王 楠,高 靜,張歲岐,王根軒
(1.陜西中醫藥大學陜西省中藥資源產業化協同創新中心, 陜西 咸陽 712083; 2.陜西中醫藥大學藥學院, 陜西 咸陽 712046; 3.西北農林科技大學水土保持研究所, 陜西 楊凌 712100; 4.浙江大學生命科學學院, 浙江 杭州 310058)
水資源緊缺是我國經濟和社會發展的重要制約因素,未來全球干旱事件的頻率和影響面積會持續增加。我國水資源分布時空不均,農業用水量大、浪費嚴重且效率低下,加劇了水資源短缺。如何提高水資源利用效率對農業經濟發展具有重要意義。植物通過根部吸收的水分約有90%由氣孔蒸騰作用散失到大氣中,因此,通過生物技術降低蒸騰作用散失的水分,提高農作物水分利用效率是可持續農業的戰略措施之一,也是發展節水農業的重要方向。
氣孔不僅是植物進行蒸騰作用的重要器官,也是阻擋病原微生物入侵的第一道門戶,在植物免疫應答中起到不可替代的作用[1-2]。氣孔的開閉與許多因素有關,例如:外界溫度、CO2濃度、空氣濕度、光照強度、植物激素和Ca2+等各類信號物質[1,3-4]。很多糖類信號(如幾丁質、殼聚糖、脂多糖等)都是已知的能引起氣孔關閉的物質[3,5]。海藻糖是廣泛存在于植物、細菌、真菌和無脊椎動物體內的一種多糖[6],因其獨特的理化特性,越來越受到科學家的關注,在食品工業、醫藥行業、化妝品及農業上已經成為開發的熱點。Dittrich和Mayer[7]很早就發現海藻糖能明顯抑制氣孔關閉,然而海藻糖誘發氣孔免疫機理方面的研究仍然滯后。本文通過綜述海藻糖在植物抗逆性中的作用,旨在為生物節水農業提供新的技術選擇。
生物節水是通過調控作物水分生理,充分挖掘作物自身用水潛力,以作物高效用水為目標而開發出的一種農業節水新技術[8]。由于農作物種類不同,其抗旱節水機制也不同。植物適應干旱的機制分為3類:避旱(drought escape)、御旱(drought avoidance)和耐旱(drought tolerance)。其中,避旱是指植物能夠在嚴重的干旱來臨之前完成全部的生活史周期[9];御旱主要是通過形態結構的調整來增加根系吸水面積、調節氣孔運動來維持體內組織的水分;耐旱的主要機制是通過脫落酸等植物激素和脯氨酸等滲透調節物質對水通道蛋白、氣孔開閉等進行調控,提高植物忍耐干旱造成的暫時性傷害的能力[10]。在高等植物的御旱和耐旱機制中,其葉片保衛細胞能對外界環境迅速響應,通過信號物質傳導調節氣孔運動,使氣孔關閉,降低蒸騰失水。由此可見,合理調節氣孔開閉就能使作物在缺水條件下保持較高的產量。
生物節水技術的一個重要方向就是通過基因工程研發抗旱新品種。通過基因的轉移和重組,對農作物一系列與抗旱相關的基因進行調控,開發高效節水抗旱的優質農作物新品種。與氣孔發育和運動有關的基因是生物基因工程研發抗旱品種的研究方向之一。擬南芥中的ERECTA基因能影響葉片氣孔密度和葉片結構,進而調控植株的蒸騰效率,在改良作物的抗旱性及水分利用效率方面具有良好應用前景[10]。將氣孔特異性啟動子-KST1轉入煙草體內,可以增加煙草脫落酸的含量,提高其抗旱性[11]。高表達miR396的轉基因煙草氣孔密度和氣孔指數比野生型低,提高了其水分利用效率[12]。通過調控ZmSDD1基因從而減少氣孔密度,降低了由蒸騰作用導致的水分散失,提高了擬南芥的水分利用效率[13]。
其次,通過施加外源有益物質和植物激素協助植物抵御水分脅迫的相關理論和技術也在近些年實現再一次突破。硫脲作為一種含巰基的生物活性物質能顯著提高植物的水分利用效率[14]。硅元素能在作物遭受到水分和營養脅迫時保持植株進行正常的水分生理過程而鉀離子則能調控電解質滲出,改變分解代謝過程,輔助遭受水分脅迫時植株的自我適應和自我修復[15-16]。水楊酸和赤霉素等激素則能通過調控氣孔運動、營養吸收、葉綠素與蛋白合成、阻止乙烯生成及促進一些與生長發育相關的生理過程來幫助植物抵御水分脅迫[17]。
此外,還可將作物水分生理調控機制與作物高效用水技術緊密結合,利用作物不同時期需水量不同開發出諸如調虧灌溉、分根區交替灌溉等作物生理節水技術,可明顯地提高作物水分利用效率。其中,分根區交替灌溉是利用作物在一定生育階段,適當的水分虧缺可以提高水分利用效率和產量的原理,控制部分根系區域濕潤,而其余根區進行干旱脅迫,使不同區域的根系交替經受一定程度的水分脅迫鍛煉,刺激根系產生脫落酸等根源信號向上傳輸至葉片,調節氣孔開度,在不犧牲光合產物積累的前提下,減少蒸騰失水[18-19]。由此可見,氣孔在農業灌溉技術中發揮著重要調節作用,調節作物氣孔形態和運動是農業節水的重要手段。
