甘草微型飲片切制工藝及UPLC 指紋圖譜

任曉航， 岳英男， 魏曉峰， 李祥溦， 劉博男， 史 輯，，?

（1. 遼寧中醫藥大學藥學院， 遼寧 大連116600； 2. 國家中醫藥管理局炮制原理解析重點實驗室， 遼寧大連116600； 3. 遼寧省中藥炮制工程技術研究中心， 遼寧 大連116600）

甘草為豆科植物甘草Glycyrrhiza uralensis Fisch、 脹果甘草Glycyrrhiza inflate Bat 或光果甘草Glycyrrhiza glabra L. 的干燥根及根莖［1］， 其味甘、性平， 具有補脾益肺、 清熱解毒、 祛痰止咳、 緩急止痛、 調和諸藥等功效， 在多個傳統經典方劑中起著調和諸藥、 緩和藥性等作用。 現代藥理研究表明， 甘草具有抗潰瘍、 解痙、 抗菌、 抗炎、 調血脂、 鎮痛、 雌性激素樣等作用［2-3］， 其主要化學成分包括三萜、 黃酮、 香豆素、 多糖等［4-5］， 在我國主要分布于內蒙古、 新疆、 甘肅、 黑龍江等地［6-7］。

中藥飲片是中藥材經過炮制后能直接用于中醫臨床和中成藥生產的處方藥， 是國家基本藥物； 中藥炮制是按照中醫藥理論對中藥材進行各種加工處理的技術， 也是一項傳統的制藥技術， 最早的飲片稱為“口父咀”。 中藥飲片是中醫臨床辨證施治、 復方配伍的基本物質， 也是中醫臨床靈活用藥的獨特產品， 能適應中醫臨床一病一方的特點， 但隨著現代生活節奏加快， 采用傳統秤稱手抓的調劑方式速度慢， 精準度不夠， 煎出率低， 勞動強度大， 影響了臨床應用。 賈天柱教授首次提出“微型飲片”概念［8］， 其直徑在0.5～1.0 cm 左右， 具有流動性好、 煎出率高的特點。

本實驗將甘草傳統飲片形式進一步加工成微型飲片， 以其流動性、 干膏率、 主要化學成分含有量為評價指標， 通過正交試驗對其切制工藝進行優化。 同時， 建立甘草微型飲片UPLC 指紋圖譜［9］，并應用中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統軟件對10 批微型飲片進行相似度評價。

1 儀器與材料

1.1 儀器 ACQUITY H-class 色譜儀 （美國Waters 公司）； 細集料流動時間測定儀（紹興市上虞越達儀器廠）； FA1004 型電子天平（上海精密科學儀器有限公司）； AE240 型電子分析天平（十萬分之一， 瑞士梅特勒-托利多公司）； KQ-250E 型醫用超聲波清洗器（江蘇昆山市超聲儀器有限公司）； 超純水儀（美國Millipore 公司）。

1.2 材料 甘草酸對照品（批號D0708AS， 含有量＞98%）、 甘草苷對照品（批號J1016AS， 含有量＞98%）、 甘草次酸對照品（批號N1110AS， 含有量＞98%）、 甘草查爾酮對照品（批號S0716AS，含有量＞98%）、 甘草素對照品（批號N0324AS，含有量＞98%）、 異甘草素對照品（批號J1009AS，含有量＞98%） 均由大連美侖生物技術有限公司提供。 甲醇、 乙腈、 磷酸均為色譜純； 其他試劑均為分析純； 水為超純水。

收集了10 批不同來源的甘草， 經遼寧中醫藥大學藥學院翟延君教授鑒定為正品， 具體見表1。

表1 樣品信息Tab.1 Information of samples

2 方法與結果

2.1 含有量測定

2.1.1 對照品溶液制備 精密稱取甘草酸、 甘草苷、 甘草素、 甘草查爾酮、 異甘草素、 甘草次酸對照品適量， 置10 mL 量瓶中， 甲醇定容， 即得。 其中， 各對 照 品 質 量 濃 度 分 別 為0.574、 0.68、0.278、 0.383、 0.238、 0.433 mg／mL。

2.1.2 飲片切制 取甘草（統貨） 適量， 采用泡潤法進行軟化， 切制成斜片， 50 ℃下干燥。

2.1.3 供試品溶液制備 精密稱取樣品5 g， 置250 mL 具塞錐形瓶中， 精密加入70%乙醇100 mL，密塞， 稱定質量， 超聲（250 W、 40 kHz） 30 min，放冷， 70%乙醇補足減失的質量， 搖勻， 過濾， 取續濾液， 即得。

