吳燕 彭芳 吳斌
摘要:基于表面增強(qiáng)拉曼光譜方法(surface-enhanced raman spectroscopy,簡(jiǎn)稱SERS)與快速溶劑提取前處理技術(shù),建立茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留的快速檢測(cè)方法。以金納米粒子為增強(qiáng)基底,分別采集不同濃度樂(lè)果溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜和不同濃度以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液表面增強(qiáng)拉曼光譜;采用無(wú)水硫酸鎂、四氯化三鐵、石墨化碳對(duì)提取液進(jìn)行凈化處理,去除基質(zhì)中葉綠素、礦物質(zhì)、茶多酚、碳水化合物等物質(zhì)的干擾;762、902、1 050、1 160、1 210、1 310、1 653 cm-1這7處譜峰可作為鑒定樂(lè)果農(nóng)藥的峰。結(jié)果表明,茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥最低濃度能達(dá)到1.0 mg/L以下;對(duì)不同濃度以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液表面增強(qiáng)拉曼光譜進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)762 cm-1處特征峰強(qiáng)度與樂(lè)果濃度在 1~10、8~25 mg/L內(nèi)具有良好的線性關(guān)系;配制3個(gè)濃度樣本驗(yàn)證方法的準(zhǔn)確度,平均回收率為93.89%~96.36%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差為2.59%~4.87%,均小于5.00%,說(shuō)明用該方法檢測(cè)茶葉中的樂(lè)果農(nóng)藥具有較高的準(zhǔn)確度和精密度。
關(guān)鍵詞:表面增強(qiáng)拉曼光譜;樂(lè)果農(nóng)藥;茶葉;殘留;快速檢測(cè)
中圖分類號(hào): TQ450.2+63文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2017)14-0160-04
樂(lè)果是茶葉種植中使用最廣泛的農(nóng)藥之一,對(duì)多種害蟲(chóng)具有很高的毒效作用,殺蟲(chóng)范圍廣。樂(lè)果農(nóng)藥隨農(nóng)產(chǎn)品進(jìn)入人體后,藥效能達(dá)到1周左右,會(huì)抑制體內(nèi)膽堿酯酶活性,造成神經(jīng)生理功能紊亂,嚴(yán)重影響消費(fèi)者的身心健康[1-2]。目前,農(nóng)藥殘留常規(guī)檢測(cè)方法有氣相色譜法(GC)[3]、高效液相色譜法(HPLC)[4]等,這些方法具有準(zhǔn)確、靈敏度高等特點(diǎn),但前處理復(fù)雜、成本高、檢測(cè)速度慢、不適合現(xiàn)場(chǎng)實(shí)時(shí)快速檢測(cè)篩選。
表面增強(qiáng)拉曼光譜(surface-enhanced raman spectroscopy,簡(jiǎn)稱SERS)技術(shù)能實(shí)現(xiàn)對(duì)微量樣品的快速檢測(cè),具有樣品制備簡(jiǎn)單、操作簡(jiǎn)便、靈敏度高等優(yōu)點(diǎn),已逐步應(yīng)用于食品和農(nóng)產(chǎn)品中的農(nóng)藥殘留快速檢測(cè)[5-7]。Li等利用表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)初步探討了蘋果中甲拌磷和倍硫磷的快速無(wú)損檢測(cè)方法[8]。Kim等以苯并咪唑類為研究對(duì)象,采集不同pH值下待測(cè)溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜,對(duì)拉曼譜峰進(jìn)行歸屬[9]。張萍等采用快速溶劑提取前處理方法和表面增強(qiáng)拉曼光譜檢測(cè)技術(shù)建立豆芽中6-BA殘留物質(zhì)的快速檢測(cè)方法[10]。Shende等采用固相萃取技術(shù)對(duì)橙汁進(jìn)行前處理,結(jié)合表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù),檢測(cè)最低濃度為50 μg/L[11]。近年來(lái),已有研究者將表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)用于茶葉的品質(zhì)檢測(cè)[12-13],但目前還未見(jiàn)利用拉曼光譜技術(shù)分析茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留的相關(guān)報(bào)道。
