魔芋ACE抑制肽的分離純化及活性檢測

毛跟年，周亞麗，賀磊，曹晴，王勇,2，李彥軍,2

1(陜西科技大學 食品與生物工程學院， 陜西 西安，710021)2(陜西農產品加工技術研究院，陜西 西安，710021)

魔芋ACE抑制肽的分離純化及活性檢測

毛跟年1*，周亞麗1，賀磊1，曹晴1，王勇1,2，李彥軍1,2

1(陜西科技大學 食品與生物工程學院， 陜西 西安，710021)2(陜西農產品加工技術研究院，陜西 西安，710021)

利用堿溶酸沉法從魔芋飛粉中提取魔芋蛋白，以魔芋蛋白為原料，利用堿性蛋白酶酶解制備魔芋ACE抑制肽粗品；其粗品通過超濾法除去大分子雜質，再經過Sephadex G-15柱層析分離，最后經過RP-HPLC純化后得到純度較高的魔芋ACE抑制肽，并且對超濾膜進行選擇、Sephadex G-15柱層析分離進行條件優化；以馬尿酸含量為指標，紫外分光光度法測其活性。實驗結果表明：選擇規格為1 kDa超濾膜；Sephadex G-15最佳分離條件為濃度為120 mg/mL、流速為0.8 mL/min、上樣量為1.0 mL；經過RP-HPLC純化后得到魔芋ACE抑制肽抑制率可達到92.85%。空白液中Hip含量為22.50 mg,反應液中Hip含量為9.22 mg，說明魔芋ACE抑制肽抑制活性較好。

魔芋蛋白；ACE抑制肽；分離純化；活性

ACE抑制肽(angiotensin-converting enzyme inhibition，ACEI)是指血管緊張素轉化酶抑制劑。ACEI對 ACE 活性區域結合能力較強，共同特點是與 ACE 活性部位的鋅離子結合的能力比AngI或緩激肽更強，而且結合上之后不易從 ACE 結合區釋放，從而阻礙ACE催化AngI 水解成 AngⅡ及催化舒緩激肽水解成為失活片段2個過程，起到降血壓的作用。與化學降血壓藥比較，具有分子質量小，免消化、直接吸收等特點，更具有優勢和廣闊的市場前景[1]。

目前，已經從燕麥蛋白、玉米醇溶蛋白、牦牛乳酪蛋白[2-4]等多種蛋白中提取出ACE抑制肽，并且通過多種分離純化方法得到高純度ACE抑制肽。目前廣泛采用超濾、離子交換層析、葡聚糖凝膠層析、RP-HPLC、毛細管電泳法、大孔樹脂吸附法等，王雙等[5]應用大孔吸附樹脂 DA201-C、HPLC、SephadexG-15凝膠對燕麥ACE抑制肽進行分離純化，得到純度較高ACE抑制肽；王振斌[6]通過超濾法分離芝麻蛋白ACE抑制肽，結果表明分子質量分布為 3～10 kDa 和小于3 kDa 酶解液抑制活性較好。目前，已有研究者利用魔芋飛粉為原料，通過酶解法提取和柱層析法分離純化制備出魔芋ACE抑制肽，但是其他方面有待于研究。

本文利用前期工作中優化地制備出了魔芋ACE抑制肽粗品，研究了魔芋ACE抑制肽超濾、Sephadex G-15和RP-HPLC的分離純化工藝，并采用紫外分光光度法對其活性進行檢測。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 原料與試劑

魔芋飛粉，購于陜西省鎮安縣雪櫻花魔芋公司。堿性蛋白酶(酶活力≥20 萬U/g)，上海源葉生物技術有限公司；Sephadex G-15凝膠，上海源葉生物技術有限公司；HHL(馬尿酰-組氨酰-亮氨酸)，Sigma公司；ACE(血管緊張素轉化酶)Sigma公司；Hip(馬尿酸)標準品，上海源葉生物技術有限公司；NaOH、硼酸、硼砂、HCl、乙腈等，均為分析純。

1.1.2 儀器與設備

TG16-WS型臺式高速離心機，湖南湘儀實驗室儀器開發有限公司；YP802N型電子天平，上海精密科學儀器有限公司；HH-2型數顯恒溫水浴鍋，國華電器有限公司；PHS-3C型精密pH計，深圳市同奧科技有限公司；UV-5100紫外分光光度計,上海元析儀器有限公司;Waters制備型液相，上海科哲生化技術有限公司；超濾系統，美國Pellicon；自動部分收集器，上海精科實業有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 魔芋ACE抑制肽的制備

