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拮抗菌巨大芽孢桿菌L2發酵條件的響應面優化

2018-09-07 02:58:22吉玉玉代園鳳趙妗頤唐婧紅張欽語
中國釀造 2018年8期
關鍵詞:優化

吉玉玉,黃 慧,肖 洋,陳 雪,代園鳳,李 祝*,楊 龍,張 素,趙妗頤,唐婧紅,張欽語

(1.貴州省煙草公司 畢節市公司,貴州 畢節 551700;2.貴州大學 生命科學學院,貴州 貴陽 550025;3.貴州省產品質量監督檢測院,貴州 貴陽 550016)

果蔬采后病原真菌的侵染是引起果實腐爛的重要原因之一[1-2]。據統計,由微生物侵染造成的采后果蔬腐爛占20%~25%[3]。鏈格孢菌(Alternaria alternata)屬于半知菌亞門鏈格孢屬,是番茄、甜瓜、梨、蘋果等眾多果蔬采后病害的主要病原菌[4-5],會造成貯藏、運輸和銷售中的大量爛果,損失嚴重。目前,使用化學殺菌劑仍是現在世界各國控制采后果實病害的主要方法[6]。但是長期使用化學藥劑會導致病原菌產生抗藥性,還會因果蔬農藥殘留量增加而威脅著人類的身體健康[7]。因此,發展無公害型生物農藥來控制果蔬采后病害成為一種新趨勢,逐漸成為研究熱點[8-10]。在過去的20多年里,生物防治作為一種防治采后果實腐爛的有效方法而涌現出來[11-17],此方法具有貯運條件易控制、處理目標明確、外界微生物干擾少、產品集中、處理費用低廉等特點和優點[18]。目前,應用較多的生防細菌主要有芽孢桿菌(Bacillusspp.)、土壤放射桿菌(Agrobacterium radiobacter)、假單胞桿菌(Pseudomonasspp.)等[19]。

芽孢桿菌屬菌是生物防治中常用的拮抗菌[20],具有繁殖快速、生命力強、安全無毒等特點。ABDALLA S A等[21]測試了45株芽孢桿菌菌株抑制番茄早疫病菌的能力,發現其中28株有抑制鏈格孢菌生長的能力(表現出明顯的抑菌圈)。ARREBOLA E等[22]從水果表面分離出解淀粉芽孢桿菌(Bacillus amyloliquefaciens)PPCB004,發現其對7種不同柑橘采后的真菌病原體具有抗菌活性。巨大芽孢桿菌(Bacillusmegaterium)L2作為一種植物根系促生細菌[23],是一種抑菌譜較廣的生防菌株[24],針對不同植物的真菌和細菌病害均具有防治作用(如毛竹枯梢病[25]、煙草灰霉病[26]、香蕉灰斑病[26]、甘薯黑斑病[26]等),其中對真菌病原菌的抑制能力強于對細菌病原菌的抑制[27]。根據課題組前期初步研究,發現菌株L2可有效抑制鏈格孢菌的生長[28]。繼而以抑菌圈直徑評價菌株L2抗菌物質對鏈格孢菌的抑制活性,采用響應面法快速優化產抗菌物質的發酵條件,從而獲得最佳的發酵工藝來提高菌株L2的抑菌活性,有效預防由微生物侵染造成的采后果蔬腐爛現象,為研究開發新型果蔬生物防腐劑提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

1.1.1 菌種

巨大芽孢桿菌(Bacillus megaterium)L2:由貴州大學真菌資源研究所分離,現保藏于中國典型培養物保藏中心(China center for type culture collection,CCTCC)(武漢大學),保藏號:CCTCC NO.M2012381。

鏈格孢菌(Alternaria alternata):由貴州大學生命科學學院真菌資源研究室分離、篩選、鑒定并保存。

1.1.2 培養基

馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potatodextroseagar,PDA)培養基:馬鈴薯200 g/L、葡萄糖20 g/L、瓊脂20 g/L、蒸餾水1 L、pH自然。

NB培養基:蛋白胨10 g/L,葡萄糖5 g/L,氯化鈉5 g/L,牛肉膏3 g/L,蒸餾水1 L,pH 7.0~7.2(NA培養基:NB培養基中加入瓊脂15~20 g/L)。

