張魯新,魯 陳,李呂木,,徐雅芫,梁 君,刁 歡,丁維民
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產絮凝劑菌種的篩選及其在豬場污水凈化中的應用
張魯新1,魯 陳2,李呂木1,2※,徐雅芫1,梁 君1,刁 歡1,丁維民3
(1. 安徽農業大學生命科學學院,合肥 230036; 2. 安徽農業大學動物科技學院,合肥 230036; 3. 安徽安泰農業集團,廣德242200)
分離高效絮凝劑產生菌以有效絮凝豬場污水中的懸浮物。通過稀釋平板法和篩選培養基及以發酵液對豬場污水的絮凝率為指標復篩,從豬場污水沉淀池污泥中篩選獲得一株產絮凝劑的細菌FD-14,并進行16S rDNA鑒定,然后以絮凝效果為標準,采用La(34)正交設計對其培養條件進行優化;采用單因素試驗對其碳氮源進行優化。以最優培養條件下菌株的發酵液實際絮凝豬場污水,與化學絮凝劑的絮凝效果進行比較。分離得到一株高效絮凝劑產生菌FD-14,分子生物學鑒定為解淀粉芽孢桿菌(),其產絮凝劑最適條件為溫度33 ℃,pH值6.6,轉速150 r/min,培養時間42 h。菌株FD-14利用淀粉作為其廉價碳源替代發酵培養基的絮凝率為80.80%,與原標準培養基差異不顯著(>0.05);對豬場實際應用結果表明,微生物絮凝劑和化學絮凝劑對豬場污水絮凝率分別為79.0%和62.7%,微生物絮凝劑比化學絮凝劑對豬場污水絮凝率高16.3%。解淀粉芽孢桿菌FD-14是生物絮凝劑高效產生菌,其產生的絮凝劑可用于豬場污水懸浮物絮凝。
篩選;污水;凈化;解淀粉芽孢桿菌;絮凝劑;絮凝特性
隨著國家對畜牧場環境污染控制措施的逐步落實到位,畜牧場污水的安全高效凈化處理問題已經引起集約化畜牧業經營者的高度重視。由于豬場污水中懸浮物含量高,為了減輕后續生化處理的壓力,現在常使用化學合成絮凝劑如聚丙烯酰胺(polyacrylamide,PAM)和聚合氯化鋁(PAC)[1-2]對豬場污水的懸浮物進行絮凝。但大多數化學合成絮凝劑難以降解,且由化學合成絮凝劑衍生的許多單體對人體有害[3-5]。例如從PAM衍生的丙烯酰胺單體對人類是一種強烈的致癌物質和神經毒素[6],PAC所含的鋁離子可導致神經性病變如阿爾茨海默氏癥[7]。因而,目前一些國家已禁止或限制使用這類絮凝劑[8]。此外化學合成絮凝劑處理畜牧場污水時添加量大,成本高[9]。微生物絮凝劑(microbial flocculants,MF)是微生物產生的代謝產物,主要由多糖、蛋白質、核酸和脂質組成[10]。它可以誘導懸浮液中的固體顆粒、細菌、細胞和膠體粒子絮凝并沉淀。MF不但具有絮凝沉淀性能,還具有安全無毒,易于生物降解的顯著優點[11-12]。目前主要通過水生植物以及化學處理等途徑對豬場污水進行凈化,而利用微生物處理豬場廢水的研究報道還較少[1-2,13]。因此,豬場污水懸浮物的高效微生物絮凝劑產生菌的分離篩選備受重視。為此,本研究從豬場污水沉淀池污泥中分離高效絮凝劑產生菌,研究其生物絮凝劑的絮凝特性及絮凝豬場污水懸浮物的效果,以期獲得豬場養殖污水的高效微生物絮凝劑,為綠色生豬產業發展做出積極貢獻。
SW-CJ-2D超凈工作臺(蘇州凈化設備有限公司);FZQ-F160A高低溫恒溫振蕩培養箱(上海一恒科學儀器有限公司);752紫外可見分光光度計(上海浦東物理光學儀器廠);HC-2518高速離心機;GRJ-10D全自動發酵控制系統(江蘇省鎮江格瑞生物工程有限公司);微孔板紫外可見光度計(spectra MAX190,美谷分子儀器(上海)有限公司)。
篩選材料:豬場污水沉淀池污泥。
富集培養基:1)牛肉膏蛋白胨培養基:牛肉膏3 g,蛋白胨10 g,氯化鈉5 g,水1 000 mL,pH值7.2~7.4;2)PDA培養基:馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、水1 000 mL,pH值7.0~7.2;
分離培養基:1)PDA固體培養基(g/L):馬鈴薯200 g、葡萄糖20 g、瓊脂15~20 g、水1 000 mL,pH值7.0~7.2;2)細菌分離培養基[14]:脲0.5 g,酵母膏5.0 g,蔗糖20 g,K2HPO45.0 g,KH2PO42.0 g,MgSO42.0 g,NaCl 10 g,瓊脂15 g,水1 000 mL,pH 值7.0~7.2;
