間接ELISA在Iss蛋白檢測中的優化改進

樊琛　紀秋峰　王會

摘要：為改善間接ELISA在Iss蛋白檢測中的應用，將重組菌經IPTG誘導、分離，獲得Iss融合蛋白。免疫雛雞獲得抗血清進行間接ELISA檢測。采用甲醇處理、紫外線照射、調節反應物濃度、干燥等方法調節間接ELISA反應條件。結果表明，在封閉之前，先將包被板紫外線照射24 h，包被液包被蛋白或細菌37 ℃ 2 h后4 ℃過夜，56 ℃干燥 12 h，可改善間接ELISA檢測結果。

關鍵詞：Iss蛋白；抗血清；ELISA檢測；大腸桿菌；優化條件

中圖分類號： TS207文獻標志碼： A

文章編號：1002-1302（2017）14-0150-02

大腸埃希氏菌（Escherichia coli）通常被稱為大腸桿菌，屬于腸道桿菌中的一種，當飼養環境差、通風不好、營養缺乏或應激等情況出現時會誘發畜禽大腸桿菌病，為人獸共患且危害食品安全[1]。Iss蛋白為大腸桿菌毒力島的iss基因（increased serum survival gene）所編碼的外膜蛋白，可增強大腸桿菌在血清中的存活能力，是大腸桿菌的重要毒力因子之一[2]。通過間接酶聯免疫吸附測定法（enzyme-linked immunosorbent assay，簡稱ELISA）檢測細菌表面Iss蛋白的表達水平可能反映細菌對血清補體的抗性強弱。ELISA通過檢測抗原、抗體及半抗原，在實際應用中可用作疾病臨床診斷與監察、食品中有害成分殘留的測定等，具有廣闊的發展前景[3-4]。但是ELISA的影響因素較多，須進行檢測條件的摸索、優化。為改善間接ELISA在大腸桿菌Iss蛋白檢測中的應用，將重組菌經過異丙基-β-D-硫代半乳糖苷（isopropy-β-D-thiogalactoside，簡稱IPTG）誘導、分離，獲得Iss融合蛋白；免疫雛雞獲得抗血清進行間接ELISA檢測；采用甲醇處理、紫外線照射、調節反應物濃度、干燥等方法，進行ELISA的條件優化，為食品中大腸桿菌Iss蛋白的檢測提供試驗依據。

1材料與方法

1.1材料

1.1.1菌株來源

O2為Iss+致病性大腸桿菌，由東北農業大學動物醫學院贈送，聊城大學食品安全教研室保存；pGEX-6p-1-iss/BL21（DE3）PlysS為重組菌，由東北農業大學動物醫學院贈送，聊城大學食品安全教研室保存；BL21為感受態細菌，購自濟南科賽特科技有限公司。

1.1.2雛雞

1日齡無特定病原體（specific pathogen free，簡稱SPF）雛雞購于山東省聊城市陽谷縣養雞場。

1.1.3主要試劑

LB液體培養基、IPTG、麥康凱培養基、伊紅美籃培養基，均購自青島海博生物技術有限公司；兔抗雞IgY+[KG-*3]+（IgG）（H+L）、四甲基聯苯胺（tetramethylbenzidine，簡稱TMB）染色液，均購自Beyotime Biotechnology公司；脫脂奶粉，購自伊利乳業有限責任公司；其他試劑為分析純。

1.2方法

1.2.1Iss融合蛋白誘導表達與檢測

挑取活化的重組菌落接于含氨芐青霉素（ampicillin，簡稱Amp）50 μg/mL的LB液體培養基，37 ℃搖床培養6 h。各取0.2 mL菌液接于20 mL LB液體培養基（體積比 1 ∶[KG-*3]100），37 ℃搖床培養3 h，測D600 nm值。各取2 mL菌液作誘導前對照，其他培養物加IPTG（終濃度分別為0.1、0.2、0.5 mmol/L），37 ℃搖床培養3 h，測D600 nm值[5]。各取2 mL菌液為誘導后樣品，與誘導前樣品均于12 000 r/min離心2～5 min，棄上清，磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，簡稱PBS）洗滌2次，加入6×十二烷基硫酸鈉（sodium dodecyl sulfate，簡稱SDS）上樣緩沖液，混勻，100 ℃煮沸5～10 min，-20 ℃保存，用于點樣。將誘導后的樣品進行十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳（sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis，簡稱SDS-PAGE），電泳結束后卸下膠板，切去溴酚藍條帶，將膠放于考馬斯亮藍染色液染色1 h，脫色觀察。

1.2.2融合蛋白的純化

將誘導后的樣品進行SDS-PAGE，電泳結束后卸下膠板，切去溴酚藍條帶，將膠放于去離子水中漂洗；再用PBS洗2遍，用0.25 mol/L KCl溶液染色 2～3 min，直至看見清晰條帶；切下來放于1.5 mL離心管中，稱質量；-20 ℃凍融，研磨至碎，凝膠與PBS按1 ∶[KG-*3]3的比例，將凝膠融化放于1.5 mL離心管中，5 000 r/min離心取上清，經SDS-PAGE鑒定。按公式計算蛋白濃度：