早在1832年,Wiggers就從一種黑麥的麥角菌中發現了海藻糖,而到了1858年,Berthelot從昆蟲幼體中分離出一種二糖,并把它叫做“trehala manna”,隨后命名為海藻糖(trehalose)[20]。Koch在1925年從酵母的提取物中得到一種玻璃樣的物質,后來證明也是海藻糖[6,21]。海藻糖又稱酵母糖,是一種由兩個葡萄糖分子以α,α,1,1-糖苷鍵構成的非還原性二糖,分子式為C12H22O11,分子量378.3,它甜度低、耐熱、耐酸、不褐變以及具有較高的玻璃化相變溫度[21],廣泛存在于植物、細菌、真菌和無脊椎動物體內,特別是在酵母、霉菌等真菌中含量較多[6]。海藻糖的物理化學性質使其成為一種特殊的糖,其結構非常穩定,只被特定的海藻糖酶所分解[21]。由于海藻糖是非還原性糖,所以它不能與Fehling’s和Benedict’s試劑發生反應,也不能引起食物褐色反應,使得海藻糖在工業上的應用尤其廣泛[21]。
海藻糖在植物體內的合成需要兩步完成。首先是海藻糖-6-磷酸合成酶(TPS)將UDP-葡萄糖和6-磷酸葡萄糖催化合成6-磷酸海藻糖(T6P)。其次是T6P-磷酸酯酶(TPP)將T6P轉化為海藻糖和磷酸[22]。海藻糖能被海藻糖酶裂解為葡萄糖[21]。在大多數植物的提取物中海藻糖和T6P的含量很低,幾乎接近可檢測的極限,且T6P只能在亞細胞水平運輸,因此限制了對它們功能的研究[23]。
海藻糖已經成為國際上開發的主要低聚糖之一,它能有效地保護細胞膜和蛋白質的結構,使生物體在脫水、干旱、高溫、冷凍、高滲透勢以及有毒試劑等逆境脅迫下,保持正常的生命活動。新的研究表明,外源性的海藻糖具有良好的非特異性保護作用,有人把海藻糖稱為“生命之糖”[24]。通過將微生物海藻糖生物合成基因轉入煙草、水稻、西紅柿、馬鈴薯和擬南芥等植物體內,發現海藻糖是一種滲透保護劑和細胞膜及蛋白質保護劑[25]。但是,在這些轉基因植物中,隨著耐受水平的增加,海藻糖在其體內的水平仍然很低,兩者相關性不大,表明海藻糖除了直接保護植物以外可能還發揮了其它作用。
海藻糖對生物及一些大分子物質具有非特異性的良好保護作用。(1) 保護酶活性:海藻糖可以穩定蛋白質(酶)的結構和功能,使其保持活性。海藻糖可被用來存儲耐熱的酶,例如脫氧核糖核酸聚合酶、限制性內切酶和DNA連接酶等[21,26]。(2) 穩定和保護復雜的分子:在海藻糖存在的情況下,對保存條件要求苛刻的病毒類疫苗、抗體可在室溫或37℃下保持其活性儲存幾個月之久[27]。(3) 作為細胞、組織和器官的保護劑:無論是在干燥或冷凍條件下,海藻糖都能用于保護植物細胞、血細胞、肝臟細胞、胰島細胞、小鼠胚胎組織和器官的活性[21,27-28]。在胰島細胞冷凍過程中加入二甲基亞砜(DMSO)和海藻糖,使得成熟胰島細胞的恢復率達到92%,比單獨使用DMSO高出34%,且功能與提取的新鮮胰島細胞無差別[28]。(4) 植物和食物保鮮劑:海藻糖能避免切割后的郁金香和唐菖蒲過度蒸發,增加鮮花的保鮮期[21]。由于海藻糖對植物細胞良好的保護作用,海藻糖處理后的脫水蔬菜和干燥水果仍可保留原有的風味[26]。除此之外,海藻糖還被廣泛用于農業植物育種、飼料添加劑和化妝品添加劑等[29]。
目前,有三種觀點可以解釋海藻糖如何起到保護作用:水替代,玻璃態形成和化學穩定性。這些機制并不是相互獨立的,可能協同作用于海藻糖的保護作用。水替代理論認為所有的生物大分子周圍通常與水形成氫鍵(水化層)而較穩定,海藻糖在脫水或冷凍過程中會取代水分子中的水化層以保護生物結構。這種機制有助于穩定生物分子并抑制其不可逆的變性[21]。玻璃態理論認為,海藻糖中連接兩個D-葡萄糖殘基的糖苷鍵與其它二糖相比有很大的靈活性。這個屬性可以讓海藻糖與其它不同大分子的不規則極性基團相互作用[28]。在脫水的情況下,細胞內積累的非還原性糖類和高親水的蛋白分子會形成一種玻璃態,從而固定細胞膜及大分子物質免受損傷[30]。化學穩定性假說認為,海藻糖是唯一可以形成無定形、不吸濕的結晶,并在高溫下依然穩定的糖類。在極端的溫度下與其它糖類相比,這個特性使得海藻糖能形成玻璃態的時間更長。該生物分子可以在玻璃態保持數月甚至數年,使它們能夠在復水后恢復到它們的原始結構[21]。