標準發酵培養基[14]:葡萄糖20 g,酵母粉5.0 g,牛肉膏2.0 g,KH2PO45.0 g,KH2PO42.0 g,MgSO42.0 g,NaCl 10 g,水1000 mL。
1.3.1初篩
取2 g污泥和2 mL污水樣品,分別加入到98 mL牛肉膏蛋白胨液體培養基和PDA液體培養基中,分別于37 ℃,150 r/min和30 ℃,150 r/min搖床振蕩富集培養24 h。取富集培養液,用無菌水適當稀釋后,取0.1 mL分別涂布于分離培養基上,于富集培養溫度條件下培養48 h,觀察菌落形態,并挑選表面光滑且大而帶黏性的菌落,隨后采用平板劃線法進行分離純化,于4 ℃冰箱保存備用。
1.3.2復篩
將初篩得到的菌株接入到100 mL標準發酵培養基中,并分別于相對應的篩選溫度下,150 r/min搖床振蕩培養72 h 后取菌液。以菌液對豬場污水的絮凝率為依據,選出具有生產高效絮凝劑的菌株。選擇絮凝活性高的菌株送大連寶生物進行16S rDNA序列鑒定,使用NCBI中的blast軟件分析菌株測序結果,使用Maga4.0 軟件的N-J法繪制系統發育樹。
1.3.3發酵菌液添加量對絮凝率的影響
準確量取0.1、0.5、1、2和3 mL發酵液添加到100 mL豬場污水中,并以氯化鈣為助凝劑,以對豬場污水絮凝率為指標,研究絮凝劑添加量對污水絮凝率的影響。
CaCl2添加量對絮凝率的影響:準確量取1 mL發酵液添加到100 mL豬場污水中,分別添加質量分數1%的CaCl21、2、3、4和5 mL,以對豬場污水絮凝率為指標,研究絮凝劑添加量對污水絮凝率的影響。
1.3.4 絮凝率的測定
取100 mL豬場污水,加入2 mL 1% CaCl2作為助凝劑,再加入1 mL發酵菌液,常溫條件下,100 r/min振蕩10 min,靜置30 min,取上清液,使用分光光度計測定波長680 nm處的吸光度OD680。絮凝率計算公式如下:
絮凝率(%)=[(?)/]×100%
式中是添加發酵液后污水在680 nm處吸光度;為原污水在680 nm處吸光度。
1.3.5 菌株生長曲線
將菌種接種到標準發酵培養基中,于37 ℃、150 r/min恒溫振蕩培養。每6 h取樣,以未接菌種的培養基為對照,分別測定發酵液pH值、菌體生長量OD600及發酵液對豬場污水的絮凝率,以發酵液pH值、菌體生長量OD600及發酵液對豬場污水的絮凝率為縱坐標,并以時間為橫坐標進行生長曲線的繪制。
1.4.1 培養條件優化
首先進行單因素試驗,分別確定培養時間、溫度、pH值和轉速4因素對絮凝活性的影響。培養時間對絮凝活性的影響:試驗方法參照1.5節。
正交試驗:根據單因素試驗結果,采用L9(34)正交試驗方法,利用10 L全自動發酵罐對溫度()、pH值()、轉速()、培養時間():4因素3水平進行優化。
1.4.2 碳氮源優化
旨在利用廉價碳氮源替代優選菌種的標準培養基碳氮源的可能性,以便降低工業化生產成本。碳源的優化:分別以麩皮、玉米粉和淀粉代替標準培養基中的葡萄糖,其他成分不變。氮源的優化:分別以尿素、氯化銨和豆粕代替標準培養基中的酵母粉和牛肉膏。替代碳氮源的低濃度水平為其對應的等碳和等氮替代。碳氮源的適宜替代水平確定,以絮凝效果與原標準發酵培養基絮凝效果差異不顯著(<0.05)為標準。
于安徽安泰農業集團肥東種豬育種公司污水處理站進行。利用污水處理站絮凝反應裝置進行微生物絮凝劑的應用研究,并以豬場現行的化學絮凝方法為對照。具體試驗步驟如下:
化學絮凝:第1步,徹底排空絮凝反應罐原有污水;第2步,放入新鮮的厭氧處理過的豬場污水3 t攪拌均勻并取樣500 mL,作為處理前的污水樣帶回實驗室分析;第3步,添加豬場使用的化學絮凝劑(0.05 g/mL PAC和0.001 g/mL PAM,0.05 g/mL NaOH)攪拌反應10 min,攪拌轉速為100 r/min;第4步:靜置30 min后取上清液500 mL,作為化學絮凝后的水樣帶回實驗室分析。
生物絮凝:第1步和第2步同化學絮凝;第3步,添加0.02 g/mL助凝劑氯化鈣并攪拌均勻;第4步,添加體積分數1%優選菌株擴培菌液,攪拌反應10 min,攪拌轉速為100 r/min;第5步,靜置30 min后取上清液500 mL,作為生物絮凝后的水樣帶回實驗室分析。
每種方法處理兩批,水樣均用棕色玻璃瓶盛裝,并保存于4 ℃陰暗處,其中測定COD和氨氮的樣品加濃硫酸酸化到pH值為2以下后于4 ℃冷藏保存。
