α-萘酚-硫酸法測定酒糟多糖含量

張世仙，劉 焱，朱 彬，金 茜，曾啟華

(遵義師范學院化學化工學院，黔北特色資源應用研究實驗室，貴州 遵義 563002)

多糖是由10個以上的單糖分子通過糖苷鍵結合而成的物質，多糖是一切有生命的有機體必不可少的成分，是構成動植物骨架結構的組成成分，多糖與維持生命的種種生理機能密切相關。研究發現多糖能控制細胞分裂和分化，調節細胞的生長與衰老，有些多糖具有抗腫瘤、抗病毒、降血糖、降血壓、鎮痛、抗輻射等藥效[1-5]。貴州省是釀酒大省，大多數白酒是用當地生產的高粱和小麥為原料通過酒曲發酵而成，其最大副產物——酒糟中殘存著大量的多糖、被富集的蛋白質、礦物元素等營養物質[6-7]，是提取酒糟多糖的較好原料。

對多糖的定量測定可以采用兩種方法[8-17]：一是利用多糖中的還原糖與試劑發生氧化還原反應顯色測定，如3,5-二硝基水楊酸鹽(DNS)比色法和Somogyi-Nelson法；二是將多糖在強酸性條件下脫水生成糠醛或其衍生物，再與酚類或胺類化合物縮合，生成有特殊顏色的物質進行測定，如苯酚-硫酸法和蒽酮-硫酸法。其中苯酚-硫酸法是常用的一種經典方法，但是苯酚毒性大、易氧化，其提純操作較難控制，文獻[18]報道用萘酚-硫酸法測定白果多糖的含量，方法可行和容易操作。本實驗嘗試用a-萘酚-硫酸法測定酒糟多糖的含量，以建立酒糟多糖含量的測定方法和實驗技術。

1 材料與方法

1.1 材料、試劑與儀器

酒糟 貴州省某酒廠提供；α-萘酚(分析純) 湘中化學試劑開發中心；葡萄糖(分析純) 天津市大茂化學試劑廠；無水乙醇(分析純)、濃硫酸(分析純) 成都市科龍化工試劑廠。

722型分光光度計 上海精密科學儀器有限公司；TB-214型電子天平 北京賽多利斯儀器系統有限公司；pHS-2C型精密酸度計 上海大普儀器有限公司；RE-52型旋轉蒸發儀 上海亞榮生化儀器廠；0412-1型離心機上海手術器械廠；真空冷凍干燥機 美國Labconco公司。

1.2 方法

1.2.1 酒糟多糖的提取工藝[19-22]

新鮮酒糟粉→在料水比1∶12條件下，用鹽酸調pH值至5.0～5.5→控制溫度用水解蛋白酶降解酒糟中的蛋白質→離心→pH值調至中性→濃縮→4倍體積95%乙醇沉淀→靜置→過濾→冷凍干燥→酒糟多糖

1.2.2 溶液配制

葡萄糖標準溶液：精密稱取105℃干燥至質量恒定的葡萄糖標準品20mg，用二次蒸餾水定容至500mL，即得葡萄糖標準貯備液。

樣品溶液：精密稱取樣品0.2200g，用二次蒸餾水定容至50mL，移取10mL，用二次蒸餾水定容至100mL，即為0.44mg/mL待測樣品溶液。

1.5g/100mLα-萘酚溶液：準確稱取1.5gα-萘酚，用體積分數30%乙醇溶液溶解并定容至100mL，即為1.5g/100mLα-萘酚溶液，轉移至棕色瓶，于4℃冰箱保存、備用。

1.2.3 最大吸收波長確定

準確移取1mL 0.1mg/mL葡萄糖標準溶液于25mL比色管中，加入1mL 1.5g/100mL的α-萘酚溶液，搖勻并迅速加入5mL濃硫酸，充分混合，室溫放置至無氣泡后(約20min)，在410～710nm波長區域測定吸光度，并以試劑空白為對照。

1.2.4 標準曲線的繪制

準確移取葡萄糖標準溶液10、15、20、30、35、40、45mL于50mL容量瓶中定容，得系列質量濃度的標準溶液。按1.2.3節方法實驗，于560nm波長處，以試劑空白為參比測吸光度。

1.2.5 換算因子的測定[12-14]

準確移取1.2.2節中的樣品溶液1mL，用二次蒸餾水定容于10mL容量瓶中。取1.0mL溶液5份，按1.2.3節方法實驗，測定吸光度，由回歸方程計算多糖中葡萄糖平均含量，按下式(1)計算出換算因子f。