本研究以商業(yè)化的金納米顆粒為基底,利用表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)對(duì)茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留進(jìn)行定性定量分析。以有機(jī)綠茶為研究載體,利用快速溶劑提取前處理的方法提取含農(nóng)藥殘留茶葉的提取液,采用無(wú)水硫酸鎂、四氯化三鐵、石墨化碳對(duì)提取液進(jìn)行凈化處理,去除基質(zhì)中葉綠素、礦物質(zhì)、茶多酚、碳水化合物等物質(zhì)的干擾,建立茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留的快速檢測(cè)方法,為茶葉生產(chǎn)過(guò)程中的農(nóng)藥殘留檢測(cè)提供快速、準(zhǔn)確、簡(jiǎn)便的檢測(cè)方案。
1材料與方法
1.1原料
樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)品(99%,河北威遠(yuǎn)生物化工股份有限公司);乙腈、甲醇(色譜純,河北冠龍農(nóng)化有限公司);表面增強(qiáng)試劑(OTR202、OTR103,歐普?qǐng)D斯光學(xué)納米科技有限公司);硫酸鎂、四氯化三鐵、石墨化碳(河北冠龍農(nóng)化有限公司);有機(jī)綠茶;超純水。
1.2試驗(yàn)儀器
高靈敏度激光拉曼光譜儀(RamTracer-200-HS,歐普?qǐng)D斯光學(xué)納米科技有限公司);渦旋混合器(VORTEX-5,江蘇海門其林貝爾儀器制造有限公司);恒溫?cái)?shù)控超聲波清洗器(KQ-500GTDV,上海精密儀器有限公司);精密天平(FA135S,精度為0.01 mg,上海精密儀器儀表有限公司)。
1.3樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
準(zhǔn)確稱取25 mg樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)品放入250 mL棕色容量瓶中,用適量甲醇超聲溶解,待完全溶解后定容至刻度,得到濃度為100 mg/L的樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。用甲醇將標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液稀釋成不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)液待用:50.0、20.0、15.0、10.0、8.0、5.0、40、2.0、1.0、0.5 mg/L。
1.4以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液配制
1.4.1空白茶葉提取液的提取準(zhǔn)確稱取5 g茶葉樣品,放入離心管中,加入乙腈10 mL,渦旋1 min,再超聲提取2 min,以 4 200 r/min 轉(zhuǎn)速離心5 min,取上清液。
1.4.2以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液配制取5 mL茶葉提取液和5 mL濃度為100 mg/L的樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液放入 15 mL 離心管中,渦旋、振蕩、混合均勻,得到50 mg/L以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液。
1.4.3凈化將含有樂(lè)果農(nóng)藥殘留的溶液加入裝有一定量的硫酸鎂、四氯化三鐵、石墨化碳的離心管中,混合振蕩 1 min,以4 200 r/min轉(zhuǎn)速離心5 min,去除基質(zhì)中葉綠素、礦物質(zhì)、茶多酚、碳水化合物等物質(zhì)的干擾,取上清液用于拉曼光譜檢測(cè)。
以同樣方法,分別制備濃度為25.0、20.0、16.0、12.0、10.0、8.0、5.0、4.0、3.0、2.0、1.0、0.5 mg/L的以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液。
1.5光譜數(shù)據(jù)采集
拉曼光譜采集參數(shù):激發(fā)光源波長(zhǎng)為785 nm,功率為 200 mW,光譜掃描范圍為400~1 800 cm-1,分辨率為 4 cm-1,積分時(shí)間為10 s,積分2次求平均值。向石英進(jìn)樣瓶中加入500 μL濃度為50 mg/L的樂(lè)果溶液,放入樣品池中采集樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的普通拉曼光譜;向石英進(jìn)樣瓶中加入以茶葉提取液為基質(zhì)的500 μL濃度為50 mg/L的溶液,放入樣品池中,采集以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液普通拉曼光譜;向石英進(jìn)樣瓶中依次加入500 μL OTR202試劑、20 μL不同濃度的樂(lè)果溶液、100 μL OTR103試劑,混合均勻后放入樣品池中,采集待測(cè)溶液的表面增強(qiáng)拉曼信號(hào);向石英進(jìn)樣瓶中依次加入500 μL OTR202試劑、20 μL以茶葉提取液為基質(zhì)的樂(lè)果溶液、100 μL OTR103試劑,混合均勻后放入樣品池中,采集待測(cè)溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜。所有數(shù)據(jù)分析基于激光拉曼光譜儀平臺(tái)完成。
