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篩選化學過敏原的直接肽反應試驗的建立

2018-04-09 07:21:17胡培麗劉師卜張會亮王鋼力
癌變·畸變·突變 2018年2期
關鍵詞:化學方法

胡培麗,劉師卜,張會亮,李  波,王鋼力*

(中國食品藥品檢定研究院,北京  100050)

大多數化學過敏原(或其代謝物)屬于親電子劑,而蛋白質側鏈氨基酸富含電子組,為親核劑,因此能與親電過敏原反應。賴氨酸和半胱氨酸是最常被利用的,其他含親核雜原子的氨基酸,如組氨酸、蛋氨酸和酪氨酸等也可與親電過敏原反應[1]。親電過敏原通過與宿主親核蛋白中的氨基酸形成非常穩定的共價鍵(抗原蛋白復合物),從而引發皮膚過敏反應。

由于蛋白質反應是誘導皮膚過敏的一個關鍵環節,所以有假設通過這種反應來篩選化學物的致敏能力[2-5]。 Gerberick等[5-6]建立了直接肽反應試驗(the direct peptide reactivity assay,DPRA),通過研究肽反應動力學,監測肽的損耗來評價化學物的致敏性。該方法現已經歐洲替代試驗驗證中心(European Centre for the Validation of Alternative Methods,ECVAM)驗證,作為皮膚致敏替代試驗的推薦方法,OECD于2015年公布了DPRA試驗指南(TG 442C)[7]。目前國內一些實驗室也正在積極開展該方法研究[8-10],不久該方法有望納入化妝品安全技術規范。本研究通過賴氨酸/半胱氨酸肽對20種不同致敏級別化學物的致敏能力進行評估,從而在本實驗室建立了該方法,同時對目前市場上化妝品中較易殘留或添加的2種風險化學物氯仿、苯進行皮膚致敏性評估。

1 材料與方法

1.1 受試物

鄰氨基苯酚、丁子香酚、反式肉桂醛、水楊酸、α-己基肉桂醛、對苯二酚、3-甲基鄰苯二酚、香葉醇、水楊酸己酯、2-巰基苯并噻唑、十二烷基硫酸鈉、異丁香酚、乙二胺與水楊酸甲酯購自Sigma公司;丙二醇、異丙醇、正己烷、氯仿與苯購自國藥集團化學試劑有限公司;2,4-二硝基氯苯購自中國醫藥總公司北京分公司。

1.2 試劑和儀器

賴氨酸肽(Ac-RFAAKAA-COOH)、半胱氨酸肽(Ac-RFAACAA-COOH)由吉爾生化(上海)有限公司合成,純度≥98%。醋酸銨、氨水、磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉、三氟乙酸為分析純,購自Sigma公司。乙腈為色譜純,購自賽默飛世爾科技有限公司,高效液相色譜為Waters e2695 Alliance。

1.3 方法

1.3.1受試物與肽反應體系[5-7]受試物用乙腈配制成100 mmol/L,賴氨酸/半胱氨酸肽分別用100 mmol/L乙酸銨緩沖液(pH=10.2)/磷酸緩沖液(pH=7.5)配制成1.25 mmol/L肽儲備液。每個受試物測試3份平行樣,其中含0.5 mmol/L肽(400 μL)、5或25 mmol/L受試物(50或250 μL)及緩沖液(350 μL)。肽/受試物比例為1∶10(半胱氨酸)或1:50(賴氨酸),1∶10比例反應樣本中需另加200 μL乙腈;同時設置空白對照(400 μL肽儲備液、350 μL緩沖液和250 μL乙腈)和共洗脫對照(賴氨酸肽:750 μL乙酸銨緩沖液和250 μL受試物;半胱氨酸肽:750 μL磷酸緩沖液、50 μL受試物和200 μL乙腈)。每個樣本管密封、混勻、室溫反應24 h,經0.22 μm微孔濾膜過濾后進行高效液相色譜檢測分析。