2.1.4 色譜條件 BEH C18色譜柱 （2.1 mm×50 mm， 1.7 μm）； 流動相乙腈-0.1% 磷酸， 梯度洗脫（0 min， 10%A； 0 ～4.5 min， 32%A； 4.5 ～10 min， 70%A； 10 ～16 min， 95%A； 16 ～18 min，10%A）； 體積流量0.3 mL／min； 柱溫25 ℃； 檢測波長為237 nm； 進樣量1 μL。 色譜圖見圖1。

2.1.5 線性關系考察 精密吸取“2.1.1” 項下對照品溶液， 在“2.1.4” 項色譜條件下進樣， 以進樣量為橫坐標（X）， 峰面積為縱坐標（Y） 進行回歸， 結果見表2， 可知各成分在各自范圍內線性關系良好。

圖1 各成分HPLC 色譜圖Fig.1 HPLC chromatograms of various constituents

表2 各成分線性關系Tab.2 Linear relationships of various constituents

2.1.6 精密度試驗 精密吸取同一對照品溶液，在“2.1.4” 項色譜條件下連續進樣6 次， 每次1 μL， 測得6 種成分峰面積RSD 分別為0.56%、0.78%、 0.69%、 1.59%、 1.57%、 1.59%， 表 明儀器精密度良好。

2.1.7 穩定性試驗 精密吸取同一供試品溶液，在“2.1.4” 項色譜條件下于0、 2、 4、 6、 8、 10、12、 24 h 進樣， 測得6 種成分峰面積RSD 分別為1.05%、 1.46%、 1.77%、 1.91%、 1.07%、0.58%， 表明溶液在24 h 內穩定性良好。

2.1.8 重復性試驗 取同一樣品6 份， 按“2.1.2” 項下方法制備供試品溶液， 在“2.1.4”項色譜條件下進樣， 測得6 種成分峰面積RSD 分別為1.48%、 1.29%、 1.59%、 1.23%、 0.98%、1.20%， 表明該方法重復性良好。

2.1.9 加樣回收率試驗 稱取含有量已知的微型飲片6 份， 精密稱定， 每份約1.0 g， 精密加入等量對照品溶液， 在“2.1.4” 項色譜條件下進樣分析。結果， 各成分平均加樣回收率分別為101.8%（RSD ＝1.5%）、 100.2%（RSD ＝0.89%）、 101.3%（RSD ＝0.68%）、 98.6% （RSD ＝1.9%）、 102.5%（RSD＝1.1%）、 99.4（RSD＝0.29%）。

2.1.10 樣品含有量測定 供試品溶液在“2.1.4” 項色譜條件下計算6 種成分綜合含有量，公式為綜合含有量＝0.3 （A／Amax＋B／Bmax） ＋0.1（C／Cmax＋D／Dmax＋E／Emax＋F／Fmax） （A、 B、 C、 D、E、 F 分別為甘草酸、 甘草苷、 甘草素、 異甘草素、甘草查耳酮、 甘草次酸）。

2.2 干膏率測定 精密稱取樣品10 g， 置于250 mL圓底燒瓶中， 15 倍量水回流提取3 次， 每次1.5 h， 濃縮， 合并， 置干燥至恒定質量的蒸發皿中， 水浴蒸干， 105 ℃下干燥5 h， 于干燥器內放冷后， 迅速精密稱定， 得樣品干膏率。

2.3 飲片流動性測定 取微型飲片10 g， 放入細集料流動時間測定儀中測定流動時間， 重復10 次，取平均值。

2.4 切制工藝優化

2.4.1 試驗方法 根據預實驗， 選取飲片粒徑（A）、 厚度（B）、 軟化時間（C）、 干燥溫度（D）4 個因素， 每個因素3 個水平， 采用L9（34）正交表安排試驗， 因素水平見表3。 再計算綜合評分， 公式為綜合評分＝0.4X／Xmax＋0.4Y／Ymax＋0.2Z／Zmax（X 為有效成分綜合含有量， Y 為干膏率， Z 為流動時間）， 結果見表4～5。

表3 因素水平Tab.3 Fators and levels

表4 試驗設計與結果Tab.4 Design and results of tests

表5 方差分析Tab.5 Analysis of variance

2.4.2 結果分析 由表5 可知， 在切制工藝中飲片厚度具有顯著影響（P＜0.05）。 確定最佳工藝為A1B1C1D1， 即飲片粒徑0.5 ～0.9 mm， 厚度1 mm，軟化時間1 h， 干燥溫度50 ℃。

2.5 UPLC 指紋圖譜建立

2.5.1 色譜條件 同“2.1.4” 項。

2.5.2 供試品溶液制備 同“2.1.3” 項。

2.5.3 精密度試驗 取同一供試品溶液， 在“2.1.4” 項色譜條件下連續測定6 次， 測得各主要色譜峰的保留時間和峰面積RSD 均小于3%， 表明該方法精密度良好。

