5種氮源對蛹蟲草生長及其質量的影響

李 菲，王 忠，卞文印，鐘李鳳

[安發(福建)生物科技有限公司， 福建 寧德 352100]

蛹蟲草又名北冬蟲夏草，屬于真菌門、子囊菌綱、肉座菌目、麥角菌科、蟲草屬[1]。蛹蟲草含有豐富的生物活性成分，如蟲草素、蟲草酸、蟲草多糖等，其中蟲草素是一種核苷類抗生素，能抑制 mRNA 合成，誘導細胞凋亡 ，使細胞分化，對多種腫瘤細胞的生長具有抑制作用，尤其是對某些類型的白血細胞抑制作用更為明顯[2-3]；蟲草多糖可提高人體免疫功能，已臨床用于治療惡性腫瘤[3-4]。氮源作為蛹蟲草生長必需的營養成分之一，對蛹蟲草生長有著非常重要的作用。本試驗系統研究氮源對蛹蟲草子實體生長及蟲草素、蟲草多糖含量的影響，以尋找適宜蛹蟲草生長及蟲草素、蟲草多糖積累的氮源，為生產富含蟲草素、蟲草多糖的蛹蟲草提供參考。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

蛹蟲草菌種Cmα-001，由安發(福建)生物科技有限公司研發中心實驗室提供。

葡萄糖、蔗糖、瓊脂、硫酸鎂、維生素B1、磷酸二氫鉀、蛋白胨、蠶蛹粉、牛肉膏、黃豆粉、酵母粉、硫酸銨、蟲草素、甘露醇標樣、甲醇(色譜純)、四氫呋喃(色譜純)、無水乙醇、氯仿、正丁醇、濃硫酸、苯酚(分析純)等。

SW-CJ-1A超凈工作臺，SPX-250BS-Ⅱ生化培養箱，TES1330A照度計，MS6508數顯溫濕度計，Waters高效液相色譜儀，Waters2487紫外檢測器，Part No.wato45905C18(4.6 mm×150 mm)色譜柱，漢邦C18(4.6 mm×250 mm,5 μm)色譜柱，0.5 μm水相微孔濾膜，恒溫水浴鍋，722分光光度計。

1.2 試驗處理

用于菌種分離培養的斜面培養基：馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂20 g、MgSO40.5 g、KH2PO41.0 g、VB10.1 g，pH自然值；用于培養菌絲體的液體培養基：馬鈴薯200.0 g、葡萄糖20.0 g、蛋白胨5.0 g、MgSO41.0 g、KH2PO42.0 g、VB10.1 g，pH自然值，分裝至三角瓶；用于栽培的培養基：大米32 g、營養液42 mL (蔗糖20 g、 MgSO41.0 g、KH2PO42.0 g、 VB10.1 g、水1000 mL，pH自然值)，以不加氮源作為對照(CK)，5個試驗處理分別加入10 g·L-1的蛋白胨、牛肉膏、黃豆粉、蠶蛹粉、酵母粉作為氮源，分別編號為Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ、Ⅵ，研究不同氮源對蛹蟲草整個生長過程、產量，以及對蟲草多糖、蟲草素含量的影響。

1.3 栽培方法

栽培種制備：將蛹蟲草母種進行分離，接種至斜面試管，放置于生化培養箱中18℃培養，從培養的第4 d開始，每天進行10 h光照培養，7 d左右獲得生產菌種。

液體種制備：在超凈工作臺下，將試管菌切成小碎塊，接種至液體培養基中，溫度20℃下靜置培養48 h，后置于搖床內130 r·min-1下進行振蕩培養，3 d左右獲得液體接種菌。將液體菌種稀釋5倍，即可用于接種大米培養基。

接種后搬進培養室內，溫度18～20℃下黑暗培養5 d左右，至菌絲吃透培養基；發菌完成后開始進行弱光照培養，在光照度200～400 lx、光照時長10～12 h·d-1、溫度20℃、相對濕度70%～80%條件下培養4 d左右，至培養基完全轉為橙色；之后進入原基分化階段，溫差控制在5～10℃，培養5 d左右，至有較多小刺尖狀突起形成；之后進入子實體生長階段，溫度22℃，相對濕度80%～90%，光照700～1 000 lx，每日光照10 h·d-1，培養35 d左右，采收時60℃烘干。

1.4 蟲草素、蟲草多糖含量的測定

高效液相色譜條件：C18柱，250 mm×4.6 mm(i.d.)，5 μm，流動性：乙腈∶水為5∶95，用前過0.45 μm濾膜，脫氣。流速：1.0 mL·min-1，柱溫：35℃，波長：260 nm，進樣量：10 μL。

蟲草素標準曲線制定：準確吸取0.1 mL、0.2 mL、0.5 mL、1.0 mL、2.0 mL和5.0 mL的標準液于10 mL容量瓶中，用水定容、搖勻，該標準曲線濃度設為1.00、2.00、5.00、10.0、20.0和50.0 μg·mL-1，按色譜條件測定，以蟲草素質量為橫坐標，相應的峰面積為縱坐標，計算標準曲線，求線性回歸方程。

