任子利 高卓然 李瑜鑫
摘要:為分析Ghrelin基因在藏豬與長白豬胃底組織中mRNA的表達差異,運用實時熒光定量PCR技術,對Ghrelin基因在藏豬與長白豬胃底組織中mRNA的表達水平進行相對定量檢測分析。結果顯示,藏豬胃底組織中mRNA的表達量(0.495 8±0.023 1)顯著低于長白豬(0.741 7±0.026 6)。說明Ghrelin基因在藏豬胃底組織中mRNA的低表達可能是藏豬生長緩慢的原因之一,這將為提高藏豬生長速度的進一步研究奠定基礎。
關鍵詞:Ghrelin基因;藏豬;胃底組織;mRNA表達;PCR技術
中圖分類號: Q786文獻標志碼: A
文章編號:1002-1302(2017)15-0046-03
藏豬主要生活在我國青藏高原海拔2 500~4 300 m的農區(qū)和半農半牧區(qū),是中國特有的能適應高海拔地區(qū)的一個重要品種[1-2],有“高原之珍”的美譽[3]。然而,與長白豬的日增質量達731 g相比,藏豬的生長速度比較緩慢,一般18~30月齡體質量才達50~60 kg,日增質量只有171 g,提高藏豬的生長速度已成為藏豬飼養(yǎng)中的一個關鍵問題。饑餓激素(Ghrelin)被稱為胃饑餓素、生長素或生長激素釋放肽,是一種由28個氨基酸組成的多肽,是生長激素促分泌素受體(GHS-R)的一種內源性配體,由日本的Kojima等于1999年從小鼠和人的胃組織中成功分離并鑒定[4]。Ghrelin及其受體在動物體內廣泛分布,具有調節(jié)生長激素分泌、攝食、能量代謝、生殖等多種生物學作用[5-6]。在豬、羊等動物上已證實,動物攝食可以促進動物生長[7-8]。模擬高原的低壓低氧環(huán)境可致大鼠血清Ghrelin水平下降,胃黏膜Ghrelin分泌減少,Ghrelin可能參與模擬低壓低氧環(huán)境中機體消化功能紊亂的調節(jié)[9]。然而,關于藏豬胃底組織中Ghrelin基因的mRNA表達水平是否與長白豬有差異,目前未見相關報道。因此,本研究運用實時熒光定量PCR技術,對Ghrelin基因在藏豬與長白豬胃底組織中mRNA的表達進行相對定量檢測分析,以探討藏豬生長緩慢的可能原因,為提高藏豬生長速度的進一步研究奠定基礎。
1材料與方法
1.1材料
1.1.1樣本采集及處理
選擇生長發(fā)育和營養(yǎng)狀況正常的6月齡藏豬與3月齡長白豬胃底組織樣本各12個(分別取自西藏大學農牧學院實習基地、西藏林芝當?shù)赝涝讏觯雍髮颖狙杆俜湃隦NA樣品保存液中,迅速帶回實驗室進行總RNA的提取或放于-80 ℃冰箱備用。
1.1.2主要試劑與儀器設備
Trizol(碧云天生物技術研究所),Quantscript RT Kit、TransStart Top Green qPCR SuperMix(2×)(天根生物技術有限公司),2xPCRMix(北京百泰克生物技術有限公司)。
PCR儀(德國Eppendorf公司),Boi-Rad凝膠成像系統(tǒng)(美國Bio-Rad公司),CFX96突光定量實時PCR儀(美國Bio-Rad公司),NanoDrop ND-1000紫外分光光度計(美國NanoDrop公司),Eppendorf Centrifuge 5417R、5415R離心機(德國eppendorf公司)。
1.2引物設計與合成
根據(jù)GenBank中已公布的豬Ghrelin基因(目的基因)以及β-actin基因(持家基因)的cDNA序列,利用Primer Premier 5.0軟件設計定量引物,并送交生工生物工程(上海)股份有限公司合成。2個基因的引物信息見表1。
1.3總RNA的提取與鑒定
利用Trizol一步法,按照該試劑說明書,提取各個樣本的總[CM(25]RNA。先用紫外分光光度計測總RNA濃度和純度,再用1%瓊脂糖凝膠電泳確定總RNA的完整性,若RNA的純度和完整性均符合要求,立即進行反轉錄或置于-80 ℃條件下保存?zhèn)溆谩?/p>
1.4反轉錄cDNA
按照Quantscript RT Kit試劑盒說明書提供的方法,將稀釋成同一濃度總RNA的各個樣品反轉成cDNA,接著進行后續(xù)試驗或置于-20 ℃條件下保存?zhèn)溆谩?/p>
1.5基因的PCR擴增