海藻糖與植物抗逆性密切相關,當擬南芥遇到非生物脅迫時,與海藻糖合成相關的基因其轉錄物水平會顯著增加,這種變化尤其是在寒冷、滲透壓和鹽脅迫下更加明顯[31]。Fougere等[32]發現在鹽脅迫下,雖然苜蓿的根和類菌體中海藻糖的含量顯著上升,但是對于海藻糖能夠發揮滲透保護劑作用的濃度而言,這個劑量水平偏低。這說明海藻糖可能通過其它方式改善了植物在鹽脅迫下的生長發育。Garcia等[33]發現鹽脅迫3d后海藻糖在水稻根部有少量增加。雖然鹽脅迫能阻礙植物的正常生長發育,但是外源實施低劑量的海藻糖(1~10 mM)能減少Na+的積累和緩解其對生長的抑制作用。有實驗證明較高濃度的海藻糖能防止葉綠素的流失,維持根部功能完整性,抑制鹽脅迫導致的不正常細胞分裂[25]。低濃度的海藻糖(2 g·L-1)就能緩解鹽脅迫對種子萌發造成的傷害,提高鹽脅迫下種子的發芽率和發芽勢,施加一定的外源海藻糖可以提高鹽脅迫下幼苗的鮮重,促進其生長,使幼苗更加適應鹽脅迫的環境[34]。徐婷等[35]以薄皮甜瓜為研究對象證明了在鹽脅迫下葉面噴施0.4%濃度的海藻糖可顯著降低其超氧根陰離子的產生速率,增加超氧化物歧化酶和過氧化物酶的活性,說明海藻糖可以減輕活性氧對細胞膜系統的傷害,有效緩解鹽脅迫對甜瓜的傷害。海藻糖可能是通過保護離子泵協助植物抵御鹽脅迫,然而,海藻糖并沒有阻止鹽在植物細胞中的積累,因此,海藻糖作為一種激發子其保護特性可能主要作用于保持脂雙層結構的完整性和酶活性[36]。閆道良和鄭炳松[37]發現施用2 mmol·L-1的海藻糖溶液可顯著提高鹽脅迫下楊麥19的脯氨酸含量,增強對鉀離子的吸收,以便快速適應脅迫環境。此外,對于豆科植物而言,外源施加的海藻糖不但能促進植株本身的抗鹽能力,而且還能提高共生固氮菌的抗鹽能力[38],而施加柚苷配基(naringenin,4 μM)能促進叢植菌根在根瘤結節中大量合成海藻糖從而抵御鹽脅迫[39]。
當植物缺水時,大量海藻糖累積在組織中能通過保護細胞膜而協助其抵御干旱[40],例如在干旱條件下水稻中海藻糖的含量是正常生長條件下的兩倍[41]。高等植物體中已證明海藻糖代謝的存在,在一些復蘇植物如卷柏、密羅木中就發現含有高濃度的海藻糖[42]。但在絕大多數維管植物中其含量相當低,所以可以利用外源的海藻糖來改善植物在逆境條件下的生長發育[43]。Alam等[44]發現海藻糖能通過增加還原型谷胱甘肽的含量,提高抗壞血酸過氧化物酶、谷胱甘肽還原酶、過氧化氫酶的活性改善蕓薹屬植物在干旱逆境下的生長發育。經過海藻糖處理的綠豆幼苗,在干燥和冷凍條件下,其質膜上的Mg2+、K+-ATPase活性顯著提高[45]。Ilhan等[42]發現干旱脅迫提高了刺山柑中海藻糖的含量以及海藻糖合成途徑中的組分TPS、TPP的酶活性和基因表達量,這種海藻糖酶活性和基因表達量提高的現象進一步在煙草干旱脅迫實驗上得到證實[46]。在干旱脅迫下,根瘤中大量積累海藻糖的大豆,其葉片相對含水量較高且耐旱性也強[47],而惡臭假單胞菌KT2440則能在番茄和辣椒根際大量表達ostAB基因用于海藻糖的生物合成從而幫助植株抵御干旱脅迫[48]。荷蘭植物生物技術公司研究人員將大腸桿菌的海藻糖合成酶基因導入甜菜、馬鈴薯中,他們在獲得大量海藻糖的同時,也增強了其抗旱性和耐寒性[26]。而含有海藻糖合成酶的轉基因甘蔗在干旱復水后恢復的比非轉基因植株好[49]。近期也有研究發現經過海藻糖預浸種處理的蘿卜,其通過提高葉綠素a含量、光合速率、水分利用效率、可溶性糖含量、脯氨酸含量和超氧化物歧化酶的活性來抵御干旱脅迫[50]。
海藻糖除了應用于抵抗鹽脅迫和干旱脅迫外,也被應用于植物抵御其它逆境脅迫[25],例如低溫寒害[51]。利用0.1%的海藻糖溶液浸泡水稻種子后進行低溫處理,水稻幼苗的細胞電解質滲出率顯著降低,淀粉酶的活性及幼苗可溶性糖含量明顯提高,對寒害的修復能力也得到提高,而且處理溫度越低,海藻糖的相對效應就越明顯[52]。謝冬微等[53]在低溫脅迫下將小麥用海藻糖處理后,可以降低丙二醛含量,提高脯氨酸和可溶性糖含量,提高冬小麥的抗寒性。海藻糖可以改善種子組分構成,提高其抗氧化的能力[40]。AtTPS5與轉錄輔激活物MBF1c互作則能提高擬南芥的耐熱性[54]。海藻糖除了能在生理過程上起到抵御非生物脅迫的作用,也能在形態調控上幫助植物度過脅迫時期。西紅柿導入酵母TPS1基因后,能通過增加葉片厚度、強化分支、促進根部生長來抵御逆境[55]。綜上所述,海藻糖是植物體中重要的抗逆物質,是開發植物抗逆生長調節劑的良好選擇。
近年來,海藻糖的工業生產技術及其應用研究頗為活躍,其相關酶的生物工程研究也較多。對昆蟲和真菌而言,海藻糖相關酶對其生命過程具有重要的影響[56],通過抑制海藻糖相關酶的活性,就能達到殺死害蟲和防治病害的目的。