2結(jié)果與分析
2.1樂(lè)果農(nóng)藥的拉曼光譜分析
2.1.1樂(lè)果農(nóng)藥的固體拉曼光譜和表面增強(qiáng)拉曼光譜比較
圖1-a是樂(lè)果的固體拉曼光譜,圖1-b是濃度為 20 mg/L 樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜,光譜采集范圍為400~1 800 cm-1。樂(lè)果主要由C[FY=,1]N、C—N、C[FY=,1]O、CH2、C—O、CH3、P—S、N—H等基團(tuán)組成。對(duì)比樂(lè)果的固體普通拉曼光譜和表面增強(qiáng)拉曼譜圖,樂(lè)果固體的2個(gè)最強(qiáng)峰494、646 cm-1在表面增強(qiáng)拉曼譜圖中沒(méi)有出現(xiàn),而在表面增強(qiáng)拉曼譜圖中出現(xiàn)了一些新的拉曼峰:582、678 cm-1,表明樂(lè)果農(nóng)藥分子在金膠的表面發(fā)生了較大的反應(yīng)。在600~1 400 cm-1 范圍內(nèi),大多數(shù)拉曼峰變化為較小的波數(shù):764~762、908~902、1 056~1 050、1 164~1 160、1 224~1 210、1 340~1 310 cm-1。
樂(lè)果固體和表面增強(qiáng)的拉曼峰及其歸屬如表1所示。762、902、1 050、1 160、1 210、1 310、1 653 cm-1這7處譜峰強(qiáng)度較高,對(duì)這7處特征峰進(jìn)行譜峰歸屬[13]:最強(qiáng)峰出現(xiàn)在 762 cm-1 處,762 cm-1歸屬于P—O拉伸振動(dòng);902 cm-1歸屬于C—C伸縮振動(dòng),并伴有CH3的搖擺振動(dòng);1 050 cm-1歸屬于C—N伸縮振動(dòng)和C—C伸縮振動(dòng);1 160、1 210 cm-1歸屬于CH2搖擺振動(dòng);1 310 cm-1歸屬于C—N伸縮振動(dòng),并伴有CH2的搖擺振動(dòng)和N—H的彎曲振動(dòng);1 653 cm-1歸屬于C[FY=,1]O的伸縮振動(dòng),這些特征譜峰可作為鑒定樂(lè)果農(nóng)藥的特征峰。
[FK(W12][TPWY1.tif]
2.1.2樂(lè)果農(nóng)藥表面增強(qiáng)拉曼光譜和背景信號(hào)光譜的比較
圖2-a是濃度為10 mg/L樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜,圖2-b是濃度為10 mg/L樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的普通拉曼光譜,圖1-c是金膠表面增強(qiáng)拉曼光譜,圖1-d是甲醇溶液表面增強(qiáng)拉曼光譜。對(duì)比樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的普通拉曼光譜和表面增強(qiáng)拉曼譜,普通拉曼光譜圖只有單一譜峰,且峰強(qiáng)不高,樂(lè)果溶液的普通拉曼光譜中沒(méi)有檢測(cè)到樂(lè)果的拉曼信號(hào),而樂(lè)果溶液表面增強(qiáng)拉曼光譜中的譜峰較多,且譜峰強(qiáng)度較高,特征峰明顯, 說(shuō)明納米增強(qiáng)試劑能有效增強(qiáng)樂(lè)果溶液的拉曼信號(hào)。對(duì)比甲醇溶液、金膠、樂(lè)果溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜可以發(fā)現(xiàn),背景信號(hào)的表面增強(qiáng)拉曼光譜峰強(qiáng)較弱,且其譜峰位置與樂(lè)果農(nóng)藥分子的譜峰不重合,說(shuō)明樂(lè)果溶液的表面增強(qiáng)拉曼信號(hào)不會(huì)受到背景信號(hào)的干擾。762、902、1 050、1 160、1 210、1 310、1 653 cm-1這7處譜峰可作為鑒定樂(lè)果農(nóng)藥的特征峰。
2.2樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的表面增強(qiáng)光譜
從圖3可以看出,隨著樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的增加,其特征峰的強(qiáng)度不斷增強(qiáng),1 050、1 160、1 210 cm-1變化最快,902、1 653 cm-1 其次,762、1 310 cm-1變化最慢,這可能是因?yàn)榧{米增強(qiáng)粒子與樂(lè)果農(nóng)藥分子中各個(gè)基團(tuán)表面吸附力的大小和方向不同導(dǎo)致的。隨著樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的降低,拉曼特征峰的強(qiáng)度逐漸減弱,濃度為10.0 mg/L時(shí),樂(lè)果的7處拉曼峰明顯,易識(shí)別;濃度為5.0、2.0、1.0 mg/L時(shí),762、902、1 310 cm-1處拉曼信號(hào)明顯,而1 050、1 160、1 210 cm-1處拉曼信號(hào)沒(méi)有出現(xiàn);濃度為0.5 mg/L時(shí),762、902、1 310 cm-1處拉曼信號(hào)可以鑒別,但很微弱。由此表明,利用SERS技術(shù)檢測(cè)樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液的濃度能達(dá)到0.5 mg/L以下。從圖3中可以看出,隨著樂(lè)果標(biāo)準(zhǔn)溶液濃度的降低,在762、1 310 cm-1處有良好的線性關(guān)系,可以用來(lái)對(duì)樂(lè)果農(nóng)藥進(jìn)行定量分析。
