湯彩云,王 濤,屠 潔,劉冠卉*,黎 鵬,趙 靜
(1.江蘇科技大學生物技術學院,江蘇 鎮江 212018;2.江蘇科技大學糧食學院,江蘇 鎮江 212000)
γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)是一種四碳非蛋白質組成的氨基酸,廣泛存在于微生物、動植物內。在植物中,GABA是一種主要在谷氨酸脫羧酶催化L-谷氨酸脫羧下生成的代謝產物[1]。在哺乳動物的腦內,GABA是一種主要的抑制性神經遞質,具有調節血壓、抑制癌細胞增殖、預防阿爾茨海默病、治療失眠等多種重要的生理功能[2]。近年來,富含GABA的食品已成為研究熱點,研究者們普遍采用發酵或營造植物逆境條件的方法開發富含GABA的稻谷、小麥、茶葉、發酵食物等[3-6]。
桑葉是衛生部公布的藥食同源食品,具有豐富的營養價值和多種藥用功能,開發前景廣闊[7-8]。已研發了以桑葉茶(下稱桑茶)為代表的系列桑葉食品。在桑葉中,谷氨酸含量(以干物質計)高達23.23 mg/g[9],因此桑葉是開發GABA食品的潛在資源。桑茶是按照茶葉加工方法生產的代用茶,已有研究報道,經過富集處理后的桑茶中GABA含量可達3.87 mg/g[10],遠超業界關于茶中GABA含量為1.5 mg/g的認定標準。
目前,GABA含量測定的方法主要有紙層析法[11]、高效液相色譜(high performance liquid chromatography,HPLC)法[12]、液相色譜-質譜聯用[13]、氨基酸分析儀[14]、基于Berthelot反應的可見光比色法[15]、基于酶反應的紫外比色法[16]等。其中,HPLC、液相色譜-質譜、氨基酸分析儀檢測結果更加精確,但前處理繁瑣[17]。Berthelot比色法最為方便快捷且成本低廉,但易受樣品中其他成分干擾。魏珍珍等[18]發現無法用Berthelot比色法準確測定茶葉中GABA含量;何秋云等[19]檢測馬鈴薯中GABA時也發現Berthelot比色法的誤差極大。目前,鮮見關于Berthelot比色法與HPLC法定量桑茶中GABA的比較研究。為此,本研究采用HPLC和基于Berthelot反應的酶標儀分別進行方法學驗證并比較,旨在尋求一種快速準確測定桑茶中GABA含量的方法,以期為大通量篩選合適的桑葉品種、葉片部位和桑茶加工工藝提供理論依據。
桑葉:育711、大十、魯山桑采自國家桑種質資源鎮江桑樹圃;粵桑購自廣西玉林桑樹圃;湖桑購自河南信陽桑樹圃;荊桑購自山東泰安。
GABA(純度≥99%)、乙酸鈉、冰醋酸、碳酸氫鈉、磷酸二氫鉀、無水乙醇、四硼酸鈉、重蒸酚、次氯酸鈉(活性氯≥7.5%)、2,4-二硝基氟苯(2,4-dinitrofluorobenzene,FDBN)(均為分析純),甲醇、四氫呋喃(均為色譜純) 國藥集團化學試劑有限公司。
DHG-9140A型電熱恒溫鼓風干燥箱 上海三發科技儀器有限公司;BK-FD10S冷凍干燥機 濟南展康醫療器械有限公司;DFT-150手提式粉碎機 溫嶺市林大機械有限公司;HH·S21-6-S電熱恒溫水浴鍋 上海精其儀器有限公司;1260 HPLC儀 美國Aglient公司;SpectraMaxi3酶標儀 美國Molecular Devices公司。
1.3.1 樣品制備
將干燥的桑茶粉碎,過100 目篩。依據茶葉沖泡習慣,并參照Huang等[20]的提取方法,取適量桑茶粉末按照料液比1∶40(g/mL),用沸水浸泡,充分混勻后在40 ℃水浴1 h,每隔20 min振蕩1 次。取出后濾紙過濾,濾液再過0.45 μm濾膜得桑茶待測提取液。
桑葉樣品處理同上。
1.3.2 比色法
取系列質量濃度的GABA標品溶液1.0 mL,加入0.1 mol/L四硼酸鈉緩沖液1.0 mL,再依次加入質量分數分別為4%、5%、6%、7%、8%的重蒸酚溶液1.2 mL,質量分數分別為4%、5%、6%、7%、8%的次氯酸鈉溶液0.6 mL混勻,分別于沸水浴5、10、15、20、25 min后立刻冰浴5 min,至室溫待其出現藍綠色時再加入60%乙醇溶液2.0 mL,測定吸光度。
1.3.3 HPLC法
參考Somasundaram等[21]的測量方法。衍生處理:取0.2 mL提取液與0.1 mL 0.5 mol/L的NaHCO3溶液混合,加入0.02 mL體積分數為1% FDBN(由乙腈稀釋)溶液與0.18 mL超純水,密封。搖勻后在60 ℃水浴鍋中暗反應1 h,取出冷卻至室溫后加入0.4 mL 0.01 mol/L的KH2PO4溶液,搖勻放置15 min,離心待測。
HPLC條件:Agilent TC-C18色譜柱(4.6 mm×250 mm);流動相A為0.05 mol/L的乙酸鈉緩沖溶液(pH 5.7,體積分數2%冰醋酸調pH值,加入四氫呋喃30 mL/L),流動相B為甲醇;洗脫程序:0~20 min,70% A;20~35 min,50% A;35~60 min,30% A;60~90 min,0% A;流速1 mL/min;柱溫28 ℃;檢測波長360 nm;進樣量10 μL。
數據以 ±s表示,顯著性差異分別用t檢驗和單因素方差分析(SNK法),采用SPSS 22.0軟件分析。
2.1.1 顯色條件的優化
根據1.3.2節方法進行顯色反應,掃描光譜后,在波長640 nm處出現最大吸收波長,因此,選擇640 nm為檢測波長。如圖1所示,取0.1 mg/mL的GABA標準品溶液1.0 mL,加入0.1 mol/L四硼酸鈉緩沖液1.0 mL,6%重蒸酚溶液1.2 mL,7%次氯酸鈉溶液0.6 mL混勻,于沸水浴10 min后體系的吸光度最高。