除了直接殺死害蟲外,外源實施海藻糖也能調節植物自身對生物脅迫的響應。比如,外源噴施海藻糖后可以誘導小麥對白粉病的抗性。海藻糖并沒有直接影響病原真菌的生長,而是誘導植物產生一些特殊反應來有效地抑制真菌的侵入和生長[57]。海藻糖噴施于小麥葉片雖然能有效抑制白粉病的侵染,但是海藻糖并沒有抑制病原真菌分生孢子的萌發和附著胞的分化,這表明海藻糖對植物的保護作用是誘導了其防御反應[57-58]。海藻糖可以誘發幾丁質酶(chi,chi1和chi4前體)和脂肪氧化酶(lox)的基因表達來抵御白粉病[57]。Singh等[58]表明TPS11基因通過PAD4(phytoalexin-deficient4)基因的表達介導了擬南芥抵御綠桃蚜。與對照相比,在TPS11缺失的突變體中海藻糖的含量沒有增加且植株也沒有針對綠桃蚜的抗性。外源實施海藻糖后,植株重新恢復對綠桃蚜的抗性,而且海藻糖超積累突變體對綠桃蚜的抗性更高,這表明海藻糖在植物防御系統中是個重要的信號物質[58]。Hofmann等[59]通過代謝分析和基因靶向表達分析,證明海藻糖的積累可以幫助擬南芥抵御線蟲感染。擬南芥TPS11基因的表達在感染煙草花葉病毒后增加[60],說明海藻糖參與了抗性過程。盡管海藻糖在植物抵御病蟲害過程中發揮了重要作用,但是海藻糖介導的生物應激反應還沒有被充分認識,目前蛋白質組學分析證明在這些應激反應中海藻糖可以誘導一些關鍵組分的表達,如在海藻糖處理后的幼苗能誘導AIG2,EDS1,EDS5,PAD4,WAK1和WAK2的表達[61]。研究者同時認為在植物中海藻糖的積累量不足以發揮其保護劑的作用。相反,海藻糖和T6P在營養和逆境代謝中發揮著重要的信號轉導作用[61]。糖類信號有助于植物對病原菌的免疫反應,并且可能作為啟動子介導了病原相關分子模式(PAMP)和效應子誘發的免疫[57]。
植物的葉面作為一個獨立的微環境域,常常被真菌、細菌、酵母菌等微生物棲息,人們把微生物群落附著的葉面微環境域稱作“葉際”,生存在其上并可以定居和繁殖的微生物群體為“葉際微生物”[62]。葉際微生物可以通過植物表面的孔口進入植物體內,如排水器、蜜腺、皮孔和氣孔等。氣孔是在植物表面控制光合作用氣體交換和蒸騰作用水分散失的重要通道,它在葉面上分布廣泛,也是微生物入侵植物的一條重要途徑。研究表明氣孔并不是被動的作為微生物進入植物體內的通道,當植物感應到葉際微生物的存在時,氣孔發生主動關閉的現象稱為氣孔免疫[1]。真菌的激發子半乳糖醛酸、幾丁質和殼聚糖都是已知的能引起氣孔關閉的物質。因此,氣孔在植物固有免疫反應中發揮著重要的作用[3]。
保衛細胞能整合環境和內源信號從而調節氣孔運動。跨膜離子的流動(K+、Cl-和蘋果酸鹽等)、細胞骨架的再組織、中間代謝物的產生、蛋白質翻譯后修飾以及基因表達的調節都能決定氣孔開度[2,63]。大量的實驗證明許多植物激素也參與氣孔開度的調節,如脫落酸(abscisic acid,ABA)、植物生長素(auxin,IAA)、乙烯(ethylene,ET)、細胞分裂素(cytokinin,CTK)、茉莉酸(jasmonic acid,JA)、水楊酸(salicylic acid,SA)、茉莉酮酸酯(jasmonate)、油菜素內酯(brassinosteroid)等[64]。其中ABA信號傳導途徑是研究最多的,最近幾年也取得了很大的進展。在生物或非生物脅迫下,植物均可以通過ABA促使氣孔關閉,抑制氣孔開張來減少植物的水分蒸騰散失或抵御病原菌入侵,這一過程包括許多細胞生化反應:G蛋白和S型陰離子通道(SLAC1)的活化、活性氧(reactive oxygen species,ROS)、一氧化氮(nitric oxide,NO)和過氧化氫(hydrogen peroxide,H2O2)的產生、細胞質pH的升高、細胞內Ca2+的振蕩、蛋白質的磷酸化和去磷酸化以及細胞骨架的再組織[65,66]。其它的植物激素SA、Jasmonate和Brassinosteroid也已經被證實能促使氣孔關閉,ABA和SA相互作用使氣孔關閉可以使植物抵御微生物入侵,基因分析顯示ABA和Jasmonate在調節氣孔開張的信號傳導途徑上有相似性[64]。
除植物激素外,ROS類物質如H2O2、NO及Ca2+也都參與氣孔運動的信號調節。ROS的功能是作為ABA的第二信使。H2O2可以作用于K+通道、Ca2+通道以及MAPK信號通路等介導ABA誘導的氣孔關閉[67]。H2O2能誘導保衛細胞內NO的生成,且Ca2+也參與其中。黑暗和UV-B誘導的氣孔關閉中NO的生成都要依賴于H2O2[68]。NO誘導的氣孔關閉需要MAPKs,cGMP和Ca2+。NO通過MAPKs激活抗氧化基因和酶活性。MAPKs在ABA誘導的氣孔關閉中是NO和H2O2信號的一個收斂點[5]。細胞質Ca2+作為信號物質在ABA誘導的氣孔關閉中同樣發揮了重要作用[69]。實驗證明Ca2+和H2O2是相互依存的。H2O2能調節Ca2+流動,Ca2+參與H2O2的代謝[67]。在ABA誘導的氣孔關閉中,H2O2能增加細胞質Ca2+從而促使氣孔關閉[70]。而H2O2合成酶要靠Ca2+激活。Ca2+還能通過蛋白激酶調節水通道蛋白的功能,進而調節氣孔運動[71]。