1.2 儀器與設備

SW-CJ-1FD單人單面凈化工作臺:蘇州凈化設備有限公司;FA2204N電子天平:上海菁海儀器有限公司;SHP-250智能生化培養箱:上海光都儀器設備有限公司;LDZX-50KBS立式壓力蒸汽滅菌器:上海申安醫療器械廠;SHZ-83A離心機:榮華股份有限公司;PHS-3C精密酸度計:上海大普儀器有限公司。

1.3 方法

1.3.1 菌種的活化與培養

將保存的巨大芽孢桿菌L2接種于NA斜面培養基上,30℃培養活化,再用接種環刮取兩環接種至NB培養液中,30℃、150 r/min培養20 h作為種子菌液。

1.3.2 發酵濾液的制備

在250mL三角瓶中裝入NB培養液后滅菌,無菌條件下向三角瓶內接入種子菌液,30℃、150 r/min培養48 h。將發酵液經5 500 r/min離心25 min,取上清液,經孔徑0.22 μm的細菌過濾器過濾,除去菌體,制得無菌發酵濾液備用。

1.3.3 抑菌活性的測定

以鏈格孢菌為指示菌,采用牛津杯法[29]對發酵液抑菌活性進行測定,活性大小以抑菌圈直徑(mm)表示。以未接種孢子懸液培養的PDA培養基作為空白對照,將牛津杯置于指示平板中央,取250 μL制備好的菌株L2無菌濾液于牛津杯中,28℃培養48h,用十字交叉法測量抑菌圈直徑,取平均值。以上步驟均按無菌要求進行操作,每個處理設3個重復。

1.3.4 巨大芽孢桿菌L2發酵條件優化

(1)單因素試驗

碳源:以葡萄糖、乳糖、麥芽糖、淀粉、蔗糖和山梨糖作為碳源,添加量為5 g/L,其他成分同初始培養基,配制發酵培養基。確定最佳碳源后對其進行質量濃度優化,選取質量濃度梯度為5 g/L、10 g/L、15 g/L、20 g/L、25 g/L、30 g/L、40 g/L、50 g/L。

氮源:以硝酸銨、尿素、硫酸銨、酵母膏、精氨酸、谷氨酸、牛肉膏作為氮源,添加量為5 g/L,其他成分同初始培養基,配制發酵培養基。確定最佳氮源后對其進行質量濃度優化,選取質量濃度梯度為2.0 g/L、2.5 g/L、3.0 g/L、3.5 g/L、4.0g/L、4.5g/L、5.0 g/L、5.5 g/L、6.0 g/L。

無機鹽:以不加無機鹽的培養基為空白,在此基礎上分別加入5g/L硫酸錳、硫酸鎂、氯化鈉、三氯化鐵、磷酸氫二鉀和碳酸鈣,其他成分同初始培養基,配制培養基。確定最佳無機鹽后對其進行質量濃度優化,選取質量濃度梯度為2.0g/L、2.5g/L、3.0g/L、3.5g/L、4.0g/L、4.5g/L、5.0g/L、5.5g/L、6.0 g/L。

設置菌株L2在三角瓶的接種量依次為2%、4%、6%、8%、10%、12%;pH值梯度為4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0;裝液量依次設為25 mL/250 mL、50 mL/250 mL、75 mL/250 mL、100 mL/250 mL、125 mL/250 mL;將各種影響因素在NB發酵培養基的條件上逐一改變,確定每個因素的最佳范圍。

(2)響應面法優化培養條件

在單因素、PB試驗和最陡爬坡試驗的基礎上,以抑菌圈直徑作為響應目標,利用響應面方法中的Box-Behnken Design(BBD)方法設計試驗,通過試驗數據擬合得到二階響應面模型,最終確定最優試驗條件。用Minitab軟件對試驗數據進行分析。

2 結果與分析

2.1 單因素優化

2.1.1 碳源種類及添加量的優化

圖1 碳源對抑菌圈直徑的影響Fig.1 Effect of carbon sources on inhibitory zone diameter

不同碳源對菌株L2的抑菌效果見圖1。由圖1可知,巨大芽孢桿菌L2對葡萄糖、蔗糖、麥芽糖都能很好的利用。葡萄糖作為唯一碳源時,抑菌圈直徑達到(14.55±0.43)mm,比其他糖的效果都好,故選擇葡萄糖作為菌株L2液體培養基的碳源。不同質量濃度葡萄糖的抑菌效果見圖2。