1.2.1.1 魔芋蛋白的提取

稱取8 g魔芋飛粉，加入280 mL純凈水，攪拌均勻，用1.0 mol/L NaOH溶液調節飛粉液pH值至10，放入設定溫度為50 ℃水浴鍋中保溫反應50 min，期間用1.0 mol/L的NaOH調節，保持飛粉液的pH不變。之后4 000 r/min離心15 min，收集上清液，用1.0 mol/LHCl液將上清液調至魔芋蛋白等電點pH 3.8，靜置30 min，再在4 000 r/min下離心15 min，棄去上清液收集沉淀，用5倍的水對沉淀進行3次水洗后收集沉淀。將得到的蛋白質沉淀在-60 ℃下冷凍干燥24 h，即得魔芋蛋白質。根據公式得魔芋蛋白的平均提取率為60%。蛋白質提取率計算公式為：

蛋白質提取率/%=(提取的蛋白質含量/飛粉中總蛋白的含量)×100

(1)

1.2.1.2 魔芋ACE抑制肽的制備工藝

配制5份相同濃度魔芋蛋白質溶液，放在恒溫磁力攪拌器上，分別加入一定量的堿性蛋白酶、復合蛋白酶、膠原蛋白酶、菠蘿蛋白酶、風味蛋白酶進行酶解，以ACE抑制率和水解度為指標，得出堿性蛋白酶為最佳用酶。堿性蛋白酶的酶解條件為pH 10、底物濃度3%、加酶量5 000 U/g、酶解溫度46 ℃，酶解時間3 h。然后高溫條件下滅酶10 min,待酶解液冷卻至室溫，將酶解液pH值調至魔芋蛋白等電點，在10 000 r/min下離心20 min后收集上清液，測其ACE抑制率。5種蛋白的ACE抑制率和水解度測定結果見圖1。

A-菠蘿蛋白酶；B-堿性蛋白酶；C-風味蛋白酶；D-復合蛋白酶；E-膠原蛋白酶圖1 不同蛋白酶酶解后水解度和ACE抑制率測定結果Fig.1 Hydrolysis degree and ACE inhibition rate after enzymatic hydrolysis of different proteases

1.2.1.3 ACE抑制率的測定[7]

取75 μL、HHL(馬尿酰-組氨酰-亮氨酸)與25 μL、ACE抑制劑(多肽液)充分混勻。在37 ℃水浴鍋中溫育5 min,加入25 μL、25 mu/mL ACE硼酸鹽溶液，在37 ℃水浴鍋中反應40 min。結束后加入200 μL、1.0 mol/L HCl液破壞反應環境，終止反應進程。然后于各試管中加入乙酸乙酯1.7 mL，使其混勻；吸取1.2 mL乙酸乙酯層于另一試管中，放入100 ℃烘箱中，揮發溶劑40 min。取出冷卻后加入去離子水3 mL，混勻后在波長228 nm下測定其吸光度。

(2)

式中：A1,ACE抑制肽和ACE都存在溶液的吸光度值；A2,不加ACE抑制肽存在溶液的吸光度值；A3,ACE與HHL存在空白溶液的吸光度值。

1.2.2 超濾

超濾過程：將上述制備的魔芋蛋白酶解液用規格為10、5和1 kDa的超濾膜進行超濾，收集3種組分：Ⅰ(M<10 kDa)、Ⅱ(M<5 kDa)、Ⅲ(M<1 kDa)，各個組分經旋轉蒸發濃縮后，用真空冷凍干燥機進行干燥，再測各個組分的ACE抑制率，選出ACE抑制率最高的組分進行下一步分離純化。確定超濾膜：

以膜通量和 ACE 抑制率為參考指標對3種不同規格的超濾膜進行篩選，膜通量的計算公式如下

(3)

式中：V，透析液的體積，L；T，取樣時間，h；A，膜面積，m2。

1.2.3 Sephadex G-15柱層析

采用Sephadex G-15對超濾所得分子質量小于1 kDa的組分進一步進行分離，為了達到最好的分離效果，本實驗探討了上樣濃度、流速和上樣量對分離效果的影響。

將處理好的Sephadex G-15凝膠裝入1.6 cm×30 cm玻璃層析柱。洗脫劑為超純水，用自動部分收集器收集洗脫液，每管收集5.0 mL，結合每管在220 nm[8]處的吸光值，考察不同上樣濃度、流速和上樣量對分離效果的影響，確定最佳分離條件。將最佳分離條件下不同峰段收集的組分測ACE抑制率，ACE抑制率最高組分濃縮后冷凍干燥，進一步進行純化。