糖類之前僅僅被認為是一種基本的代謝物質,但隨著研究的深入,人們發現糖類也是一種重要的信號分子。它在植物受到生物和非生物逆境脅迫時起到重要的作用。糖類能激發一系列信號傳導反應,使細胞做出響應。如前所述,表達海藻糖合成基因的轉基因植物體內含有高水平的海藻糖,并且它們抵御脅迫的能力也因此提高[72]。在高等植物中海藻糖或者海藻糖代謝衍生物都是植物基因表達的重要調節者,但是海藻糖增強植物抗性的機理還不是很清楚,有研究推測氣孔作為一個重要因素發揮了作用,如海藻糖可以改變氣孔發育,將TPS1基因轉入玉米體內,TPS1基因通過增加SDD1(stomatadensityanddistribution1)基因表達使玉米氣孔密度下降,進而玉米抗旱性增加[73]。除了對植物氣孔形態方面的調節外,海藻糖也能調節氣孔運動。Gao等[74]研究表明ROS參與了海藻糖誘導的氣孔關閉。Schluepmann等[31]發現海藻糖能通過ABA調節氣孔。而且,海藻糖誘導的基因與JA/ET依賴的信號轉導途徑有關,被外源海藻糖處理后轉錄物水平的表達與ET、茉莉酸甲酯信號通路有關[23]。在逆境條件下JA、ET和ROS之間有著復雜的聯系[64]。與ABA一樣,JA和ET也參與了對氣孔運動的調節。JA在干旱條件下能促進氣孔關閉[75]。用JA前體12-OPDA處理擬南芥會誘導氣孔關閉。提高12-OPDA的濃度會增強擬南芥的抗旱性[76-77]。依賴ABA和不依賴ABA的信號途徑都對JA有響應[76]。與JA不同的是,ET調節氣孔開度方面會因環境和植物物種的不同體現出雙重作用[64]。一方面,ET抑制ABA誘導的氣孔關閉。另一方面,ET會通過促進NADPH氧化酶介導產生的ROS促進氣孔關閉[78]。ROS是ABA誘導的氣孔關閉中的第二信使,ROS同樣也能影響氣孔開度[70]。因此,海藻糖誘發氣孔關閉的信號傳導途徑與ABA、JA、ET的信號途徑有聯系,Ca2+、NO等信號物質也參與其中[74]。
利用海藻糖可以調節氣孔運動的特性,有效誘導氣孔關閉,對增強植物抗逆性,減少蒸騰水分散失,提高農作物水分利用效率有重要意義。氣候變化對生態環境和社會經濟的負面影響日漸凸現,迫切需要采取應對措施,減少溫室氣體排放。CH4是僅次于CO2的重要溫室氣體,中國水稻種植面積占世界水稻總面積的22%,稻田CH4排放是全球大氣CH4重要排放源[79]。中國科學院南京土壤研究所的蔡祖聰等[80]通過分析大量實地觀測數據,發現冬季土壤水分是控制稻田水稻生長期CH4排放量最為關鍵的因素,冬季淹水稻田(冬灌田)水稻生長季CH4排放量要遠高于當地冬季排水稻田。因此,淹水灌溉易造成水稻根系的厭氧發酵,產生較多的CH4。因此,有效控制氣孔的過度蒸騰作用,是避免溫室氣體過度排放的重要方法。用海藻糖作為節水劑,可以減少稻田的淹水灌溉,從而減少CH4的排放。另外,在遇到旱情時,也可以通過調節氣孔開閉來提高水分利用效率,達到節水減排的效果。
在過去半個世紀中,人們已經研發了多種通過改變植物葉片氣孔運動進而減少蒸騰作用的抗蒸騰劑。這些抗蒸騰劑已經大量應用于生產實踐,但同時也暴露出了一系列問題,如毒性過大,對環境污染嚴重,造價昂貴,水溶性差,黏附力低,影響光合作用等。因此,迫切需要研制生態安全,造價低廉,適用性廣和效果明顯的新型抗蒸騰劑。未來可以利用氣孔免疫原理研發出相關抗蒸騰劑,其在理論上利用細菌、真菌、酵母中所含有的激發子物質,完全可以開發出生物氣孔調控劑,達到節水增產的目的。基于這個研究思路,可以用海藻糖為原料,制作安全環保的抗蒸騰節水劑。對于啤酒產生過程中出現的廢酵母,很多啤酒廠會將其烘干,然后加工為各種牲畜、魚類的飼料。這種產品不僅浪費資源,而且附加值非常低。將酵母中的海藻糖加以利用,生產高附加值的抗蒸騰節水劑制品,對于發展節水農業,提高農林和生態環境建設中植物水分利用效率,增加生物固碳,實現人類可持續發展具有重要的意義。
盡管對生物節水農業的研究已有很多,但是其調控技術不夠完善。海藻糖是國際上開發研究的熱點糖類之一,其在植物體內含量并不高,卻能在調控基因表達、調節植物生理變化、提高植物抗逆性上發揮重要作用,它在氣孔運動調節中的作用也日益受到重視,如果將海藻糖與氣孔運動相互聯系,將其在農作物栽培和育種上進行更細致的研究,達到既能有效節水又能抗蟲防病,對節水農業、全球變暖等問題具有重要科學意義。
參考文獻:
[1] Melotto M, Underwood W, Koczan J, et al. Plant stomata function in innate immunity against bacterial invasion[J]. Cell, 2006,126(5):969-980.
