ＦＲＡＮＳ ＨＡＬＳ德國鳶尾組織培養及植株再生研究

武海峰 呂遠達 鄭海霞 趙明晶 王家慶

摘要：以德國鳶尾（Iris germanica. L）FRANS HALS葉片、球莖作為外植體，利用正交試驗設計研究探討不同激素及不同濃度組合對鳶尾愈傷組織的誘導、不定芽分化以及試管苗生根的影響，為鳶尾快速繁殖、種質資源的保存及利用提供最優的技術方法。結果表明，不同外植體滅菌時間也不同，葉片為3%次氯酸鈉3 min，球莖為3%次氯酸鈉5 min;鳶尾組培快繁的最適合外植體為球莖;鳶尾愈傷組織誘導和芽分化的最適培養基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L，生根培養基為MS+1＼2MS+NAA 0.10 mg/L，試管苗移栽基質采用泥炭∶珍珠巖=8∶2，成活率達90%以上。

關鍵詞：鳶尾（Iris germanica. L）;組織培養;外植體;植株再生

中圖分類號：Q949.71+8.28? ? ? ? ?文獻標識碼：A

文章編號：0439-8114（2019）23-0223-04

DOI：10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2019.23.055? ? ? ? ? ?開放科學（資源服務）標識碼（OSID）：

Research on tissue culture and plantlet regeneration of Iris germanica ‘FRANS HALS

WU Hai-feng1，LYV Yuan-da2，ZHENG Hai-xia1，ZHAO Ming-jing1，WANG Jia-qing1

（1.Shenyang Institute of Technology，Fushun 113122，Liaoning，China;

2.Institute of Fruit Tree Research，Guangdong Academy of Agricultural Sciences，Guangzhou 510640，China）

Abstract： Using the leaves and bulbs of Iris germanica 'FRANS HALS' as explants， orthogonal experiment was used to study the effects of different hormones and different concentration combinations on the induction of callus， adventitious bud differentiation and rooting of test-tube seedlings to provide an optimized method for rapid propagation， preservation and utilization of germplasm resources of the iris. The results showed that the sterilization time required for different explants was different. The leaves were 3% sodium hypochlorite for 3 min and the bulbs were 3% sodium hypochlorite for 5 min. The most suitable explants for appendix tissue culture were bulbs. The optimum medium for callus induction and bud differentiation of Iris was MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L; rooting medium was MS+1＼2MS+NAA 0.10 mg/L; the substrate was peat∶ perlite=8∶2， and the survival rate was over 90%.

Key words： Iris germanica. L; tissue culture; explant; plantlet regeneration

德國鳶尾（Iris germanica. L）是鳶尾科鳶尾屬多年生草本，單子葉常綠植物。鳶尾葉片碧綠青翠，花形大而奇特[1]，宛若翩翩彩蝶，是庭園中的重要花卉之一，也是優美的盆花、切花和花壇用花，其花色非常豐富，也可用作地被植物，有些鳶尾種類的鳶尾是優良的鮮切花材料。鳶尾花卉品種有幾千種，在北美和西歐鮮切花及優良庭園品種的推廣多是通過快速繁殖供應市場[2]。一般情況下，鳶尾主要靠根莖傳統的方法繁殖，但此方法繁殖效率低、品種混雜，遠遠不能滿足市場需求，嚴重影響了經濟效益[3，4]。通過植物組織培養不僅可以快速繁殖優質種苗，還可以很高效地解決傳統繁殖中產生的問題。參考國內外有關德國鳶尾組織培養的報道可以發現，德國鳶尾繁殖的研究結果較少且差異較大，德國鳶尾組織培養存在污染率高、不定芽誘導困難、繁殖效率低等問題[5-7]。國內德國鳶尾試管苗未實現商業化生產[8]。本研究以優良耐寒純種德國鳶尾新品種FRANS HALS為試材，探討建立組培快繁體系的適宜條件，為其試管苗的工廠化生產提供理論依據。