將發酵液8 000×離心30 min去除菌體和雜質,上清液用旋轉蒸發儀旋轉蒸發至原體積的1/5,裝入3 000 Da透析袋中,透析3次每次6 h。加入3倍體積的預冷(4 ℃)無水乙醇,充分攪拌后,于4 ℃靜置24 h。8 000×離心30 min,收集沉淀。將沉淀重新溶解在100 mL蒸餾水中,加1:1的氯仿和正丁醇混合液(氯仿與正丁醇體積比5:2),室溫靜置1 d,取有機溶劑層加入2倍體積污水乙醇,于4 ℃靜置24 h,8000×離心30 min,收集沉淀。冷凍干燥,得到生物絮凝劑。
紫外光譜分析:1 g/L的絮凝劑樣品溶液在190~800 nm波長范圍內進行掃描。根據吸收峰判定樣品是否含蛋白質和核酸。紅外光譜分析:取1 mg絮凝劑,使用紅外光譜儀進行掃描分析,測定紅外吸收光譜,分析其官能團組成。多糖含量測定:采用苯酚-硫酸法測定絮凝劑中的多糖[15]。需利用葡萄糖做標準曲線,每個重復所需絮凝劑約為0.01 g。蛋白質含量測定:考馬斯亮藍法測定蛋白質含量[16],每個重復約需10 mg絮凝劑。
采用Microsoft Excel軟件對試驗數據初步整理,采用SAS8.0軟件對培養條件優化、培養基碳氮源優化試驗結果進行單因素方差分析,對微生物絮凝水質和化學絮凝后水質指標進行單因素方差分析和多重比較,并以鄧肯新復極差法對培養條件進行差異顯著性多重比較,<0.05表示差異顯著,<0.01表示差異極顯著。
分別在30和37 ℃條件下分離得到18株和23株表面光滑比較黏稠的菌株,對其進行絮凝活性的測定,其中37 ℃下得到的菌株FD-14絮凝率最高可達80.1%。為此,本研究以其為出發菌株進行后續研究。
2.1.1 發酵液添加量對絮凝率的影響
發酵液添加量從0.1 mL增加到1 mL時,對豬場污水的絮凝率隨發酵液添加量的增加快速提高。當發酵液添加量為1 mL時絮凝效果最好,絮凝率可以達到80.95%(圖1)。然后,隨著發酵液添加量的繼續增加,發酵液對豬場污水絮凝率出現下降,說明發酵液添加量在適宜范圍才會表現較高絮凝性能。

圖1 絮凝劑添加量對絮凝率的影響
2.1.2 助凝劑氯化鈣添加量對絮凝率的影響
在本研究中,加入氯化鈣可以提高對豬場污水的絮凝率(圖2)。1%氯化鈣添加量在1~2 mL之間時,絮凝率隨氯化鈣添加量的增加而提高。當氯化鈣添加量為2~3 mL時絮凝效果最好,絮凝率可以達到80.49%以上(圖2),然后,隨著氯化鈣添加量的增加,絮凝率出現下降,說明氯化鈣添加量也存在一個合適的范圍。

圖2 氯化鈣添加量對絮凝率的影響
經鑒定,菌株FD-14的16S rDNA 基因全序列總長1463 bp,與芽孢桿菌屬的多個菌株具有同源性,與(KP059106.1)的同源性達到99%,說明菌株FD-14為解淀粉芽孢桿菌()。
由菌株FD-14發酵液的絮凝活性與菌體生長量關系可以看出,可以確定該菌發酵動力學類型屬于II型,即發酵時間與產物合成部分偶聯。生長曲線(圖3)表明,菌株于6 h進入對數生長期,12 h后進入穩定期上升緩慢,78 h后其OD600開始降低;發酵液絮凝率在24 h前隨著菌的生長而緩慢上升;在24~42 h絮凝活性快速增加,隨后增加緩慢;在42~72 h時絮凝活性維持在較高水平,48 h達到最高值79.8%,72 h后絮凝活性快速下降。發酵液pH值在前6 h下降到5.8,6~24 h時維持在5.8附近,30 h時pH值上升到6.7左右,36~66 h維持在6.9上下,66~72 h時pH值下降到6.0并維持在6.0附近。

圖3 菌株FD-14生長曲線與絮凝曲線
2.4.1 培養條件優化
由表1可見,培養時間顯著影響絮凝率(<0.05),在0~48 h之間,絮凝活性隨著培養時間延長而增大,48 h絮凝活性最大,達77.93%,48~72 h為穩定期,絮凝活性維持在70%以上,菌株在穩定期大量分泌絮凝產物,72 h后進入衰亡期,絮凝活性下降,衰亡期由于培養基中營養物質被大量消耗,絮凝產物可能也被降解造成衰亡期絮凝率降低。

表1 培養時間單因素結果
注:同一列中肩標字母不同表示差異顯著(0.05),下同。
Note: The data with different letters in same column show significant difference (<0.05), the same as below.