式中：m為多糖質量/mg；ρ為樣品溶液中葡萄糖的質量濃度/(μg/mL)；D為多糖的稀釋倍數；V為體積/mL。

1.2.6 樣品測定

準確移取1mL質量濃度為0.44mg/mL樣品溶液3份，按1.2.3節方法實驗，測定吸光度，由回歸方程計算葡萄糖含量，按式(2)計算得出酒糟多糖含量。

式中：W為樣品的質量/mg；其他量符號含義同式(1)。

2 結果與分析

2.1 最大吸收波長確定

取一定量的葡萄糖標準液，按1.2.3節方法實驗所得的吸收曲線見圖1。從圖1可見，最大吸收峰波長為560nm。

圖1 α-萘酚-硫酸法確定多糖最大吸收波長Fig.1 The maximum absorption wavelength for naphthol-vitriol photometric determination of polysaccharide

2.2 標準曲線的測定

根據1.2.4節方法，以葡萄糖質量濃度為橫坐標、吸光度為縱坐標繪制標準曲線，標準曲線方程為A=0.0255ρ＋0.0419，R2=0.9975，葡萄糖在6～36μg/mL之間呈良好的線性關系。

2.3 測定方法的考察

2.3.1 顯色時間的確定

準確移取1mL樣品溶液，按1.2.2節方法實驗，每隔10min測定1次吸光度，連續測定50min，結果見圖2。

圖2 顯色時間對吸光度的影響(n=3)Fig.2 Effect of coloration time on absorbance (n=3)

由圖2可見，冷卻至室溫后的20min內吸光度很穩定，30min后吸光度雖然有所下降，但下降趨勢不明顯，因此按1.2.2節方法實驗的時間控制在20min之內。

2.3.2α-萘酚溶液添加量的確定

在盛有1.0mL一定質量濃度的葡萄糖標準溶液的5支比色管中，各加入1.0mL二次蒸餾水和1.5g/100mL的α-萘酚溶液0.2、0.6、0.8、1.0、1.2mL，再分別加入2.5mL濃硫酸，另取一支比色管作空白，按1.2.2節方法實驗并測定吸光度。結果表明，當1.5g/100mL的α-萘酚溶液加入量為1.0mL時，吸光度較大，見圖3。

圖3 α-萘酚添加量對吸光度的影響Fig.3 Effect of α-naphthol dosage on absorbance

2.3.3α-萘酚溶液質量濃度的確定

取6支比色管，分別加入1.0mL一定質量濃度的葡萄糖標準溶液，再分別加入質量濃度為0、0.500、0.750、0.875、1.500、1.750g/100mL的α-萘酚溶液，按1.2.2節方法實驗并測定吸光度。結果表明，使用1.500g/100mLα-萘酚溶液，吸光度最大，見圖4。

圖4 α-萘酚質量濃度對吸光度的影響Fig.4 Effect of α-naphthol concentration on absorbance

2.4 方法學考察

2.4.1 精密度實驗

準確移取1mL 一定質量濃度的葡萄糖標準溶液于11支比色管中，加雙蒸水1.0mL，再加入1.0mL 1.5g/100mL的α-萘酚溶液，按1.4.3節方法實驗，連續測定11次，得吸光度分別為0.904、0.898、0.900、0.900、0.898、0.899、0.901、0.900、0.899、0.900、0.899，計算RSD為0.18%。

2.4.2 重復性實驗

準確量取1mL 0.44mg/mL的樣品溶液于8支比色管，按1.2.2節方法實驗，得吸光度分別為0.686、0.686、0.685、0.684、0.686、0.686、0.684、0.685，計算RSD為0.14%。

2.4.3 加標回收率實驗

準確量取2mL 0.44mg/mL的樣品溶液于10mL容量瓶中，用二次蒸餾水定容至刻度，取1mL按1.2.3節方法實驗，測得吸光度，換算含糖量平均值為0.945μg/mL。再取4支10mL容量瓶，各加入2mL該樣品溶液，并分別加入一定量的葡萄糖標準溶液，用二次蒸餾水定容至刻度，取1mL按1.2.3節方法進行實驗，結果見表1。

表1 回收率測定結果(n=4)Table 1 Recovery rates of glucose from spiked sample (n=4)

從表1可見，平均回收率為100.65%，RSD為6.5%。2.4.4 換算因子的測定

實驗測得1.2.5節中樣品溶液的吸光度為0.585、0.585、0.593、0.588、0.586。由回歸方程計算出酒糟多糖中葡萄糖平均含量為21.392μg/mL，按換算因子公式計算出f＝2.057(n=5)。

2.5 樣品測定

將1.2.6節實驗測得的吸光度代入回歸方程計算葡萄糖含量，再通過多糖含量公式計算得出酒糟多糖平均含量為10.6%，RSD為4.0%(n=3)。

3 結 論

α-萘酚-硫酸法測定酒糟多糖含量實驗表明：樣品與5mL濃硫酸反應，用1.5g/100mLα-萘酚1.0mL顯色，于560nm波長處測定其吸光度，實驗結果較穩定，回收率較高。

α-萘酚-硫酸法與常用的苯酚-硫酸法相比，測定酒糟多糖含量的步驟基本一致，但是α-萘酚-硫酸法在操作、試劑消耗等方面更具優勢，適合酒糟多糖含量的測定。

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