圖2 葡萄糖添加量對抑菌圈直徑的影響Fig.2 Effect of glucose addition on inhibitory zone diameter

由圖2可知,當葡萄糖添加量為15 g/L時,抑菌圈直徑最大,為(17.44±0.35)mm,故選擇15 g/L葡萄糖作為最優碳源添加量。

2.1.2 氮源種類及添加量的優化

圖3 氮源對抑菌圈直徑的影響Fig.3 Effect of nitrogen sources on inhibitory zone diameter

圖4 牛肉膏添加量對抑菌圈直徑的影響Fig.4 Effect of beef extract addition on inhibitory zone diameter

不同氮源對菌株L2的抑菌效果見圖3。由圖3可知,牛肉膏作為氮源時,抑菌圈直徑最大,達到(18.05±0.26)mm;其次是精氨酸、硫酸銨和硝酸銨,尿素和谷氨酸作為氮源時,抑菌圈直徑較小,故選用牛肉膏作為最適氮源。不同質量濃度牛肉膏的抑菌效果見圖4。由圖4可知,當牛肉膏添加量為4.5g/L時,抑菌圈直徑達到(24.59±0.32)mm,故選擇4.5g/L牛肉膏作為最優氮源添加量。

2.1.3 無機鹽種類及添加量的優化

不同無機鹽對巨大芽孢桿菌L2的抑菌效果見圖5。由圖5可知,巨大芽孢桿菌L2對鎂離子、錳離子、鈣離子、磷酸氫二鉀都能較好的利用,而鐵離子則抑制巨大芽孢桿菌的生長[30],從而影響了其抑菌效果。氯化鈉對L2的抑菌效果最明顯,抑菌圈直徑達到(28.48±0.31)mm,故選擇氯化鈉作為發酵培養基的最適無機鹽。不同質量濃度氯化鈉的抑菌效果見圖6。由圖6可知,氯化鈉添加量為3.0g/L時優于其他質量濃度,抑菌圈直徑達到最大,為(29.71±0.27)mm。

圖5 不同無機鹽對抑菌圈直徑的影響Fig.5 Effects of different inorganic salts on inhibitory zone diameter

圖6 氯化鈉添加量對抑菌圈直徑的影響Fig.6 Effect of sodium chloride addition on inhibitory zone diameter

2.1.4 接種量的優化

接種量對菌體生長有影響,所以接種量要適度,不同接種量對抑菌效果的影響如圖7所示。由圖7可知,當接種量為6%時,抑菌圈直徑達到最大,為(24.22±0.50)mm,故選擇最佳接種量為6%。

圖7 接種量對抑菌圈直徑的影響Fig.7 Effect of inoculum on inhibitory zone diameter

2.1.5 初始pH值的優化

培養基中pH值會影響細胞代謝酶活性和營養物質的離子化程度,進而影響微生物生長代謝[31],初始pH值對抑菌效果的影響如圖8所示。由圖8可知,當發酵初始pH值為7.0時抑菌圈直徑達到最大,為(27.33±0.26)mm,故選擇發酵pH=7.0為響應面試驗中心試驗點。

圖8 初始pH值對抑菌圈直徑的影響Fig.8 Effect of initial pH value on inhibitory zone diameter

2.1.6 裝液量的優化

圖9 裝液量對抑菌圈直徑的影響Fig.9 Effect of loading volume on inhibitory zone diameter

巨大芽孢桿菌是好氧細菌,低的裝液量使得液體培養基中溶解氧升高,滿足菌體生長和代謝的要求,使得產抗菌物質活性提高,不同裝液量對抑菌圈直徑的影響見圖9。由圖9可知,裝液量為50 mL/250 mL時,發酵液對病原菌抑菌圈直徑為(27.53±0.26)mm,比裝液量為25 mL/250 mL、75mL/250mL、100 mL/250 mL的效果好,故選擇裝液量為50 mL/250 mL。

2.2 響應面法優化培養條件

2.2.1 響應面試驗設計

通過前期PB試驗、最陡爬坡試驗確定主效應因素為牛肉膏、氯化鈉和初始pH值,并以牛肉膏4.58 g/L,氯化鈉3.23 g/L、初始pH值7.0為中心點進行設計。利用Minitab軟件的Box-Behnken設計原理,對巨大芽孢桿菌L2培養條件進行3因素3水平試驗,選擇牛肉膏(X1)、氯化鈉(X2)、初始pH值(X3)3個因素為自變量,以抑菌圈直徑(Y)為響應值,試驗設計及結果如表1所示。