1? 材料與方法

1.1? 材料

德國鳶尾（Iris germanica. L）FRANS HALS由沈陽工學院園藝設施中心研究室提供。

1.2? 方法

1.2.1? 鳶尾外植體的選取? 選擇生長健壯的植株幼嫩葉片以及球莖作為外植體，首先用自來水沖洗干凈，剪去殘葉、根系，于10%洗衣粉溶液中浸泡30 min，并不斷攪拌，再用流水沖洗干凈，在純凈水中沖洗3次，置于超凈工作臺上。在接種前于75%乙醇中浸泡30 s，無菌水沖洗3次，再用0.3%次氯酸鈉溶液浸泡3～5 min后，無菌水沖洗3～5次，用無菌濾紙吸干水分，將外植體切割成1 cm×1 cm小塊作為接種的外植體。每個處理9瓶，每瓶3個外植體，重復3次。培養7 d后調查污染情況，污染率=（污染外植體數/接種外植體數）×100%，死亡率=（死亡外植體數/接種外植體數）×100%。鳶尾球莖初代培養情況見圖1。

1.2.2? 愈傷組織誘導和不定芽分化培養基的篩選? 取備用的外植體，消毒滅菌后，將外植體分別接入事先采用正交試驗設計方案（表1）配制好的初代培養基中，進行誘導愈傷和分化。將其放入人工氣候培養箱中進行培養，所設光溫濕條件均為最適宜條件。不同外植體部位（葉片、球莖）分別接種外植體20塊，每瓶2個外植體，重復3次，15 d繼代1次，20 d后統計出愈率。出愈率=（有愈傷組織形成的外植體數/接種外植體數）×100%。40 d后觀察記錄芽分化情況，統計分化率。分化率=（有芽形成的外植體數/接種的愈傷組織塊數）×100%。鳶尾球莖愈傷組織與繼代單株不定芽分化情況見圖2。

1.2.3? 生根培養? 生根培養以NAA作為誘導激素，具體設計如表1所示。將2～3 cm長的健壯芽切割下來，使之成為單株無根苗，然后接種至不同生根培養基上，每種培養基接種20個芽，15 d后觀察根生長狀況，統計生根率。生根率=（有根形成的芽數/接種芽數）×100%。當繼代的組培苗長到3～5 cm時選取健壯的小苗切割接種到生根培養基中，然后放入人工氣候培養箱中培養，觀察生長狀況，當根長達到3 cm的時候，可將其進行出瓶移栽。鳶尾試管苗的生根情況見圖3。

1.2.4? 組培苗的移栽與馴化? 當根長達到3 cm以上，芽長3～4 cm時，采用閉口全光照煉苗。1周后，打開瓶蓋，進行開口煉苗，并按時旋轉封口膜，2 d后，將封口膜取下并向三角瓶內注入少量水，放于通風處。3 d后，取出組培苗移植到不同配比的基質中進行煉苗，基質體積比分別是泥炭∶珍珠巖=8∶2、黑土∶珍珠巖=7∶3、田園土∶黑土=7∶3。塑料薄膜覆蓋保濕，并用遮陽網遮光，15 d后調查移栽成活率。成活率=（成活苗數/移栽總苗數）×100%。

1.2.5? 培養基的配制及培養條件? 以MS培養基為基礎培養基，每升加瓊脂7.5 g，蔗糖30 g，加入不同梯度激素，pH調至5.8，分裝于100 mL玻璃三角瓶中，加膜扎緊封口，然后放入高壓滅菌鍋中，121 ℃下滅菌20 min。放在溫度為（26±1） ℃，光照強度為2 000 lx的環境條件下培養，光照12 h/d。

2? 結果與分析

2.1? 不同3%次氯酸鈉消毒時間對外植體接種的影響

由表2可知，隨3%次氯酸鈉處理時間的增加，外植體污染率顯著降低，處理5 min和處理8 min的污染率均較低，分別為18.5%和14.8%，處理3 min的死亡率則較低，為7.4%，而處理10 min時，對外植體損傷較大，死亡率為29.6%，顯著高于處理3 min，因此，采用3%次氯酸鈉消毒葉片的最佳處理時間為3 min。