1.2.3.1 不同上樣濃度對分離效果的影響

上樣量為1.0 mL，控制流速為0.8 mL/min，設定不同上樣濃度為：80、120、160 mg/mL。考察不同上樣濃度對分離效果的影響，確定最適上樣濃度。

1.2.3.2 不同流速對分離效果的影響

上樣量為1.0 mL，控制上樣濃度為120 mg/mL，設定不同流速為：0.6、0.8、1.0 mL/min。考察不同流速對分離效果的影響，確定最適流速。

1.2.3.3 不同上樣量對分離效果的影響

流速為0.8 mL/min，控制上樣濃度為120 mg/mL，設定不同上樣量為：0.5、1.0、1.5 mL。考察不同上樣量對分離效果的影響，確定最適上樣量。

1.2.4 RP-HPLC

經Sephadex G-15分離后得到的ACE抑制率最高組分溶于水,配成20 mg/mL的溶液,利用RP-HPLC[9]進一步純化,收集各洗脫峰經真空旋轉蒸發濃縮、冷凍干燥后得到各分離組分,進行ACE抑制活性測定，抑制率最高組分測其體外抑制活性。

制備型高效液相Waters2489，色譜柱C18柱；檢測波長：220 nm；柱溫35℃；進樣量5 mL；樣品濃度：20 mg/mL；流速5 mL/min；洗脫條件：流動相A-乙腈，B-超純水，0～10 min:20%A+80%B、10～15 min:40%A+60%B、15～20min:20%A+80%B。

1.2.5 魔芋ACE抑制肽體外活性檢測

1.2.5.1 檢測波長的確定

用pH值為8.3的硼酸緩沖液配制5 mmol/L的HHL溶液,用超純水配制1 mmol/L的Hip,然后在190～350 nm波長處進行全波長掃描,確定Hip的檢測波長。由圖2可得到 Hip標準品溶液在波長228 nm 處有最大吸收峰。在228 nm 波長下測0.0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5 mg/mL Hip標準品溶液的吸光度，以吸光度為縱坐標，以濃度為橫坐標繪制標準曲線。得到Hip標準品的曲線方程為：y=0.222 6x-0.001 5，相關系數為0.999 1，線性關系良好。由此可得出反應液和空白液中Hip濃度，并計算出含量，檢測出魔芋ACE抑制肽的抑制活性。

圖2 Hip檢測波長的確定Fig.2 Hip detection wavelength determined

1.2.5.2 魔芋ACE抑制肽體外活性檢測

采用紫外分光光度法檢測魔芋ACE抑制肽的體外活性。

反應液：150 μL HHL溶液,加入50 μL經分離純化后魔芋ACE抑制肽溶液,在37 ℃下溫育5 min后加入50 μL ACE溶液，溶液開始反應,在37 ℃條件下反應40 min后，加入200 μL、1.0 mol/L HCl中止反應,得到反應液；空白對照液：用50 μL 硼酸鹽緩沖液替換魔芋ACE抑制肽溶液制備反應液，即空白對照液。在228 nm檢測反應液和空白對照液的吸光度值，并計算它們各自的含量。

2 結果與分析

2.1 魔芋ACE抑制肽的分離純化

2.1.1 超濾

2.1.1.1 超濾膜的確定

由圖3、圖4可知，用截留分子質量分別為10、5、1 kDa 3種超濾膜進行分離，膜通量的大小隨著截留分子質量的增大而增加，當超濾膜的截留分子質量達到 10 kDa時，此時的膜通量達到最大值 7.5 L/(m2·h)。相反，ACE抑制率的大小則隨著截留分子量的增大呈現出減小的趨勢，當超濾膜截留分子質量大小為 1 KDa 時，ACE 抑制率達到最大值 85.30%。ACE抑制肽的結構較接近，分子質量較小，所以選擇截留分子質量的大小為1 kDa的超濾膜。通過規格為1 kDa的超濾膜超濾后，將得到組分冷凍干燥，分子質量大于1 kDa和小于1 kDa 2種組分比例分別是25.10%和74.90%。

圖3 超濾膜分子質量大小對膜通量的影響Fig.3 The molecular weight of ultrafiltration membrane flux membrane

圖4 超濾膜分子質量大小對 ACE 抑制率的影響Fig.4 Ultrafiltration membrane molecular size of ACE inhibition rate

2.1.2 Sephadex G-15柱層析

樣品濃度對分離效果有較大影響，由圖5可知，當上樣濃度為80 mg/mL和120 mg/mL時可得到3個洗脫峰，當濃度達到160 mg/mL時，得到,2個洗脫峰。但是上樣濃度為80 mg/mL和160 mg/mL時，出現拖尾，并且分離效果不明顯。這可能是因為樣品濃度過大會導致黏度增大，而使層析分辨率下降，樣品濃度過小分子質量黏度減小，流動性較大，導致洗脫峰分不開。因此，上樣濃度選用120 mg/mL。

A-濃度為 80mg/mL；B-濃度為120mg/mL；C-濃度為160 mg/mL圖5 樣品濃度對分離效果的影響Fig.5 Sample concentration effects on the separation