由表2可知,培養溫度對絮凝率有顯著的影響(<0.05),培養溫度為33 ℃時,絮凝率最高為80.54%,隨著培養溫度的升高,絮凝率逐漸降低。培養基初始pH值對絮凝率也影響顯著(<0.05),開始時隨著培養基初始pH的上升,絮凝率逐漸加大,當培養基初始pH值為7時絮凝率最大為80.62%,此后,當培養基初始pH值繼續上升絮凝率隨之降低。轉速對絮凝率的影響趨勢與pH值相似,轉速主要是通過改變培養基的溶氧量來影響菌株生長,進而影響菌株對微生物絮凝劑合成代謝。過快或過低的轉速均不利于生物絮凝劑的合成,當轉速為150 r/min時,絮凝率最高為80.35%,因此,最佳轉速確定為150 r/min。

表2 培養溫度、轉速和pH單因素結果
正交試驗結果(表3)表明對絮凝率影響最大的是轉速,其次是pH值,然后是溫度和時間,即轉速>pH值>培養溫度>培養時間。且轉速、pH值和培養溫度對絮凝率的影響均達到了極顯著水平(<0.01),培養時間對菌株絮凝率影響不顯著,因此,選擇最少的培養時間D1(42 h)為其最佳培養時間,得出最優組合為A2B1C2D1培養溫度33 ℃,pH值6.6,攪拌轉速150 r/min,培養時間42 h。驗證試驗絮凝率為83.01%,絮凝率高于正交試驗組合,表明正交試驗優化結果為產絮凝劑最佳培養條件。

表3 正交試驗結果與分析

表4 Duncan多重比較結果
注:**表示變量各水平多重比較時差異極顯著(<0.01)同一行肩標不同字母表示差異顯著(<0.05),下同。
Note: ** signifies the difference of variable at each level is very significant during multiple comparison at<0.01, the data with different letters on the same line show significant difference (<0.05), the same as follow.
2.4.2 培養基碳氮源優化
發酵培養基的碳源是影響絮凝劑產生的關鍵因素,它直接影響絮凝劑的生產成本,從而限制其市場化。培養基不同碳源對發酵產絮凝劑的研究結果(表5)表明,淀粉為碳源時絮凝率均大于75.18%,麩皮為碳源時絮凝率非常低,最高不超22.41%,玉米粉為碳源時相較麩皮較好,但絮凝率最高也僅為39.79%。不同含量的淀粉對產絮凝劑的影響也不同(表5),適宜的淀粉濃度有利于菌株生長及代謝產物的積累,淀粉添加量過多時,菌株在生長過程中分解淀粉為葡萄糖,大量的葡萄糖導致pH值降低,胞外滲透壓上升。其中以添加20 g/L的淀粉效果最好,與標準的對照組差異不顯著(>0.05)。
氮源優化結果表明(表5),隨著無機氮NH4Cl濃度增加,絮凝率呈現提高趨勢,當其質量濃度為3.5 g/L時絮凝率最大為67.38%,但仍顯著低于對照組(<0.05)。當以尿素為氮源時,添加量為1.5 g/L時絮凝率最高為60.08%。而豆粕作為氮源時絮凝率最高僅為47.82%。

表5 不同碳源、氮源及其濃度對絮凝率的影響
生物絮凝和化學絮凝對水質的影響見表6。可以看出微生物絮凝劑對豬場污水的絮凝效果顯著優于化學絮凝劑。經計算兩者的絮凝率分別為79.0%和62.7%。

表6 生物絮凝與化學絮凝對水質的影響
提純后的微生物絮凝劑紫外掃描圖譜如圖4所示,可以看出吸收曲線較光滑,260 nm有小的吸收峰,260 nm處無特征吸收峰,說明微生物絮凝劑中含微量蛋白,不含核酸[17]。

圖4 絮凝劑紫外光譜分析
由紅外光譜圖(圖5)可見,提純后的微生物絮凝劑具有多糖特征。因為3 100~3 700 cm-1內有一強且寬的吸收峰,波峰在3 423.39 cm-1處為O-H鍵;2 937.03 cm-1處有一較弱的吸收峰,為飽和C-H伸縮振動的信號;在1 651.78 cm 的吸收峰是-COOH伸縮震動所致;1 400~1 500 cm-1有一吸收峰,最大吸收波長在1 408.12 cm-1,為C=C伸縮振動的吸收峰;1 200~1 400 cm-1的振動峰為C-H變角振動的吸收峰;950~1 250之間的吸收峰是2種C-O的伸縮振動引起,一種是糖環的醚鍵C-O-C,另一種是糖環中C-O-H振動引起[16,18],而1 000~1 200 cm-1處的強吸收峰為糖類衍生物的特征峰。1 mg/mL絮凝劑溶液中絮凝劑多糖質量分數測定為65.96%。絮凝劑中含微量蛋白,含量為0.020 11 g/L。

圖5 絮凝劑紅外光譜分析
針對特定絮凝目標分離篩選絮凝微生物是一項復雜的工作,選擇合適分離樣本并設計好篩選模型可大大提高篩選效率[19]。評價絮凝菌效果的重要指標是其對污水懸浮物的絮凝沉降能力,一般原始生長環境中的微生物對它的生長環境具有適應能力,因此,本研究采集豬場沉淀池污泥樣品篩菌。本試驗以對豬場污水懸浮物絮凝能力為指標,在41株細菌中篩選到6株能有效絮凝場污水懸浮物的細菌,說明有針對性的采集樣本,可以提高篩選效率。