提取蟲草多糖：取每組樣品粉末，以無水乙醇提取10 h除去脂溶性成分，自然風干，取脫脂后的殘渣，水浴70℃恒溫提取2次，過濾，取濾液減壓濃縮，濃縮液以Savag法除去蛋白質，最后移入100 mL的容量瓶中，冷卻定容備用。

葡萄糖標準曲線繪制：精確稱取葡萄糖200 mg置于100 mL容量瓶中，定容搖勻，取1 mL溶液溶于50 mL容量瓶中定容搖勻，備用。分別吸取標準溶液0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、1.8 mL,用蒸餾水補充至2.0 mL，加入6%的苯酚溶液1 mL，靜止10 min,搖勻靜置20 min，于490 nm處測定吸光值，以2.0 mL蒸餾水作為空白，獲得回歸方程：A=0.0089C+0.0117，r=0.9950。其中，A為吸光值，C為葡萄糖濃度。

精確吸取樣品處理液1.0 mL置于10 mL比色管中，加水補足至2.0 mL，樣品管和空白管中加入苯酚溶液1.0 mL，搖勻，迅速加濃硫酸5.0 mL，搖勻放置5 min，置沸水浴中加熱15 min，取出冷卻至室溫，以空白校正零點，于490 nm處用1.0 mL比色皿測吸光度[5-6]。

2 結果與分析

2.1 5種氮源對蛹蟲草發菌的影響

由表1可知，添加蛋白胨、蠶蛹粉的菌絲健壯、濃密、潔白，菌絲生長速度較快，且菌絲生長速度顯著高于添加牛肉膏、黃豆粉、酵母粉處理。對照處理蛹蟲草菌絲生長速度顯著低于各添加氮源處理。說明適當添加氮源有利于蛹蟲草菌絲生長。

表1 不同氮源對蛹蟲草發菌階段的影響

注：表中所列數據為平均值±標準差;同列數據后不同小寫字母表示其在0.05水平下差異顯著，下表同。

2.2 5種氮源對蛹蟲草子實體生長的影響

由表2可知，添加氮源處理蛹蟲草子實體的畸形率顯著低于對照；添加氮源處理蛹蟲草子實體的平均高度顯著高于對照。除處理Ⅵ外，各處理的出草率均顯著高于對照。說明添加氮源有利于子實體生長，且以添加蠶蛹粉處理最佳，其次是添加蛋白胨處理。除處理Ⅵ外，各處理的干品產量均顯著高于對照，且添加蠶蛹粉處理干品產量最高。

表2 5種氮源對蛹蟲草子實體生長的影響

2.3 5種氮源對蟲草素及蟲草多糖含量的影響

由表3可知，與對照處理相比，添加氮源處理蟲草素的含量及產量、蟲草多糖的含量與產量均增加，說明添加氮源更有利于蟲草素、蟲草多糖的積累。添加蠶蛹粉處理的蟲草素含量及產量均明顯高于其他處理，蛋白胨次之。添加蛋白胨處理的蟲草多糖含量顯著高于其他氮源處理，添加蠶蛹粉處理的蟲草多糖產量顯著高于其他處理。

表3 5種氮源對蟲草素及蟲草多糖含量的影響

3 討論

添加氮源對蛹蟲草整個生長過程都有很大的促進作用，且以添加蛋白胨和蠶蛹粉處理更有利于蛹蟲草生長，子實體產量和質量均較高，蟲草素的含量與產量，蟲草多糖的含量及產量均相對較高。說明添加蛋白胨和蠶蛹粉均能促進蛹蟲草的生長及有效成分的積累。添加蠶蛹粉處理的蟲草素含量及產量均最高，分別達到(7.93±0.092)mg·g-1和每瓶(34.06±0.158)mg。添加蛋白胨處理蟲草多糖含量最高，達到(21.36±0.076)mg·g-1，但由于子實體產量相對添加蠶蛹粉處理低，造成蟲草多糖產量低于添加蠶蛹粉處理；添加蠶蛹粉處理的蟲草多糖產量最高，每瓶達(103.85±0.169)mg。因此，建議添加蠶蛹粉作為氮源，更適合高產量、高質量蛹蟲草的栽培生產。

參考文獻：

[1]鄭壯麗,黃春花,梅彩英,等.蛹蟲草國內外研究的新進展[J].環境昆蟲報，2011,3(2):225-233.

[2]曾照芳,羅光麗.蟲草素臨床應用研究概述[J].實用中醫藥雜志,2010,26(9)：666-668.

[3]張平,朱述鈞,錢大順,等.北冬蟲夏草功能成分及保健作用分析[J].江蘇農業科學,2003(6):105-107.

[4]CHO H J，CHO J Y ，RHEE M H ，et al.Cordycepin(3-deoxyaden sine)in hibits human platelet aggregation acyclic AMP and cyclic GMP-dependent manner[J]．European Journal of Pharmacology，2007，558(1)：43-51.

[5]王蕾,于榮敏,張輝,等.人工培養蛹蟲草多糖的分離純化及其結構的初步研究[J].中國生化藥物雜志, 2003(1): 23-25.

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