表1 巨大芽孢桿菌L2發酵條件優化響應面試驗結果與分析Table 1 Results and analysis of response surface experiments for fermentation conditions optimization ofBacillus megaterium L2

2.2.2 二次回歸模型的建立及檢驗

根據Minitab軟件得到擬合二階模型公式:Y=34.9533+0.3162X1+0.0812X2+0.0625X3-0.3767X12-0.2567X22-0.4242X32-0.025 0X1X2-0.032 5X1X3+0.012 5X2X3

回歸方程方差顯著性檢驗分析見表2,回歸方程模型P=0.000<0.01,說明方程擬合度較好;失擬項P=0.122>0.05,說明失擬不顯著,模型不失擬,選擇合理。根據表2中F(X1)=261.62,F(X2)=17.27,F(X3)=10.22,說明各因素條件對抑菌圈直徑的影響程度存在差異,各因素影響的主次順序為X1>X2>X3,即牛肉膏>氯化鈉>初始pH值。X1(牛肉膏)、X2(氯化鈉)、X3(初始pH值)對抑菌圈直徑的線性效應顯著,各因素之間交互作用對抑菌圈的交互影響不顯著(P>0.05),X12(牛肉膏的二次項)、X22(氯化鈉的二次項)、X32(初始pH值的二次項)對抑菌圈的影響極顯著(P<0.01)。復相關系數R2=99.29%,說明實驗值和預測值之間有較強的相關性,校正決定系數R2adj=98.02%,表明模型擬合較好。

表2 回歸方程的方差分析Table 2 Variance analysis of the regression equation

2.2.3 響應曲面的擬合及最優條件的確定

固定其中的一個因素,利用Minitab軟件做另外兩個因素交互作用的曲面圖及等值線圖,確定牛肉膏、氯化鈉及初始pH值對抑菌圈直徑的影響。結果見圖10。

由圖10可知,牛肉膏、氯化鈉、初始pH值相互作用對菌株L2抑菌活性的影響均出現拋物面型關系,所得到的響應面都存在一個極大值點,其中牛肉膏與初始pH值之間的交互作用最為明顯。

經過響應面優化,根據擬合二階模型公式得到理論上的培養基配方為牛肉膏添加量4.58 g/L,氯化鈉添加量3.23 g/L,初始pH值為7.0時,抑菌圈直徑最大為34.77 mm。為了驗證所得到的最佳培養基組成是否可靠,同時考慮了實際操作的可行性,將培養基成分調整為牛肉膏添加量4.6 g/L、氯化鈉添加量3.0 g/L,初始pH值為7.0,進行3次重復試驗,得到L2抑菌圈直徑為(34.99±0.14)mm,與預測值34.77 mm擬合度高,說明該模型能很好得模擬和預測實驗結果,證實了模型的有效性。

圖10 牛肉膏、氯化鈉和初始pH值交互作用對抑菌圈大小影響的響應曲面和等高線Fig.10 Response surface plots and contour lines of effects of interactions between beef extract,NaCl and initial pH value on inhibitory zone diameter

3 結論

本試驗以病原真菌鏈格孢菌為指示菌,在單因素的基礎上,利用響應面法對巨大芽孢桿菌L2抗菌性能的發酵條件進行了研究,結果得到最優發酵條件:葡萄糖添加量15 g/L,牛肉膏添加量4.6 g/L,氯化鈉添加量3.0 g/L,初始pH為7.0,裝液量50 mL/250 mL,接種量6%,優化后發酵液抑菌圈直徑為(34.99±0.14)mm,比原始發酵條件下的抑菌圈直徑為(14.55±0.43)mm提高了140.48%。試驗篩選出牛肉膏、氯化鈉和初始pH值為主效應因素,說明培養基成分與酸堿性對菌株L2產生抑菌物質的影響較顯著,為后續進一步優化發酵條件和投入生產提供依據。但本研究是在實驗室搖瓶條件下進行,要實現工業化大規模開發生產,還需進一步培養工藝的研究。

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