每一種絮凝劑均存在最佳添加量,過多過少的添加量都會減弱絮凝效果。本試驗中,發酵液添加量過少時,可能導致絮凝劑分子不能有效吸附污水懸浮顆粒形成架橋[20];當發酵液添加量過高時,過多的絮凝劑之間存在較強的斥力抑制絮體生成[21]。因此最佳添加量為1%,絮凝率達80.95%。
絮凝過程中添加金屬離子有助凝作用,比如金屬鈣離子,這主要是因為鈣離子通過庫侖引力靠攏到帶負電荷的懸浮物顆粒形成Ca2+懸浮物復合物。通過減少相鄰懸浮物顆粒雙擴散層厚度,減少了顆粒之間的距離,進而促進絮凝沉淀的發生[22]。本試驗1% CaCl2的添加量小于1 mL時,隨著添加量增加,絮凝率逐漸上升,大于1 mL時,絮凝率逐漸下降,可見CaCl2的添加量對絮凝率影響較大,添加量增大能壓縮膠體雙電層,降低靜電斥力,促進絮凝劑的絮凝與吸附,因此,添加量最好為1 mL。
正交試驗結果表明轉速對絮凝率的影響最大。轉速不僅和發酵培養基中溶解氧的濃度有關,也可影響菌株對營養物質的吸收和細胞內代謝反應[23]。轉速過高時,發酵培養基中溶解氧充足,微生物細胞快速增殖消耗掉大量養分,導致絮凝產物的生成較少;轉速過低時,發酵培養基中溶解氧不足,微生物競爭氧氣,影響細胞正常代謝反應和對養分的吸收,從而對菌株FD-14的生長和代謝產物的合成造成不利影響[24]。搖床轉速為130 r/min時奇異變形桿菌TJ-1的絮凝產物的絮凝率最高,轉速為160 r/min時地衣芽孢桿菌X14合成的微生物絮凝劑絮凝率最高[25]。菌株FD-14合成絮凝劑的最佳轉速為150 r/min,與其他研究報道中最佳轉速相比較低[26]。
培養基初始pH值對生物絮凝劑的生產具有重要影響[27]。培養基初始pH值決定了表面電荷和氧化還原電位,進而影響微生物營養吸收和酶反應[28]。pH值不僅影響微生物的生長和絮凝產物的生成和積累,還能影響絮凝產物的表面電荷,進而影響其絮凝活性。當微生物絮凝劑在一定pH值范圍內,膠體顆粒表面電荷有所降低,使得顆粒之間的相互斥力減弱,從而有利于絮凝劑與顆粒之間的橋聯作用,此pH值即為該絮凝劑的最佳酸堿環境。培養基初始pH值為7時絮凝率最大為80.62%,而正交試驗結果表明pH 值6.6時,絮凝率為83.01%,此后,當培養基初始pH值繼續上升絮凝率隨之降低。說明該菌所產絮凝劑在堿性環境下絮凝效果較差,在中性近酸性環境條件下有較高的絮凝活性。
培養溫度是絮凝率的第三影響因素。培養溫度不僅能對微生物的生長和新陳代謝有影響,而且影響微生物細胞內酶的活性[23]。不同的微生物生成絮凝劑的最適溫度不一樣,如奇異變形桿菌TJ-1產微生物絮凝劑的最佳溫度為25 ℃[29],地衣芽孢桿菌X14產微生物絮凝劑的最佳溫度為37 ℃[25]。本試驗獲得的菌株FD-14產絮凝劑的最佳溫度為33 ℃,溫度過高導致菌株體內酶的活性降低甚至喪失,影響菌株的生長代謝,造成菌株FD-14發酵液絮凝率低:溫度過低,菌株生長緩慢并導致體內酶活性降低,從而減少菌體內代謝產物的生成和積累,降低MF的產生,減少積累量,絮凝率降低。
微生物絮凝劑與化學絮凝劑對豬場污水絮凝效果對比(表6)表明,微生物絮凝劑顯著優于化學絮凝劑。化學絮凝劑絮凝污水主要是電中和作用[30]。微生物絮凝劑具有鏈狀結構,分子上的活性基團(羥基和羧基基團)為污水懸浮物提供吸附位點[31],相對于無機絮凝劑,微生物絮凝劑可以更有效的絮凝豬場污水。此外,污水處理廠大規模應用無機絮凝劑如聚合氯化鋁會引發健康風險[25]。微生物絮凝劑產生菌FD-14來自豬場沉淀池污泥,所產絮凝劑對如污泥pH值、鹽度等特性,具有良好的適應性,且具有易生物降解、高效無毒等突出優點,是具有廣闊的應用前景的新型高效絮凝劑。
本試驗獲得的絮凝劑產生菌適應豬場污水原始pH值,絮凝前所取水樣pH值7.93,微生物絮凝后所取水樣pH值7.64,絮凝率達79.0%。同時,對豬場污水濁度和COD的去除率分別達到80%和48.6%,而崔亞楠篩選的菌株xn17所產絮凝劑需調節豬場污水pH值到9.5時,對豬場污水濁度和COD的去除率分別為80%和47%[31-32]。微生物絮凝劑產生菌FD-14不需要調節pH值就能達到相似的絮凝結果從而降低處理成本,是一株較好的絮凝豬場污水懸浮物的絮凝菌。
通過紫外光譜分析、紅外光譜分析、苯酚-硫酸法、考馬斯亮藍法對絮凝劑成分進行分析,發現該絮凝劑是富含羥基和羧基的多糖類絮凝劑,這與文獻中微生物絮凝劑多半以多糖為主,且富含的羥基和羧基對絮凝效果有重要作用的報道一致[16-17,33]。
1)從污泥中篩選到一株高效絮凝劑產生菌FD-14,經分子生物學鑒定為解淀粉芽孢桿菌。其產生的具有絮凝活性的發酵液,在助凝劑氯化鈣最佳添加量為0.02 g/mL條件下,優選菌株添加體積分數為1%,對豬場污水的絮凝率可達80%。
2)菌株FD-14產生物絮凝劑的最優培養條件為pH值6.6,溫度33 ℃,攪拌轉速150 r/min,培養時間42 h。工業化生產最優培養基為:淀粉2 g/mL,酵母粉0.5 g/mL和牛肉膏0.2 g/mL,硫酸鎂0.2 g/mL,氯化鈉1g/mL,磷酸氫二鉀0.5g/mL,磷酸二氫鉀0. g/mL。
3)菌FD-14分泌產生的主要物質是多糖,含微量蛋白,因此具有很強的熱穩定性,多糖質量分數為65.96%。