1.2.3抗血清的制備

取滅過菌的2支試管，分別標記對照組、試驗組，對照組加入PBS、弗氏佐劑，試驗組加入融合蛋白、弗氏佐劑，乳化[6]。將1日齡SPF雛雞飼養14 d，分為空白、對照、試驗3組，每組10羽。空白組不作注射，對照組及試驗組每隔1周免疫1次，第4次免疫后5 d取血。首次免疫佐劑為完全弗氏佐劑，第2次到第4次免疫佐劑為不完全弗氏佐劑。

1.2.4間接ELISA檢測條件的優化

在實驗室常規間接ELISA檢測方法的基礎上，對反應條件進行優化，具體條件如表1所示。

由圖1可見，IPTG濃度為0.1 mmol/L時獲得的帶較寬，濃度為0.2、0.5 mmol/L時也有目的條帶，但獲得的目的條帶比濃度為0.1 mmol/L時窄。表明IPTG濃度為0.1 mmol/L時，表達量最大。因此，選取0.1 mmol/L作為IPTG的誘導濃度。

2.2融合蛋白的純化

經切膠純化，取5 μL上清液，進行SDS-PAGE鑒定，在約36 ku處有特異條帶（圖2）。

[FK（W13][TPFC22.tif]

由圖2可見，在36 ku處，有符合目的條帶大小的特異條帶，且為單一條帶。表明通過純化獲得目的蛋白并且無雜蛋白。通過吸光度法檢測在280、260 nm處的吸光值分別為 0.40、0.45，按蛋白濃度（mg/mL）=1.55×D280nm-0.76×D260 nm計算，得蛋白濃度為0.278 mg/mL。

2.3間接ELISA檢測的優化

經96孔板預處理、包被條件、反應物濃度等方面的調節，計算ΔD450 nm=（D450 nm，陽性血清-D450 nm，空白）-（D450 nm，陰性血清-D450 nm，空白）。與常規間接ELISA檢測ΔD450 nm相比，結果以優化試驗組ΔD450 nm與常規方法組ΔD450 nm之差，即ΔΔD450 nm表示。結果表明，甲醇處理、洗滌次數、抗原濃度、一抗濃度、二抗濃度、稀釋液種類，均對ΔΔD450 nm值無明顯影響；紫外線照射包被板24 h、包被后56 ℃干燥12 h，對ΔΔD450 nm有明顯影響（表2）。

由表2可見，紫外線照射包被板24 h，包被后先56 ℃干燥12 h再封閉，能明顯升高ΔD450 nm差值；改變反應物濃度、甲醇處理、PBS稀釋，對結果影響不明顯。

優化條件：96孔板紫外線照射24 h，包被液包被蛋白或細菌37 ℃ 2 h后4℃過夜，56 ℃干燥12 h，封閉3 h，一抗稀釋100倍，37 ℃溫浴3 h，二抗稀釋1 000倍，37 ℃溫浴 2 h，加入顯色液25 ℃放置1 h。

有研究者認為，iss基因編碼的外膜蛋白Iss可能通過調節細胞表面上對補體膜攻擊復合體敏感的位點，導致表面排斥，使菌株具有抗補體溶菌作用的能力，增強E. coli血清抗性[7]。而補體抗性又與毒力高度相關，是重要的致病因素[8]。多數研究者認為，Iss蛋白是結合在細胞表面的[7]，因此，本試驗沒有將菌體裂解而是采用全菌作為抗原包被，進行間接ELISA檢測。莊翹楚等在試驗中，采用包被抗體、二抗濃度、改變包被液、改變封閉液、調節封閉時間、調節TMB底物作用時間、改變單一變量進行ELISA的條件優化。如在包被抗體和二抗工作濃度、封閉液、底物和作用時間都一致的情況下，采用不同的包被液進行包被，以研究不同包被液對試驗結果的影響。確定最佳條件：包被抗體1 ∶[KG-*3]1 280、二抗 1 ∶[KG-*3]320、N-溴代琥珀酰亞胺（N-bromobutanimide，簡稱NBS）作為包被液、質量分數為5%的BSA-PBS作為封閉液、封閉30 min、顯色30 min[9]。Johnson等對ELISA檢測中的常

見問題及解決方法進行了研究[10]。ELISA檢測的影響因素較多，如標本、試劑、操作等[10]，這些因素導致了ELISA檢測中的常見問題。本試驗采用單因素試驗對ELISA進行條件優化，結果表明，紫外線照射、干燥處理可明顯升高ΔD450 nm。推測經紫外線照射、干燥處理增強了ELISA反應中抗原和/或細菌菌體與包被板的結合，使ΔD450 nm值升高。

3結論

優化條件為96孔板紫外線照射24 h，包被液包被蛋白或細菌37 ℃ 2 h后4 ℃過夜，56 ℃干燥12 h，封閉3 h，一抗稀釋100倍，37 ℃溫浴3 h，二抗稀釋1 000倍，37 ℃溫浴2 h，加入顯色液25 ℃放置1 h，檢測D450 nm。

參考文獻：

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