[2] 劉 婧,王寶山,謝先芝.植物氣孔發育及其調控研究[J].遺傳,2011,33(2):131-137.
[3] Lee S, Choi H, Suh S, et al. Oligogalacturonic acid and chitosan reduce stomatal aperture by inducing the evolution of reactive oxygen species from guard cells of tomato andCommelinacommunis[J]. Plant Physiology, 1999,121(1):147-152.
[4] 高春娟,夏曉劍,師 愷,等.植物氣孔對全球環境變化的響應及其調控防御機制[J].植物生理學報,2012,48(1):19-28.
[5] Desikan R, Cheung M-K, Clarke A, et al. Hydrogen peroxide is a common signal for darkness-and ABA-induced stomatal closure inPisumsativum[J]. Functional Plant Biology, 2004,31(9):913-920.
[6] Elbein A D, Pan Y, Pastuszak I, et al. New insights on trehalose: a multifunctional molecule[J]. Glycobiology, 2003,13(4):17R-27R.
[7] Dittrich P, Mayer M. Inhibition of stomatal opening during uptake of carbohydrates by guard cells in isolated epidermal tissues[J]. Planta, 1978,139(2):167-170.
[8] 山 侖,鄧西平,張歲岐.生物節水研究現狀及展望[J].中國科學基金,2006,2(2):66-70.
[9] Turner N C. Adaptation to water deficits: a changing perspective[J]. Functional Plant Biology, 1986,13(1):175-190.
[10] 陳兆波.生物節水研究進展及發展方向[J].中國農業科學,2007,40(7):1456-1462.
[11] 徐春英.應用氣孔特異性啟動子-KST1改良植物抗旱性的初步探討[D].北京:中國農業大學,2004.
[12] 楊鳳璽,余迪求.高表達擬南芥miR396提高煙草抗旱性[J].云南植物研究,2009,31(5):421-426.
[13] 劉延波,項 陽,秦利軍,等.轉玉米ZmSDDI基因煙草降低氣孔密度提高抗旱性[J].植物生理學報,2014,50(12):1889-1898.
[14] Bhunia S, Verma I, Sahu M, et al. Effect of drip irrigation and bioregulators on yield, economics and water use of fenugreek (Trigonellafoenum-graecum)[J]. Journal of Spices and Aromatic Crops, 2015,24(2):102-105.
[15] Chen D, Cao B, Wang S, et al. Silicon moderated the K deficiency by improving the plant-water status in sorghum[J]. Scientific Reports, 2016,6:22882.
[16] Demidchik V, Straltsova D, Medvedev S S, et al. Stress-induced electrolyte leakage: the role of K+-permeable channels and involvement in programmed cell death and metabolic adjustment[J]. Journal of Experimental Botany, 2014,65(5):1259-1270.
[17] Wakchaure G, Minhas P, Ratnakumar P, et al. Optimising supplemental irrigation for wheat (TriticumaestivumL.) and the impact of plant bio-regulators in a semi-arid region of Deccan Plateau in India[J]. Agricultural Water Management, 2016,172:9-17.
[18] 山 侖,張歲岐.節水農業及其生物學基礎[J].水土保持研究,1999,6(1):2-6.
[19] 袁永慧,鄧西平,黃明麗,等.生物節水中的補償效應與根系調控研究[J].中國農業科技導報,2003,5(6):24-28.
[20] Singer M A, Lindquist S. Thermotolerance in Saccharomyces cerevisiae: the Yin and Yang of trehalose[J]. Trends in Biotechnology, 1998,16(11):460-468.
[21] Iturriaga G, Suárez R, Nova-Franco B. Trehalose metabolism: from osmoprotection to signaling[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2009,10(9):3793-3810.
[22] 張 雯,王宇斐,郭延平.高等植物6-磷酸海藻糖信號調控研究進展[J].植物生理學報,2016,52(4):394-400.
[23] Bae H, Herman E, Bailey B, et al. Exogenous trehalose altersArabidopsistranscripts involved in cell wall modification, abiotic stress, nitrogen metabolism, and plant defense[J]. Physiologia Plantarum, 2005,125(1):114-126.
[24] 朱 明.新型食品添加劑海藻糖的功能及在食品工業中的應用[J].中國食品添加劑,2003(5):74-76.