2.3茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留分析
受茶葉中葉綠素、礦物質(zhì)、茶多酚、碳水化合物等物質(zhì)的干擾,樂(lè)果農(nóng)藥分子的拉曼信號(hào)被削弱。本研究采用無(wú)水硫酸鎂、四氯化三鐵、石墨化碳對(duì)提取液進(jìn)行凈化處理,去除基質(zhì)中葉綠素、礦物質(zhì)、茶多酚、碳水化合物等物質(zhì)的干擾,凈化后含樂(lè)果農(nóng)藥茶葉溶液的表面增強(qiáng)拉曼光譜如圖4所示。圖4-a、圖4-b、圖4-c中,762、902、1 310 cm-1處特征峰明顯,易識(shí)別;濃度為2.0 mg/L時(shí),762、1 310 cm-1處的峰強(qiáng)度明顯降低,但依然能識(shí)別,902 cm-1處的拉曼特征峰已無(wú)法識(shí)別;濃度為1.0 mg/L時(shí),762、1 310 cm-1處特征峰依然存在,峰強(qiáng)十分微弱,但依然能識(shí)別。因此,利用表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)檢測(cè)茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥的最低檢測(cè)濃度能夠達(dá)到 1.0 mg/L 以下。762 cm-1處特征峰明顯,沒(méi)有重疊峰的影響,選用該特征峰的強(qiáng)度制定標(biāo)準(zhǔn)曲線,發(fā)現(xiàn)特征峰 762 cm-1 處的峰強(qiáng)度與樂(lè)果濃度分別在1~10、8~25 mg/L時(shí)具有良好的線性關(guān)系。濃度范圍為1~10 mg/L時(shí),線性方程為y=75.367x+1 657.5,r2=0.983 9(圖5-A);濃度范圍為8~25 mg/L時(shí),線性方程為y=36.389x+2 014.9,r2=0996 5(圖5-B)。
2.4準(zhǔn)確度與精確度分析
為了驗(yàn)證方法的準(zhǔn)確度,采用在茶葉提取液中添加樂(lè)果農(nóng)[CM(25]藥的方法,分別制備濃度為3、6、14 mg/L樂(lè)果溶液。對(duì)3個(gè)樣本采集表面增強(qiáng)拉曼光譜信號(hào),用上述建立的方法對(duì)3個(gè)樣本進(jìn)行預(yù)測(cè),將添加值與預(yù)測(cè)值進(jìn)行比較,結(jié)果見(jiàn)表2。本方法的預(yù)測(cè)結(jié)果與添加值基本一致,添加值與預(yù)測(cè)值的回收率為93.89%~96.36%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差為2.59%~4.87%,均小于5.00%,表明利用表面增強(qiáng)拉曼光譜法快速檢測(cè)茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留是可行的。
3結(jié)論與討論
研究采用快速前處理和表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)檢測(cè)干茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留,建立干茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留的快速檢測(cè)分析方法,確定樂(lè)果農(nóng)藥的7個(gè)拉曼特征峰:762、902、1 050、
1 160、1 210、1 310、1 653 cm-1。該方法檢測(cè)茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥的最低濃度能達(dá)到1.0 mg/L以下。以762 cm-1處的拉曼峰強(qiáng)度建立茶葉中樂(lè)果農(nóng)藥殘留檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)曲線,低濃度范圍(1~10 mg/L)的線性方程為y=75.367x+1 657.5,r2=0.983 9,高濃度范圍(8~25 mg/L)的線性方程為y=36.389x+2 014.9,r2=0.996 5。用3個(gè)樣本對(duì)方法的準(zhǔn)確性進(jìn)行驗(yàn)證,結(jié)果顯示,本方法的預(yù)測(cè)結(jié)果與添加值基本一致,回收率為93.89%~ 96.36%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)差為2.59%~487%,均小于5.00%,說(shuō)明采用該方法檢測(cè)茶葉中的樂(lè)果農(nóng)藥殘留是準(zhǔn)確可靠的。該方法前處理簡(jiǎn)單,耗時(shí)短,整個(gè)過(guò)程在 15 min 內(nèi)完成,為茶葉大規(guī)模生產(chǎn)的農(nóng)藥殘留快速檢測(cè)方案的建立提供了技術(shù)支持。