2.5.4 穩定性試驗 精密吸取同一供試品溶液，于0、 2、 4、 6、 8、 10、 12、 24 h 在“2.1.4” 項色譜條件下測定， 測得各主要色譜峰的保留時間和峰面積RSD 均小于3%， 表明供試品溶液在24 h內穩定性良好。

2.5.5 重復性試驗 取同一批飲片6 份， 按“2.1.3” 項下方法制備供試品溶液， 在“2.1.4”項色譜條件下測定， 測得各主要色譜峰的保留時間和峰面積RSD 均小于3%， 表明該方法重復性良好。

2.5.6 相似度測定 取10 批供試品溶液， 在“2.1.4” 項色譜條件下測定， 將所得指紋圖譜導入中藥色譜指紋圖譜相似度評價系統（2004A），對色譜峰進行多點校正并自動匹配， 生成UPLC 指紋圖譜， 見圖2， 計算相似度， 見表6， 有25 個共有指紋色譜峰， 由于每個樣品的非共有峰峰面積均小于總面積的10%， 因此符合指紋圖譜要求。 另外， 10 批微型飲片與對照指紋圖譜的相似度均＞0.9， 具有較好的一致性， 表明切制方法及規格可行， 質量可控。

圖2 10 批樣品UPLC 指紋圖譜Fig.2 UPLC fingerprints of ten batches of samples

3 討論

3.1 樣品來源 對收集得到的甘草進行含有量測定， 發現甘草苷、 甘草酸均符合2015 年版《中國藥典》 相關規定（分別不得少于0.50%、 2.0%）。

表6 10 批樣品相似度Tab.6 Similarities of ten batches of samples

3.2 樣品前處理 切制是中藥材炮制為飲片的關鍵環節， 《五十二病方》 中載有“細切” “削”“剡” 等， 都指的是切制， 目的是便于飲片有效成分的煎出， 有利于進一步炮制和制劑。 甘草纖維性強， 組織致密， 切制成粒徑較小的微型飲片亦不易破碎， 且軟化及干燥過程中有效成分不易流失。

采用單因素試驗考察甘草不同飲片類型中有效成分的含有量， 發現微型飲片明顯高于甘草斜片及圓片（圓片內徑約2 cm； 斜片長軸約5 cm， 短軸約2 cm）， 而甘草粉末雖然溶出率稍高， 但在煎煮過程中會出現糊鍋現象， 且不易過濾， 雜質過多［10-12］， 因此將正交設計中的直徑控制在0.5 ～2.0 cm 之間。 同時， 對飲片切制前的軟化方法進行了單因素試驗考察， 發現泡潤法軟化在工藝操作和有效成分含有量方面都優于淋潤法、 蒸制法軟化。 根據潤制過程中是否能保證片形完整性， 本實驗以軟化1、 2、 3 h 作為控制水平。

3.3 色譜條件選擇 甘草成分比較復雜， 主要有三萜皂苷（甘草酸、 甘草次酸）、 黃酮（甘草苷、異甘草苷）、 甘草多糖等。 2015 版《中國藥典》 中甘草的質量控制只以甘草酸、 甘草苷作為含有量測定指標， 不能系統完整地反映藥材內在質量。 本實驗采用UPLC 法同時測定甘草中6 種成分的含有量來評價工藝參數， 參考HPLC 條件， 采用C18反相色譜柱， 0.1%磷酸-乙腈梯度洗脫［13-15］， 同時考察了0.3、 0.6 mL／min 體積流量， 發現0.3 mL／min下各色譜峰出峰時間較好， 同時10% ～95%乙腈梯度洗脫也保證了色譜峰分離效果適中。

3.4 指紋圖譜建立 本實驗所建立的甘草微型飲片UPLC 指紋圖譜［16-17］中確定了25 個共有峰， 對其進行歸屬分析后指認了甘草苷、 甘草酸、 甘草素、 甘草次酸、 異甘草素、 查耳酮。 同時， 它與傳統飲片指紋圖譜對比沒有明顯差異。

3.5 飲片流動性 流速是測定粉體流動性的指標之一， 一般來說微粉流速快， 表明其流動均勻性理想， 即流動性好［18］； 流動時間越短， 摩擦力越小，流動性越好。 實驗結果表明， 甘草微型飲片的流動性明顯優于斜片及圓片， 更適合智能配方機的使用， 可大大提高工作人員抓藥效率， 同時能改善工作環境。

3.6 應用前景 中藥飲片作為中醫臨床應用的物質基礎， 其質量優劣直接影響臨床療效。 微型飲片在一定程度上解決了傳統飲片在倉儲、 調劑、 服用等方面的問題， 使臨床處方中的藥物比例更加準確穩定。 它既保留了傳統飲片隨癥加減的特色， 又增加了其實用性， 使臨床用藥更加方便快捷， 從而保障最強藥效。?