1.3.2標準曲線繪制[6]用25%乙腈乙酸銨/磷酸緩沖液分別配制賴氨酸/半胱氨酸肽系列標準溶液,濃度為0.015 6、0.031 3、0.062 5、0.125、0.25、0.50、1.0 mmol/L,過濾后進行高效液相色譜檢測,用系統EmpowerTM3軟件繪制標準曲線。

1.3.3檢測系統及條件[6-7]高效液相色譜檢測系統由Waters Alliance e2695和Waters 2489 紫外/可見光檢測器組成。色譜柱:Agilent Zorbax SB-C18 4.6 mm×250 mm×5 μm;柱溫30 ℃;流動相A:0.1%三氟乙酸水溶液;流動相B:0.085%三氟乙酸乙腈溶液;流速0.3 mL/min;進樣量10 μL。梯度洗脫條件為:90%(A) 到60%(A),25 min,流速0.8 mL/min。二極管陣列探測器掃描波長210~400 nm,色譜圖檢測波長是220 nm。

1.3.4受試物與兩種肽反應時間優化 為了解化學物與兩種肽反應動力學過程,即不同時間點肽損耗,從而確定試驗反應最佳時間,我們測定了5種不同致敏級別受試物與兩種肽分別反應5、15、30 h 時的肽損耗。

1.4 數據處理

用EmpowerTM3軟件分析反應前后的峰面積,計算肽的損耗率,≥10%則認為受試物與肽有反應[5]。損耗率=[1-(肽與受試物反應的峰面積均值/空白對照的肽峰面積均值)]×100。

1.5 預測模型[7]

若受試物與賴氨酸/半胱氨酸肽均不發生共洗脫,則用兩種肽損耗率的均值判斷,0%≤均值≤6.38%,微反應,為致敏陰性;6.38%<均值≤22.62%、22.62%<均值≤42.47%、42.47%<均值≤100%,均為致敏陽性,反應級別依次為低、中、高。當受試物與賴氨酸肽發生共洗脫,則用半胱氨酸肽損耗率判斷,0%≤均值≤13.89%,微反應,為致敏陰性;13.89% <均值≤23.09%、 23.09%<均 值 ≤ 98.24%、 98.24%<均 值 ≤100%, 均為致敏陽性,反應級別依次為低、中、高。當受試物與賴氨酸/半胱氨酸肽均發生共洗脫,則該方法不適用判定受試物致敏性。

1.6 預測能力評價

根據賴氨酸/半胱氨酸肽與18種已知致敏性化學物反應損耗確定兩種肽的靈敏度、特異性、陽性預測率、陰性預測率和準確度,從而綜合評價兩種肽的預測能力。

2 結果

2.1 受試物與兩種肽反應時間的優化

5種受試物分別與賴氨酸/半胱氨酸肽反應5、15、30 h,結果表明:2,4-二硝基氯苯、丁子香酚、水楊酸和鄰苯氨基苯酚均隨著時間增加肽損耗率也相應增加;反式肉桂醛與半胱氨酸肽反應肽損耗率較為穩定,而與賴氨酸肽反應隨時間增加肽損耗率遞減,但反應15~30 h時間段肽損耗率遞減緩慢,趨于穩定。鑒于Gerberick等[5-6]有關報道和OECD指南中推薦受試物與肽反應時間分別為24 h和(24±2) h,所以我們后續試驗各受試物與肽反應時間均為24~28 h。

圖1 賴氨酸肽與不同受試物反應動力學圖

2.2 20種受試物與兩種肽反應結果

圖2 半胱氨酸肽與不同受試物反應動力學圖

高效液相色譜檢測結果顯示20種受試物均未與半胱氨酸/賴氨酸肽發生共洗脫,選用兩種肽損耗率均值判斷受試物致敏性及其反應活性級別(表1),兩種肽對受試物致敏性的預測結果見表2。

表1 20種受試物與半胱氨酸/賴氨酸肽反應活性(肽損耗率,%)