[25] Iordachescu M, Imai R. Trehalose biosynthesis in response to abiotic stresses[J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2008,50(10):1223-1229.
[26] 謝桂英,吳少英.海藻糖在農業上的應用[J].農技服務,2008,25(2):122-123.
[27] 吳 兵,王 輝.海藻糖及其在微生物領域中的應用[J].微生物學免疫學進展,1999,27(2):93-95.
[28] 胡 王月.海藻糖的特性及其應用研究進展[J].齊魯藥事,2009,28(6):350-352.
[29] 黃 平.奇妙的雙糖——海藻糖[J].生命的化學,1995,15(4):26-28.
[30] 張蘭馨,張部昌.海藻糖分子的細胞保護作用研究進展[J].中國醫藥生物技術,2008,3(6):465-467.
[31] Schluepmann H, van Dijken A, Aghdasi M, et al. Trehalose mediated growth inhibition of Arabidopsis seedlings is due to trehalose-6-phosphate accumulation[J]. Plant Physiology, 2004,135(2):879-890.
[32] Fougere F, Le Rudulier D, Streeter J G. Effects of salt stress on amino acid, organic acid, and carbohydrate composition of roots, bacteroids, and cytosol of alfalfa (MedicagosativaL.)[J]. Plant Physiology, 1991,96(4):1228-1236.
[33] Garcia A B, Engler J, Iyer S, et al. Effects of osmoprotectants upon NaCl stress in rice[J]. Plant Physiology, 1997,115(1):159-169.
[34] 楊巧玲,楊曉梅,閆道良,等.外源海藻糖對鹽脅迫下海濱錦葵種子萌發的影響[J].江西林業科技,2014,42(2):1-4.
[35] 徐 婷,周傳余,周 超,等.海藻糖對鹽脅迫下薄皮甜瓜幼苗抗氧化系統的影響[J].北方園藝,2014(19):28-30.
[36] Delorge I, Janiak M, Carpentier S, et al. Fine tuning of trehalose biosynthesis and hydrolysis as novel tools for the generation of abiotic stress tolerant plants[J]. Frontiers in Plant Science, 2014,5:147.
[37] 閆道良,鄭炳松.海藻糖浸種對鹽脅迫下揚麥19生理特性的影響[J].浙江農業學報,2016,28(8):1271-1276.
[38] Moussaid S, Domínguez-Ferreras A, Muoz S, et al. Increased trehalose biosynthesis improvesMesorhizobiumcicerigrowth and symbiosis establishment in saline conditions[J]. Symbiosis, 2015,67(1):103-111.
[39] Garg N, Singla P. Stimulation of nitrogen fixation and trehalose biosynthesis by naringenin (Nar) and arbuscular mycorrhiza (AM) in chickpea under salinity stress[J]. Plant Growth Regulation, 2016,80(1):5-22.
[40] Ali Q, Ashraf M, Anwar F, et al. Trehalose-induced changes in seed oil composition and antioxidant potential of maize grown under drought stress[J]. Journal of the American Oil Chemists’ Society, 2012,89(8):1485-1493.
[41] 陳 靜,萬 佳,高曉玲,等.水稻抗旱生理及抗旱相關基因的研究進展[J].中國農學通報,2006,22(2):56-60.
[42] Ilhan S, Ozdemir F, Bor M. Contribution of trehalose biosynthetic pathway to drought stress tolerance ofCapparisovataDesf[J]. Plant Biology, 2015,17(2):402-407.
[43] Penna S. Building stress tolerance through over-producing trehalose in transgenic plants[J]. Trends in Plant Science, 2003,8(8):355-357.
[44] Alam M M, Nahar K, Hasanuzzaman M, et al. Trehalose-induced drought stress tolerance: A comparative study among differentBrassicaspecies[J]. Plant Omics, 2014,7(4):271-283.
[45] 裴 炎.海藻糖對冷凍和干燥后綠豆幼苗Mg2+,K+-ATPase活性和TTC還原的影響[J].植物學報,1994,36(增):211-214.
[46] 張建波,王莎莎,郝大海,等.干旱和低溫脅迫影響煙草幼苗海藻糖代謝的差異比較[J].生物技術通報,2015,31(10):111-118.
[47] Farías-Rodríguez R, Mellor R B, Arias C, et al. The accumulation of trehalose in nodules of several cultivars of common bean (Phaseolusvulgaris) and its correlation with resistance to drought stress[J]. Physiologia Plantarum, 1998,102(3):353-359.
[48] Vílchez J I, García-Fontana C, Román-Naranjo D, et al. Plant drought tolerance enhancement by trehalose production of desiccation-tolerant microorganisms[J]. Frontiers in Microbiology, 2016,7:1577.
[49] Zhang S Z, Yang B P, Feng C L, et al. Expression of the grifola frondosa yrehalose synthase gene and improvement of drought-tolerance in sugarcane(SaccharumofficinarumL.)[J]. Journal of Integrative Plant Biology, 2006,48(4):453-459.
[50] Akram N A, Waseem M, Ameen R, et al. Trehalose pretreatment induces drought tolerance in radish (RaphanussativusL.) plants: some key physio-biochemical traits[J]. Acta Physiologiae Plantarum, 2016,38(1):1-10.
[51] Garg A K, Kim J-K, Owens T G, et al. Trehalose accumulation in rice plants confers high tolerance levels to different abiotic stresses[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2002,99(25):15898-15903.