[1] 段妮娜,董濱,何群彪,等. 規模化養豬廢水處理模式現狀和發展趨勢[J]. 凈水技術,2008,27(4):9-15.
Duan Nina, Dong Bin, He Qunbiao, et al. Current status and advances in swine wastewater treatment technology for scaled hoggery[J]. Water Purification Technology, 2008, 27(4): 9-15. (in Chinese with English abstract)
[2] 成文. 養豬場廢水的化學混凝后處理[J]. 華南師范大學學報:自然科學版,2000(1):82-86.
Cheng Wen. Post-treatment of chemical coagulation in piggery wastewater[J]. Journal of South China Normal University, 2000(1): 82-86. (in Chinese with English abstract)
[3] Salehizadeh H, Shojaosadati S A. Extracellular biopolymeric flocculants. Recent trends and biotechnological importance[J]. Biotechnology Advances, 2001, 19(5): 371-385.
[4] Xia S, Zhang Z, Wang X, et al. Production and characterization of a bioflocculant byTJ-1[J]. Bioresource Technology, 2008, 99(14): 6520.
[5] Gong W X, Wang S G, Sun X F, et al. Bioflocculant production by culture ofand its application in wastewater treatment[J]. Bioresour Technol, 2008, 99(11): 4668-4674.
[6] Li J, Li D, Yang Y, et al. Acrylamide induces locomotor defects and degeneration of dopamine neurons in Caenorhabditis elegans.[J]. Journal of Applied Toxicology, 2016, 36(1): 60-67.
[7] Zawilla N H, Taha F M, Kishk N A, et al. Occupational exposure to aluminum and its amyloidogenic link with cognitive functions[J]. Journal of Inorganic Biochemistry, 2014, 139: 57.
[8] Xiong Y, Wang Y, Yu Y, et al. Production and Characterization of a Novel Bioflocculant from Bacillus licheniformis[J]. Applied & Environmental Microbiology, 2010, 76(9): 2778-2782.
[9] 黃海波. 高濃度養豬廢水處理工藝研究[D]. 楊凌:西北農林科技大學,2013.
Huang Haibo. Study on High Concentration of Piggery Wastewater Treatment Process[D]. Yangling: Northwest A&F University, 2013.
[10] Flemming H C, Wingender J. The biofilm matrix[J]. Nature Reviews Microbiology, 2010, 8(9): 623.
[11] Salehizadeh H, Vossoughi M, Alemzadeh I. Some investigations on bioflocculant producing bacteria[J]. Biochemical Engineering Journal, 2000, 5(1): 39-44.
[12] Wang L, Ma F, Lee D J, et al. Bioflocculants from hydrolysates of corn stover using isolated strainW2[J]. Bioresource Technology, 2013, 145(19): 259.
[13] 劉林林,黃旭雄,危立坤,等. 15株微藻對豬場養殖污水中氮磷的凈化及其細胞營養分析[J]. 環境科學學報,2014,34(8):1986-1994.