圖1 重蒸酚、次氯酸鈉與沸水浴時間對吸光度影響Fig. 1 Effects of phenol, NaClO and boiling water bath time on absorbance
2.1.2 標準曲線的建立
從2.0 mg/mL的標準品溶液中分別取0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mL,加入去離子水定容至1.0 mL,再加入顯色劑進行顯色反應,測吸光度,結果表明,在0.2~1.0 mg/mL范圍內,吸光度與GABA質量濃度呈良好的線性關系。線性方程為Y=0.295 4x+0.026 1,R2=0.990 3。
2.2.1 GABA標準品檢測
配制1.0 mg/mL的GABA標準品溶液,按1.3.3節衍生后進樣檢測。GABA標準品的色譜圖如圖2所示,GABA的保留時間為7.009 min。

圖2 樣品與標準品的色譜圖Fig. 2 Chromatograms of sample and GABA standard
2.2.2 樣品中GABA含量檢測
稱取1.0 g桑茶粉末,按1.3.1節方法提取,按1.3.3節方法檢測,如圖2所示,在7.013 min發現目標峰,且目標峰與鄰近峰分離度好,該檢測條件適宜。
2.2.3 標準曲線的建立
配制1.0 mg/mL的GABA標準品溶液稀釋成0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mg/mL的標準液,衍生后進樣。以峰面積為縱坐標,標準液質量濃度為橫坐標繪制標準曲線。得到線性方程為Y=7 796.59X-485.24,R2=0.994 4,在GABA質量濃度為0.1~0.5 mg/mL范圍內線性關系良好。
2.3.1 精密度實驗結果分別取1 mL 1.0 mg/mL GABA標準溶液與1.0 g桑茶樣品,按1.3.2節與1.3.3節方法,在不同的時段各重復測量6 次,結果見表1。采用比色法與HPLC法測量,日內精密度與日間精密度的相對標準偏差(relative standard deviation,RSD)均在2%以內,表明這2 種實驗方法的精密度良好。比色法平均相對標準偏差為1.28%,HPLC法為0.37%。且不同時間內采用HPLC法測量的RSD均小于比色法,表明HPLC法測量的結果更精確。