用梯度PCR篩選2對引物的最佳退火溫度后,以cDNA第一鏈為模板,加入引物、dNTP和2xPCRMix等,混勻后進行PCR擴增。反應體系包括反轉錄產物(cDNA)1 μL、2xPCRMix 10 μL,引物(10 μmol/L)各0.4 μL、ddH2O 8.2 μL,總體積20 μL。PCR擴增反應參數(shù)為:95 ℃預變性 5 min;95 ℃變性20 s,58 ℃退火20 s,72 ℃延伸30 s,36個循環(huán);72 ℃延伸 5 min,4 ℃結束。1%瓊脂糖凝膠電泳檢測擴增產物。
1.6熒光定量PCR
目的基因及持家基因的熒光定量PCR的反應程序為:95 ℃ 15 min;95 ℃ 10 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 30 s,40個循環(huán);95 ℃ 10 s,65~95 ℃每增加0.5 ℃讀取熒光1次,繪制溶解曲線。熒光定量PCR反應采用20 μL反應體系:2X SYBR PCR Buffer 10 μL,cDNA 1 μL,引物(10 μmol/L)各0.4 μL,ddH2O 8.2 μL。目的基因的相對表達量用2-ΔΔCT法計算。
1.7數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析
所得試驗數(shù)據(jù)用SPSS17.0軟件進行單因素方差分析,試驗結果用“平均數(shù)±標準差”表示,P<0.05為差異顯著;用Sigmia Plot軟件作柱狀圖。
2結果與分析
2.1總RNA的檢測結果endprint
經紫外分光光度儀測定,各個樣本總RNA的純度(D260 nm/D230 nm)均為2.06~2.15,[JP2]瓊脂糖凝膠電泳結果如圖1所示,可見28S、18S、5S等3條條帶。這說明所提取的總RNA純度和完整性均符合反轉錄的要求,可以進行反轉錄試驗。
2.2基因的PCR擴增檢測結果
由圖2可以看出,目的基因與持家基因條帶均在恰當位置,后經測序證實這2條條帶即為目的基因與持家基因。
2.3實時熒光定量PCR檢測結果
藏豬、長白豬胃底組織目的基因Ghrelin及持家基因 β-actin cDNA擴增曲線、熔解峰如圖3所示,熔解曲線為單一的峰,說明沒有非特異擴增。
[FK(W13][TPRZL3.tif;S+2mm]
Ghrelin相對表達量如圖4所示,藏豬胃底組織中mRNA的表達量(0.495 8±0.023 1)顯著低于長白豬(0.741 7±0.026 6)。可見,Ghrelin基因在藏豬胃底組織中mRNA的低表達可能是藏豬生長緩慢的原因之一,這將為提高藏豬生長速度的進一步研究奠定基礎。
3結論與討論
Du等的研究結果表明,在仔豬斷奶后,其胃底Ghrelin mRNA表達量上調10 d[10]。在體外,半胱胺能顯著增加胃黏膜細胞Ghrelin mRNA的表達[11]。Yang等的研究表明,高銅日糧可以通過增強生長豬Ghrelin mRNA的表達水平、生長激素(growth hormone)的分泌來提高采食量、促進體質量的增加[12];Yin等也有類似的結果,認為仔豬日糧中添加ZnO能刺激其胃中Ghrelin的分泌[13]。而禁食24、48 h均能顯著降低大鼠下丘腦中Ghrelin mRNA的表達水平[14]。在禁食72 h后,斷奶仔豬下丘腦、垂體、胃中Ghrelin mRNA的表達水平均
較低[15]。在豬、羊等動物上已證實,動物攝食可以促進動物生長[7-8],本研究結果與之基本一致,即Ghrelin基因在藏豬胃底組織中mRNA的表達顯著低于長白豬,這可能是藏豬生長緩慢的原因之一。然而李加龍卻得出相反的研究結果,在牦牛皺胃中,Ghrelin陽性細胞分布于黏膜層胃底腺的下部,而瘤胃、網胃和瓣胃上未見其表達,牦牛Ghrelin陽性產物的表達面積(S)和累計光密度值(IOD)均大于黃牛且差異極顯著(P<0.01),他認為牦牛胃中的Ghrelin可能以內源性為主,且與外源性相結合共同參與了食欲、攝食行為及能量代謝與平衡等生理功能的調節(jié)[16]。這可能與物種等不同有關,若究其原因,尚需進一步研究。
總之,Ghrelin具有調節(jié)生長激素分泌、攝食等多種生物學作用,而動物攝食可以促進動物生長。藏豬胃底組織中Ghrelin mRNA的表達量顯著低于長白豬,即該基因在藏豬胃底組織中mRNA的低表達可能是藏豬生長緩慢的原因之一,這將為提高藏豬生長速度的進一步研究奠定基礎。
參考文獻:
[1]強巴央宗. 藏豬飼養(yǎng)實用技術[M]. 北京:中國農業(yè)出版社,2011.