Liu Linlin, Huang Xuxiong, Wei Likun, et al. Removal of nitrogen and phosphorus by 15strains of microalgae and their nutritional values in piggery sewage[J]. Acta Scientiae Circumstantiae, 2014, 34(8): 1986-1994. (in Chinese with English abstract)
[14] 郭俊元. 微生物絮凝與改性沸石吸附聯合處理豬場廢水的研究[D]. 長沙:湖南大學,2013.
Guo Junyuan. Treatment of swine wastewater using bioflocculation and adsorption with chemically modified zeolite[D]. Changsha: Hunan University, 2013.
[15] 張云波,李政,劉其友,等. 微生物絮凝劑產生菌KJ-10的絮凝性能及絮凝成分分析[J]. 環境工程學報,2011,5(4):951-955.
Zhang Yunbo, Li Zheng, Liu Qiyou . Flocculating property and ingredient analysis of the microbial flocculant-producing strain KJ-10[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2011, 5(4): 951-955. (in Chinese with English abstract)
[16] 朱富坤,劉彬彬,閆永勝,等. 微生物絮凝劑PF-2的成分分析及絮凝機制研究[J]. 環境污染與防治,2008,30(2):37-40.
Zhu Fukun, Liu Binbin, Yan Yongshen. Composition and flocculating mechanism of microbial flocculant PF-2[J]. Environmental Pollution & Control, 2008, 30(2): 37-40. (in Chinese with English abstract)
[17] 唐靜,王蘭. 微生物絮凝劑XM09活性成分分析及應用[J]. 環境工程學報,2011,5(4):939-944.
Tang Jing, Wang Lan. Application and analysis of active ingredient of microbial flocculant XM09[J]. Chinese Journal of Environmental Engineering, 2011, 5(4): 939-944. (in Chinese with English abstract)
[18] 張曉輝,李雙石,楊國偉,等. 產絮凝劑微生物的制備及其絮凝成分分析[J]. 安全與環境工程,2008,15(4):39-42. Zhang Xiaohui, Li Shuangshi,Yang Guowei, et al. Preparation of flocculant-producing microorganism and property analysis of microbial flocculant[J]. Safety & Environmental Engineering, 2008, 15(4): 39-42. (in Chinese with English abstract)
[19] 齊愛勇,魏東盛,劉大群,等. 番茄灰霉病拮抗細菌的篩選[J]. 中國農學通報,2006,22(6):311-313.
Qi Aiyong, Wei Dongshen, Liu Daqun, et al. Screening of antagonistic bacteria against botrytis cinerea[J]. Chinese Agricultural Science Bulletin, 2006, 22(6): 311-313. (in Chinese with English abstract)
[20] Zhang Z Q, Si Q, Xia S Q, et al. Production and application of a novel bioflocculant by multiple-microorganism consortia using brewery wastewater as carbon source[J]. Journal of Environmental Sciences(China), 2007, 19(6): 667.
[21] Yim J H, Kim S J, Ahn S H, et al. Characterization of a novel bioflocculant, p-KG03, from a marine dinoflagellate,KG03.[J]. Bioresource Technology, 2007, 98(2): 361-367.
[22] Li W, Zhou W, Zhang Y, et al. Flocculation behavior and mechanism of an exopolysaccharide from the deep-sea psychrophilic bacterium. SM9913.[J]. Bioresource Technology, 2008, 99(15): 6893-6899.
[23] Zhang J L Z, Wang S, Jiang P. Characterization of a bioflocculant produced by the marine myxobacteriumNU-2[J]. Applied Microbiology & Biotechnology, 2002, 59(4/5): 517-522.
[24] Shih I L, Van Y T, Yeh L C, et al. Production of a biopolymer flocculant from Bacillus licheniformis and its flocculation properties[J]. Bioresource Technology, 2001, 78(3): 267-272.
[25] Li Z, Zhong S, Lei HY, et al. Production of a novel bioflocculant byX14 and its application to low temperature drinking water treatment[J]. Bioresource Technology, 2009, 100(14): 3650-3656.
[26] Liu W J, Wang K, Li B Z, et al. Production and characterization of an intracellular bioflocculant byW6 cultured in low nutrition medium[J]. Bioresource Technology, 2010, 101(3): 1044-1048
[27] Zhang B, Fan R, Bai Z, et al. Biosorption characteristics of Bacillus gibsonii S-2 waste biomass for removal of lead (II) from aqueous solution[J]. Environmental Science and Pollution Research, 2013, 20(3): 1367-1373.
[28] Liu J, Ma J, Liu Y, et al. Optimized production of a novel bioflocculant M-C11 by. and its application in sludge dewatering[J]. Journal of Environmental Sciences (China), 2014, 26(10): 2076-2083.
[29] Xia S Q, Zhang Z Q, Wang X J, et al. Production and characterization of a bioflocculant by Proteus mirabilis TJ-1[J]. Bioresource Technology, 2008, 99(14): 6520-6527
[30] 劉歡,李亞林,時亞飛,等. 無機復合調理劑對污泥脫水性能的影響[J]. 環境化學,2011,30(11):1877-1882.