[52] 鄧如福,裴 炎,王瑜寧,等.海藻糖對水稻幼苗抗寒性研究[J].西南農業大學學報,1991,13(3):347-350.
[53] 謝冬微,王曉楠,付連雙,等.外源海藻糖對冬小麥低溫下胚芽長及幼苗抗寒性的影響[J].麥類作物學報,2015,35(2):215-223.
[54] Suzuki N, Bajad S, Shuman J, et al. The transcriptional co-activator MBF1c is a key regulator of thermotolerance inArabidopsisthaliana[J]. Journal of Biological Chemistry, 2008,283(14):9269-9275.
[56] Wyatt G, Kalf G. The chemistry of insect hemolymph II. Trehalose and other carbohydrates[J]. The Journal of General Physiology, 1957,40(6):833-847.
[57] Tayeh C, Randoux B, Vincent D, et al. Exogenous trehalose induces defenses in wheat before and during a biotic stress caused by powdery mildew[J]. Phytopathology, 2014,104(3):293-305.
[58] Singh V, Louis J, Ayre B G, et al.TREHALOSEPHOSPHATESYNTHASE11-dependent trehalose metabolism promotesArabidopsisthalianadefense against the phloem‐feeding insectMyzuspersicae[J]. The Plant Journal, 2011,67(1):94-104.
[59] Hofmann J, El Ashry AEN, Anwar S, et al. Metabolic profiling reveals local and systemic responses of host plants to nematode parasitism[J]. The Plant Journal, 2010,62(6):1058-1071.
[60] Golem S, Culver J N. Tobacco mosaic virus induced alterations in the gene expression profile ofArabidopsisthaliana[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2003,16(8):681-688.
[61] Schluepmann H, Paul M. Trehalose metabolites inArabidopsis-elusive, active and central[J]. The Arabidopsis Book, 2009,7:e0122.
[62] Beattie G A, Lindow S E. Bacterial colonization of leaves: a spectrum of strategies[J]. Phytopathology, 1999,89(5):353-359.
[63] Jiang K, Sorefan K, Deeks M J, et al. The ARP2/3 complex mediates guard cell actin reorganization and stomatal movement inArabidopsis[J]. The Plant Cell, 2012,24(5):2031-2040.
[64] Acharya B R, Assmann S M. Hormone interactions in stomatal function[J]. Plant Molecular Biology, 2009,69(4):451-462.
[65] Guzel Deger A, Scherzer S, Nuhkat M, et al. Guard cell SLAC1-type anion channels mediate flagellin-induced stomatal closure[J]. New Phytologist, 2015,208(1):162-173.
[66] Lim C W, Baek W, Jung J, et al. Function of ABA in stomatal defense against biotic and drought stresses[J]. International Journal of Molecular Sciences, 2015,16(7):15251-15270.
[67] Petrov V D, Van Breusegem F. Hydrogen peroxide: a central hub for information flow in plant cells[J]. AoB plants, 2012(1):pls014.
[68] Neill S, Barros R, Bright J, et al. Nitric oxide, stomatal closure, and abiotic stress[J]. Journal of Experimental Botany, 2008,59(2):165-176.
[69] McAinsh M R, Brownlee C, Hetherington A M. Calcium ions as second messengers in guard cell signal transduction[J]. Physiologia Plantarum, 1997,100(1):16-29.
[70] Pei Z M, Murata Y, Benning G, et al. Calcium channels activated by hydrogen peroxide mediate abscisic acid signalling in guard cells[J]. Nature, 2000,406(6797):731-734.
[71] Heinen R B, Ye Q, Chaumont F. Role of aquaporins in leaf physiology[J]. Journal of Experimental Botany, 2009,60(11):2971-2985.
[72] Li H W, Zang B S, Deng X W, et al. Overexpression of the trehalose-6-phosphate synthase geneOsTPS1 enhances abiotic stress tolerance in rice[J]. Planta, 2011,234(5):1007-1018.
[73] Liu Y, Han L, Qin L, et al. Saccharomyces cerevisiae geneTPS1 improves drought tolerance inZeamaysL. by increasing the expression of SDD1 and reducing stomatal density[J]. Plant Cell, Tissue and Organ Culture (PCTOC), 2015,120(2):779-789.
[74] Gao J, Wang N, Xu S S, et al. Exogenous application of trehalose induced H2O2production and stomatal closure inViciafaba[J]. Biologia Plantarum, 2013,57(2):380-384.
[75] Creelman R A, Mullet J E. Biosynthesis and action of jasmonates in plants[J]. Annual Review of Plant Biology, 1997,48(1):355-381.
[76] Savchenko T, Kolla V A, Wang C Q, et al. Functional convergence of oxylipin and abscisic acid pathways controls stomatal closure in response to drought[J]. Plant Physiology, 2014,164(3):1151-1160.
[77] Kazan K. Diverse roles of jasmonates and ethylene in abiotic stress tolerance[J]. Trends in Plant Science, 2015,20(4):219-229.
[78] Desikan R, Last K, Harrett-Williams R, et al. Ethylene-induced stomatal closure inArabidopsisoccurs via AtrbohF-mediated hydrogen peroxide synthesis[J]. The Plant Journal, 2006,47(6):907-916.
[79] 張廣斌,馬 靜,徐 華,等.中國稻田CH4排放量估算研究綜述[J].土壤學報,2009,46(5):907-914.
[80] 蔡祖聰.中國稻田甲烷排放研究進展[J].土壤,1999,31(5):266-269.