[2]強巴央宗,謝莊,田發(fā)益. 高原藏豬現(xiàn)狀與保種策略[J]. 中國畜牧雜志,2001,37(6):46-47.
[3]任子利,趙彥玲,王建洲,等. 維生素C對藏豬精液4 ℃保存及其精子全基因組DNA甲基化的影響[J]. 畜牧獸醫(yī)學報,2016,47(5):1057-1061.
[4]Kojima M, Hosoda H, Date Y,et al. Ghrelin is a growth-hormone-releasing acylated peptide from stomach[J]. Nature,1999,402(6762):656-660.
[5]Sun Y,Butte N F,Garcia J M,et al. Characterization of adult ghrelin and ghrelin receptor knockout mice under positive and negative energy balance[J]. Endocrinology,2008,149(2):843-850.
[6]張文龍,邢福姍,王韋華. Ghrelin對莎能奶山羊垂體催乳素和生長激素mRNA表達的影響[J]. 中國獸醫(yī)學報,2009,29(8):1081-1084.
[7]Hayashida T,Murakami K,Mogi K,et al. Ghrelin in domestic animals:distribution in stomach and its possible role[J]. Domestic Animal Endocrinology,2001,21(1):17-24.
[8]Murray C D,le Roux C W,Gouveia C,et al. The effect of different macronutrient infusions on appetite,ghrelin and peptide YY in parenterally fed patients[J]. Clinical Nutrition,2006,25(4):626-633.
[9]孫正啟,廉會娟,趙潔,等. 模擬高原低壓低氧對大鼠血清和胃黏膜Ghrelin表達的影響[J]. 世界華人消化雜志,2011,19(16):1726-1730.[HJ1.82mm]
[10]Du G M,Shi Z M,Wei X H,et al. Expression of gastric ghrelin and H+-K+-ATPase mRNA in weanling piglets and effect of ghrelin on H+-K+-ATPase expression and activity in gastric mucosal cells in vitro[J]. Research in Veterinary Science,2007,82(1):99-104.endprint
[11]Du G,Shi Z,Xia D,et al. Cysteamine improves growth performance and gastric ghrelin expression in preweaning piglets[J]. Domestic Animal Endocrinology,2012,42(4):203-209.
[12]Yang W Y,Wang J G,Zhu X Y,et al. High lever dietary copper promote ghrelin gene expression in the fundic gland of growing pigs[J]. Biological Trace Element Research,2012,150(1/2/3):154-157.
[13]Yin J D,Li X L,Li D F,et al. Dietary supplementation with zinc oxide stimulates ghrelin secretion from the stomach of young pigs[J]. Journal of Nutritional Biochemistry,2009,20(10):783-790.
[14]Sato T,F(xiàn)ukue Y,Teranishi H,et al. Molecular forms of hypothalamic ghrelin and its regulation by fasting and 2-deoxy-d-glucose administration[J]. Endocrinology,2005,146(6):2510-2516.
[15]Salfen B E,Carroll J A,Keisler D H. Endocrine responses to short-term feed deprivation in weanling pigs[J]. Journal of Endocrinology,2003,178(3):541-551.
[16]李加龍. 牦牛Ghrelin基因的克隆及其在“下丘腦—垂體—胃”軸上的表達機理[D]. 蘭州:蘭州大學,2012.endprint