Liu Huan, Li Yalin, Shi Yafei. Influence of inorganin comopsite conditioner on dewatering performance of sewage sludge[J]. Environmental Chemistry, 2011, 30(11): 1877-1882. (in Chinese with English abstract)
[31] 于榮麗,孫麗娜,孫鐵珩. 微生物絮凝劑絮凝機理的研究概況及例證[J]. 安全與環境學報,2012(1):24-26.
Yu Rongli, Sun Lina, Sun Tieheng. Research on the flocculation mechanism of microbial flocculants[J]. Journal of Safety & Environment, 2012, 12(1): 1-4. (in Chinese with English abstract)
[32] 崔亞楠. 生物絮凝劑處理養殖廢水研究[D]. 鄭州:鄭州大學,2011.
Cui Yanan. Study on treatment of swine wastewater with bioflocculant[D]. Zhengzhou: Zhengzhou University, 2011.
[33] 朱富坤,劉彬彬,閆永勝,等. 微生物絮凝劑PF-2的成分分析及絮凝機制研究[J]. 環境污染與防治,2008,30(2):37-40.
Isolation and identification of flocclant producing strain and its application for swine wastewater clarification
Zhang Luxin1, LuChen2, Li Lvmu1,2※, Xu Yayuan1, Liang Jun1, Diao Huan1, Ding Weimin3
(1.230036; 2.230036; 3.242200)
An efficient flocculant producing strain was isolated, which could effectively flocculate suspended matter in piggery wastewater.The sludge from piggery sewage sedimentation tank was selected as the screening material.Screening was carried out by dilution plate method and screening medium.Colonies with smooth, large and sticky surfaces were selected.Then the plate was used to isolate and purify the strain, and then inoculated into the liquid medium.The flocculation rate of swine wastewater treated by bacterial fermentation liquid as index was rescreened.Finally, a flocculant producing bacterial strain FD-14 was obtained and identified by 16S rDNA.First, single factor experiments were conducted on the culture conditions, in order to determine the influence of 4 factors on the flocculation activity, such as culture temperature, pH value, rotational speed and time,L9 (34) orthogonal design was used to optimize the culture conditions of the strain.The culture conditions were optimized: Temperature: 30, 33 and 36 ℃; pH vale: 6.6, 7, 7.4; speed: 120, 150, 180 r/min, and incubation time: 42, 48, 54 h.Then the single factor experiment was used to optimize the carbon and nitrogen source of the medium.By using ultraviolet spectroscopy, infrared spectroscopy, phenol sulfuric acid method and Coomassie brilliant blue method was used to analyze the components of flocculant. Under the optimal conditions, strain FD-14 was cultured and fermentation broth was used as a crude flocculant, which had been applied to practical swine farm wastewater treatment. The results showed that FD-14 was identified asbased on 16S rDNA gene sequencing. The optimum culture conditions of strain FD-14 were 33 ℃, initial pH value 6.5, rotational speed of 150 r/min, and 42 h incubation. The results showed that strain FD-14 could use starch as an alternative inexpensive carbon source for the fermentation medium, the flocculation rate of 80.80% was not significantly different (>0.05) from the original standard medium. The effect of substituting inexpensive nitrogen sources was poor; the flocculation rate of the best, ammonium chloride, was 67.38%, which was significantly less than the original standard medium (<0.05). According to the practical application results on a swine farm, the flocculation rates of the microbial and chemical flocculants of the swine farm wastewater were 79.0% and 62.7%, respectively. The flocculation rate of the microbial flocculant was 16.3% higher than that of the chemical flocculant. Analysis using UV and IR spectroscopy, the phenol sulfuric acid method, and the Coomassie brilliant blue method of flocculant composition revealed that the polysaccharide flocculant was rich in hydroxyl and carboxyl groups. Strain FD-14 mainly secreted 65.96% polysaccharide substances, but the protein content was minimal, so it had strong heat stability.In this study, it could be concluded that bioflocculant-producing bacteria with high flocculating activity and flocculation might be used for flocculation of swine farm wastewater.
screening; wastewater; purification; Bacillus amyloliquefaciens; flocculant; flocculation characteristics
10.11975/j.issn.1002-6819.2017.20.031
S18
A
1002-6819(2017)-20-0250-07
2017-03-29
2017-10-10
國家星火計劃重點項目(2014GA710002)
張魯新,主要從事微生物學研究。Email:791535996@qq.com
※通信作者:李呂木,男,安徽和縣人,研究員,博士,博士生導師,主要從事畜牧微生物與動物營養研究。Email:llm56@ahau.edu.cn
張魯新,魯 陳,李呂木,徐雅芫,梁 君,刁 歡,丁維民. 產絮凝劑菌種的篩選及其在豬場污水凈化中的應用[J]. 農業工程學報,2017,33(20):250-256. doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2017.20.031 http://www.tcsae.org
Zhang Luxin, Lu Chen, Li Lvmu, Xu Yayuan, Liang Jun, Diao Huan, Ding Weimin. Isolation and identification of flocclant producing strain and its application for swine wastewater clarification[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2017, 33(20): 250-256. (in Chinese with English abstract) doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2017.20.031 http://www.tcsae.org