參考文獻(xiàn):
[1]歐陽(yáng)雨. 樂(lè)果涂膜表面增強(qiáng)拉曼光譜研究[J]. 分析測(cè)試學(xué)報(bào),2012,31(8):996-1000.
[2]吉芳英,黎司,虞丹尼,等. 氧化樂(lè)果的振動(dòng)光譜及其表面增強(qiáng)拉曼散射研究[J]. 分析化學(xué),2010,38(8):1127-1132.
[3]Ramírez R A,Gallo O A F,Hoyos O D E,et al. QuEChERS GC-MS validation and monitoring of pesticide residues in different foods in the tomato classification group[J]. Food Chemistry,2014,158:153-161.
[4]Wongsa N,Burakham R. A simple solid-phase extraction coupled to high-performance liquid chromatography-UV detection for quantification of pyrethroid residues in fruits and vegetables[J]. Food Analytical Methods,2012,5(4):849-855.
[5]Müller C,David L,Chi V,et al. Detection of thiabendazole applied on citrus fruits and bananas using surface enhanced raman scattering[J]. Food Chemistry,2014,145:814-820.
[6]Wijaya W,Pang S,Labuza T P,et al. Rapid detection of acetamiprid in foods using surface-enhanced raman spectroscopy (SERS)[J]. Journal of Food Science,2014,79(4):743-747.
[7]He L,Chen T,Labuza T P. Recovery and quantitative detection of thiabendazole on apples using a surface swab capture method followed by surface-enhanced raman spectroscopy[J]. Food Chemistry,2014,148:42-46.
[8]Li X Z,Zhang S,Yu Z,et al. Surface-enhanced raman spectroscopic analysis of phorate and fenthion pesticide in apple skin using silver nanoparticles[J]. Applied Spectroscopy,2014,68(4):483-487.
[9]Kim M,Kim M,Lee C,et al. Surface-enhanced raman spectroscopy of benzimidazolic fungicides:benzimidazole and thiabendazole[J]. Bulletin of the Korean Chemical Society,2009,30(12):2930-2934.
[10]張萍,鄭大威,劉晶,等. 基于表面增強(qiáng)拉曼光譜技術(shù)的豆芽6-BA殘留快速檢測(cè)方法[J]. 光譜學(xué)與光譜分析,2012,32(5):1266-1269.
[11]Shende C,Inscore F,Sengupta A,et al. Rapid extraction and detection of trace chlorpyrifos-methyl in orange juice by surface-enhanced raman spectroscopy[J]. Sensing and Instrumentation for Food Quality and Safety,2010,4(3-4):101-107.
[12]陳永堅(jiān),馮尚源,郭小林,等. 茶葉表面增強(qiáng)拉曼光譜的初步研究[J]. 光譜學(xué)與光譜分析,2012,32(10):2702-2705.
[13]Kim H J,Lee C J,Karim M R,et al. Surface-enhanced raman spectroscopy of omethoate adsorbed on silver surface[J]. Spectrochimica Acta Part A:Molecular and Biomolecular Spectroscopy,2011,78(1):179-184.