表1 分析方法的精密度實驗(n= 6)Table 1 Precision of the colorimetric and HPLC methods (n= 6)
2.3.2 回收率實驗結果

表2 分析方法的回收率實驗(n=3)Table 2 Recovery of the colorimetric and HPLC methods (n= 3)
取0.5 g桑茶樣品提取后依次加入0.2、0.4 mg/mL和0.6 mg/mL的GABA標準液1.0 mL。然后分別采用比色法和HPLC法測量并計算回收率。如表2所示,2 種測量方法的平均回收率均大于98%,表明實驗方法準確可行;比色法的加標平均回收率為98.46%,小于HPLC法的平均回收率(100.10%),表明采用HPLC法測量GABA時準確度更高。此外,2 種方法的RSD均小于2%,顯示了2 種實驗方法均具有良好的精度。
分別采用2 種實驗方法對桑茶樣品和1.0 mg/mL標準液進行檢測,對檢測結果進行t檢驗。t桑=2.037、t標=0.551、t0.05(10)=2.228,t桑和t標均小于t0.05(10),表明比色法和HPLC法測量桑茶GABA無統計學差異。
分別將不同地區與品種的桑葉以凍干、微波干燥、烘箱烘干3 種方式干燥至恒質量;另取同一批次的鎮江地區新鮮桑葉,分別按紅茶與綠茶加工工藝制成桑葉紅茶和桑葉綠茶(桑茶采用烘干干燥,具體為110 ℃加熱30 min,然后90 ℃至恒質量)。然后各稱取1.0 g樣品采用比色法與HPLC法檢測GABA含量,結果見表3。

表3 桑茶和桑葉中的GABA含量Table 3 GABA contents in mulberry leaf tea and mulberry leaves mg/g
結果表明,干燥方式不同,GABA的含量不同。凍干桑葉中GABA含量最高,微波干燥次之,烘干桑葉最低。這可能與加熱的時間與溫度有關[22]。李赟等[23]研究表明,高溫烘焙,會使面包中的GABA含量降低;Katsube等[24]發現冷凍干燥較噴霧干燥對速溶紅茶中的GABA影響較小。
桑葉在制成桑茶后,與烘干相比GABA含量極顯著提高(P<0.01)。這可能是由于桑葉離體后,在攤晾、萎凋、碰撞、揉捻過程中,谷氨酸脫羧酶活力增強,由谷氨酸生產GABA有關[5,25]。本次加工所得的桑葉紅茶中GABA含量略高于桑葉綠茶,這可能是由于桑葉紅茶多了發酵工藝所致,但二者均未達到150 mg/100 g的標準,這提示可能需要在加工中采用厭氧[3]、浸泡[26]、低溫[27]等方式來進一步富集GABA。
對不同品種制得的桑葉紅茶、桑葉綠茶和干燥桑葉,分別采用比色和HPLC法進行測量GABA含量,經t檢驗,2 種檢測方法無統計學差異。
GABA理論上可采用Berthelot反應[28]定量測量。但是,桑葉樣品中含有的微量氨、銨鹽、酰胺等物質[29]以及色素[30],可能會影響測量結果。本研究表明,Berthelot比色法可準確定量測量干燥桑葉或桑茶中的GABA含量,測定條件為提取液1.0 mL加入0.1 mol/L四硼酸鈉緩沖液1 mL,再依次加入6%的重蒸酚溶液1.2 mL、7%的次氯酸鈉溶液0.6 mL混勻,沸水浴10 min后立刻冰浴5 min,至室溫待其出現藍綠色時再加入60%乙醇溶液2 mL,波長640 nm處測定吸光度。
比色法、HPLC法均可準確定量測量桑茶及桑葉中的GABA。比色法的平均相對標準偏差為1.28%,平均回收率為98.46%;HPLC法的平均相對標準偏差為0.37%,平均回收率為100.10%。2 種檢測方法均符合中國藥典要求,經t檢驗比較分析,2 種檢測方法無統計學差異。
不同加工工藝對桑葉中GABA含量有影響。桑葉加工成桑茶后,GABA含量高于烘干桑葉。同一品種桑葉制成的桑葉紅茶的GABA含量略高于桑葉綠茶。經t檢驗比較分析,2 種檢測方法無統計學差異但比色法更加方便快捷,對于桑茶的選材、加工和貯藏,以及桑葉系列食品的開發更有現實意義。