半胱氨酸肽 賴氨酸肽 半胱氨酸/賴氨酸肽靈敏度 100.00% 33.30% 100.00%特異性 100.00% 100.00% 100.00%陽性預測率 100.00% 100.00% 100.00%陰性預測率 100.00% 42.90% 100.00%準確度 100.00% 55.60% 100.00%

2.2.1半胱氨酸肽損耗率 5種強或極強致敏物肽損耗率均大于10%(4種大于99%),4種中等致敏物肽損耗率均大于10%(3種大于67%),3種弱致敏物肽損耗率均大于20%(21%~52%),6種非致敏物肽損耗率均小于3%,致敏性未知的氯仿與苯均未與肽反應(肽損耗率<2%)。預測化學物致敏性靈敏度、特異性、陽性預測率、陰性預測率和準確度均為100%。

2.2.2賴氨酸肽損耗率 5種強或極強致敏物中4種肽損耗率大于20%(24%~72%),水楊酸己酯未與肽反應(肽損耗率小于2%);4種中等致敏物、3種弱致敏物和6種非致敏物均未與肽反應(肽損耗率<10%);致敏性未知的氯仿和苯也未與肽反應(肽損耗率<2%)。預測化學物致敏性靈敏度、特異性、陽性預測率、陰性預測率和準確度分別為33.3%、100.0%、100.0%、42.9%、55.6%。

2.2.3半胱氨酸/賴氨酸肽損耗率均值 18種已知致敏性受試物中12種肽損耗率均值大于6.38%,為致敏陽性;6種肽損耗率均值小于6.38%,為致敏陰性,與LLNA致敏分類一致。致敏性未知的氯仿和苯肽損耗率均值均小于6.38%,為致敏陰性,與我們前期研究中LLNA法評估結果一致。5種強或極強致敏物中4種為高反應活性,1種為低反應活性;4種中等致敏物中3種為中反應活性,1種為低反應活性;3種弱致敏物中2種為低反應活性,1種為中反應活性;6種非致敏物均為微反應活性;致敏性未知的氯仿與苯均為微反應活性。預測化學物致敏性靈敏度、特異性、陽性預測率、陰性預測率和準確度均為100.0%。

3 討論

目前化學物致敏性評價替代方法較多,如LLNA法[11-15]、 細胞法[16-19]、 化學法[5-6]、 計算機法[20]等,其中LLNA法較成熟,可較好地評價化學物的致敏性及其致敏強度。由于動物福利及歐盟化妝品條例要求逐步廢除動物實驗,因此發展高效、全面、安全的體外替代方法迫在眉睫。

本研究建立的化學法DPRA,簡單快捷、易操作。但該方法要求測試化學物應溶于適當的溶劑制成終濃度100 mmol/L,同時需要測試化學物與肽間確定的物質的量比值,因此不能用于測試未知組成的復雜混合物、未知或可變組成的物質、復雜的反應產物或生物材料,所以開發基于重量法的新的預測模型很有必要[7]。此外該方法不適用于測試金屬化合物,因為已知金屬化合物與蛋白質反應形成非共價鍵[7]。

DPRA方法是化學反應,不涵蓋代謝系統,對于需要酶促生物活化反應的非親電性致敏原易出現假陰性[7,21]。 Gerberick等[22-23]對該方法進行了改良,即在致敏原與賴氨酸/半胱氨酸肽酶促反應中加入辣根過氧化物酶-過氧化氫(HRP /P),使抗原前體轉變為抗原,從而使該方法也適用于抗原前體物(屬非親電物質)的檢測。該改良法提高了檢測的靈敏度,發展前景較好。

有關研究表明該方法實驗內重現性為85%,實驗室間重現性為80%[24]。 已發表文獻[25]和 驗證結果[26]表明:與LLNA結果比較,DPRA方法鑒別致敏劑與非致敏劑的準確性為80%,靈敏度為80%,特異性為77%;而本研究中DPRA方法對18種已知致敏性化學物進行鑒別,其準確性、靈敏度、特異性均為100%;表明該方法適宜高通量對化學物致敏性進行篩選,可將該方法在國內進一步推廣應用。

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