由于鳶尾球莖在地下取出，雜菌比較多，因此3%次氯酸鈉處理時間應比葉片延長。由表3可知，處理5 min和處理8 min的污染率均較低，分別為29.6%和22.2%;處理10 min時對外植體損傷較大，死亡率為25.9%，顯著高于處理5 min，而處理5 min的死亡率則較比處理8 min低，為11.1%。因此，采用3%次氯酸鈉消毒球莖的最佳處理時間為5 min。

2.2? 不同培養基對外植體誘導愈傷組織的影響

按照正交設計進行8組試驗，發現2種激素對于鳶尾的外植體誘導作用差異很大。從表4分析結果可知，在初代培養過程中，葉片、球莖兩種外植體均能誘導產生愈傷組織，并且兩種外植體愈傷組織誘導率都很高，但球莖高于葉片;從正交試驗的結果分析中可以得出最優外植體為球莖。正交表中最好的方案為6號試驗，也就是A2B1C2組合。鳶尾快速增殖的最佳培養基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L。

2.3? 生根培養

當增殖苗長至3 cm左右時，在無菌條件下，切下帶少量愈傷組織的單芽，接種于預備好的生根培養基中，觀察其生長情況。10 d左右開始生根，20 d后根長1～2 cm，4號培養基上根系生長速度較快。調查各培養基中根系生長情況，各培養基均有生根，具體情況見表5。因此，確定最佳生根培養基為4號培養基，即MS+1＼2MS+NAA 0.10 mg/L。

2.4? 煉苗移栽

待根生長到3～5 cm時，將小苗進行煉苗、移栽、定植。移栽前首先要進行透氣訓練，然后將組培苗根系所黏附的培養基沖洗干凈，經過馴化的組培苗，葉片已形成角質層，可以有效地防止體內水分的蒸發，抵抗外界雜菌的侵染。這時可以將其移栽到常用的基質上，進行常規管理。移栽結果表明，試管苗在珍珠巖中移栽成活率最高，達90%。

3? 討論

德國鳶尾組織培養的外植體常采用莖尖或花的器官[9]，不僅存活率低，而且對母株的傷害比較大，因此不適宜作離體培養的外植體[10]。本試驗利用葉片、球莖為外植體進行德國鳶尾組織培養，與莖尖為外植體相比，球莖作初代培養的外植體具有取材方便、材料豐富、消毒方便、不損傷母本植株、能保存母本品種優良性狀等優點。

激素對細胞的分化起著重要的調節作用，生長素和細胞分裂素的比例控制著細胞的分化和器官的形成，高質量濃度細胞分裂素與低質量濃度的生長素有利于芽的形成;反之則促進生根。6-BA是植物組織培養常用的細胞分裂素[11]，NAA是常用的生長素，本研究在MS中加入NAA和6-BA濃度配比的培養基，外植體均能發生愈傷組織。愈傷組織誘導和芽分化均在同一種培養基上進行。鳶尾葉片與球莖外植體分化芽的能力取決于培養基中生長素和細胞分裂素的濃度比例。本試驗中，愈傷組織的分化率在兩種激素的不同濃度組合間存在很大的差異。

在煉苗試驗過程中，試管苗的成活率受諸多因素的影響，鳶尾移栽成活率在很大程度上取決于栽培基質，3種不同栽培基質對植株成活率影響不同。應選擇易取得、好用、通風排水佳、不易酸化腐爛和易植且便宜的栽培基質。

4? 結論

本試驗以德國鳶尾葉片、球莖為研究對象，研究不同激素及其不同濃度組合對鳶尾葉片、球莖愈傷組織的誘導、不定芽分化及其生根的影響。試驗結果表明，外植體選擇過程中，以球莖作為外植體繁殖系數最大，成活率最高。鳶尾快速增殖的最佳培養基配方為MS+NAA 0.10 mg/L+6-BA 1.00 mg/L，生根培養基為MS+1＼2MS+NAA 0.10 mg/L，試管苗煉苗基質為泥炭∶珍珠巖=8∶2，成活率達90%以上。該研究結果為鳶尾快速繁殖試管苗的有效途徑，可為鳶尾種苗的工廠化生產提供一定的依據。

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