCP雙層乳液(B)在不同貯藏時間后的液滴粒徑和ζ電位Fig.4 Droplet size and Zeta-potential of ZCP/PGA bilayer emulsion(A)and PGA/ZCP bilayer emulsion(B)after different storage times

如圖4B所示,貯藏時間對不同PGA濃度的P/Z雙層乳液的液滴粒徑和ζ電位也有不同的影響。當PGA濃度較低時,雙層乳液并不穩定,貯藏過程中液滴粒徑和ζ電位有明顯變化,削弱的靜電斥力促進了乳液的絮凝。而當PGA濃度逐漸增加,PGA分子可以完全覆蓋液滴表面并作為內層穩定雙層乳液,同時,存在于連續相中的PGA分子,可以提高乳液的黏度,并在一定程度上相互交聯形成致密的雙層膜,從而提高乳液的貯藏穩定性[23]。

貯藏時間對zein乳液和雙層乳液的外觀影響如圖5所示。25 ℃貯藏7 d后,zein乳液出現明顯的分層和油相釋放,這可能是由于乳液在貯藏期間因重力分離作用,ZCP從液滴界面分離導致了ZCP的明顯沉降。PGA濃度較低時(≤0.05%),貯藏7 d后,兩類雙層乳液均逐漸發生解離分層,并出現油相釋放現象,這是由于顆粒間斥力不足從而導致了液滴的聚結。隨著PGA含量的逐漸增加,水層厚度與乳液總高度的比值不斷降低。當PGA濃度達到1.0%時,ZCP和PGA共同穩定的雙層乳液相對穩定,沒有分層現象出現,PGA濃度的增加改善了雙層乳液的貯藏穩定性[23]。

圖5 不同貯藏時間對zein乳液、ZCP/PGA雙層乳液和PGA/ZCP雙層乳液外觀的影響Fig.5 Effect of different storage times on visual appearance of zein-based Pickering emulsion, ZCP/PGA bilayer emulsion and PGA/ZCP bilayer emulsion

貯藏28 d后,低濃度PGA的雙層乳液中出現更加明顯的液滴聚集,具有較少PGA分子附著的界面不能提供足夠的靜電斥力來保證乳液的長期貯藏穩定性。此外,重力作用和粒子的布朗運動也導致了乳液的聚結,從而導致雙層乳液的水層厚度與乳液總高度的比值均升高。隨著PGA的濃度升高,雙層乳液的水層厚度逐漸降低,這說明高濃度的PGA為雙層乳液液滴提供了充足的靜電斥力和穩定的空間結構,提高了乳液的長期貯藏穩定性[23]。

2.4 雙層乳液的空間形態觀察

2.4.1 光學顯微鏡觀察 圖6顯示了不同類型乳液的光學顯微鏡照片?？梢杂^察到zein乳液并不穩定,并在幾分鐘快速聚結,這可能是由于ZCP顆粒間的疏水吸引[24]。加入PGA后,乳液的物理穩定性大大提高,且PGA濃度越高,液滴粒徑越小,乳液越均勻。所以,由于先加入ZCP的Pickering乳液中的液滴易于聚結,所以可以通過LBL技術對其進行穩定。

圖6 ZCP和PGA共穩定的雙層乳液和zein乳液的光學顯微鏡圖像Fig.6 Optical microscope images of zein-based Pickering emulsion and bilayer emulsions co-stabilized by ZCP and PGA

當PGA濃度從0.1%增加到1.5%,雙層乳液液滴的粒徑減小,并且逐漸形成網絡結構,說明具有較高濃度PGA的雙層乳液中PGA所占體積分數也較大,因此乳液液滴彼此非常緊密并且具備較高的彈性模量[25]。乳化層中液滴的緊密堆積以及網絡結構的形成,導致了凝膠狀流變特性的體現[26]。

2.4.2 CLSM觀察 使用CLSM來觀察由ZCP和PGA穩定的雙層乳液的界面結構,如圖7所示,MCT為紅色,ZCP為藍色。圖7A顯示了zein乳液的微觀結構,液滴不均勻且較大,液滴有明顯的聚結現象,這種現象是由于玉米醇溶蛋白的潤濕性不足,以及ZCP之間的疏水效應而導致了液滴的聚結,說明了zein乳液的不穩定性。相反,可以在圖7B在觀察到Z/P雙層乳液中均勻的液滴和外層蛋白網絡。說明外層PGA的添加促進了更加緊密的界面的形成。就P/Z雙層乳液而言,雖然其液滴大小也較為均勻,但并沒有形成連續的蛋白網絡(圖7C)。PGA作為內層,雖然減小了液滴的粒徑,但也增加了比表面積,導致ZCP外層的不完全覆蓋。

圖7 由zein(A)、ZCP/PGA雙層乳液(B)(1.5% w/v)和PGA/ZCP雙層乳液(C)(1.5%,w/v)穩定的Pickering乳液的CLSM圖像Fig.7 CLSM image of Pickering emulsion stabilized by zein(A),ZCP/PGA double emulsion(B) (1.5% w/v)and PGA/ZCP double emulsion(C)(1.5%,w/v)

3 結論

在本研究中,采用LBL靜電沉積技術制備了ZCP和PGA穩定的新型雙層乳液。與僅由zein穩定的Pickering乳液相比,雙層乳液因其獨特的顆粒-多糖雙層結構而具有更好的穩定性,不易分層和聚結。隨液滴表面PGA的濃度的增大,雙層乳液液滴的粒徑逐漸減小,形成三維網絡結構,雙層乳液的穩定性不斷提高。不同的加入順序對雙層乳液的微觀結構有重要影響,PGA具有更好的乳化性,隨PGA濃度的升高,先加入PGA的雙層乳液具有更小的液滴粒徑。但是,ZCP和PGA在液滴界面中的共存,阻礙了雙層乳液的穩定和網絡結構的形成,從而使雙層乳液具有凝膠性質。本文將界面工程技術、Pickering乳液和雙層乳液三者結合,設計了由ZCP和PGA穩定的雙層乳液?？梢灶A想,這種由顆粒和乳化劑共同穩定的新型雙層乳液會因其較好的穩定性和可控的界面性質在生物活性組分的遞送方面展現出巨大的優越性。