合適的流速是凝膠柱層析分離的重要條件。由圖6可知，當洗脫流速從0.6 mL/min增加到0.8 mL/min時，分離效果明顯，3個洗脫峰隨流速增大而分離效果較好。當流速達到1.0mL/min時，僅有2個洗脫峰且峰形不佳。流速過大時，ACE抑制肽不能得到較好分離。因為凝膠柱層析的分離主要取決于分子擴散進入凝膠的機會，流速過快一些分子來不及分開就被洗脫出來，速度較小時被分離的組分因擴散又混合在一起，因此，選擇洗脫流速為 0.8 mL/min為分離最佳流速。

A-流速為0.6mL/min；B-流速為0.8mL/min；C-流速為1.0mL/min圖6 流速對分離效果的影響Fig.6 Flow rate effects on the separation

上樣量一般為凝膠床的1%～4%，上樣量也直接影響分離效果。由圖7可知，上樣量0.5 mL時，可得到兩個洗脫峰，出現拖尾現象，上樣量太少、實驗效率低。當上樣量為1.5 mL時，洗脫峰明顯的僅有1個，而且峰形較寬，這是因為凝膠顆粒的吸附容量已經達到飽和。當上樣量為1 mL時，出現3個洗脫峰且峰形較好。由峰形和洗脫峰2個指標考慮，最佳上樣量為1 mL。

A-上樣量為0.5 mL；B-上樣量為1.0 mL；C-上樣量為1.5 mL圖7 上樣量對分離效果的影響Fig.7 Sample volume effects on the separation

由圖7-B可見，經過Sephadex G-15凝膠柱層析分離后，分子質量為小于1 kDa的組分被分離為1、2和3三個組分。分別收集這3個組分冷凍干燥，并進行ACE抑制率的測定，其中組分2的抑制活性較大，可達到90.20%，對該組分進一步進行純化。

2.1.3 RP-HPLC

由圖8可知，在RP-HPLC的C18柱上進一步純化分離出2個主要肽峰，純化得到的的2個主要肽峰1和2有較好的分離度,分別收集這2個肽峰,冷凍干燥后測定各峰ACE抑制率，其中峰2抑制率最高,其ACE抑制率為92.85%。并對組分2進行進一步的抑制活性檢測。

圖8 RP-HPLC純化魔芋ACE抑制肽圖譜Fig.8 RP-HPLC purifiedkonjac ACE inhibitory peptides Atlas

2.2 魔芋ACE抑制肽體外活性檢測

以HHL為AngI的模擬底物，ACE可催化分解HHL生成馬尿酸，加入ACE抑制肽后，與ACE活性區域作用,ACE活性受到抑制,于是阻止了ACE對HHL的催化分解作用,導致馬尿酸的生成量減少。如圖9，空白液中的馬尿酸含量遠遠大于反應液中馬尿酸的含量，其含量大約是反應液的3倍。說明魔芋ACE抑制肽對HHL分解產物Hip具有抑制作用，魔芋ACE抑制肽活性較好。

圖9 魔芋ACE抑制肽抑制活性檢測結果Fig. Konjac ACE inhibitory peptide inhibitory activity test results

3 小結

本研究將魔芋飛粉通過堿溶酸沉法提取魔芋蛋白，以魔芋蛋白為原料經過堿性蛋白酶酶解，得到魔芋ACE抑制肽粗品；通過超濾除去大分子雜質，分子質量為1 kDa的超濾膜分離效果較好；然后用Sephadex G-15凝膠柱層析進一步分離，將分子質量小于1 kDa的多肽區段分離為1、2和3三個組分，測3個組分ACE抑制率，其中組分2的抑制活性最高達到90.20%；最后經過RP-HPLC純化，得到兩個肽峰1和2，其中組分2的抑制活性最高，達到92.85%。利用紫外分光光度法測純品的抑制活性，魔芋ACE抑制肽對HHL分解產物Hip具有較強抑制作用，說明魔芋ACE抑制肽活性較好。本研究以魔芋蛋白質為原料，經過分離純化工藝得到純度較高的魔芋ACE抑制肽，既拓寬了魔芋ACE抑制肽的分離純化方法，也為魔芋飛粉的開發利用及生產高附加值產品開辟了一條新途。

[1] 李慧,呂瑩,丁軻,等.食物源降血壓肽的制備與功能評價[J].中國食物與營養,2015,21(1):26-30.

[2] 耿靜靜.超聲波輔助酶法制備燕麥蛋白ACE抑制肽的研究[D]鎮江：江蘇大學，2010.

[3] 劉國志，劉生毅，王亞林，等.玉米醇溶蛋白酶解制備ACE抑制肽的研究[J].食品研究與開發，2006,27(2)：138-141.

[4] 宋禮，孫文靜，馮丹，等.牦牛乳酪蛋白降血壓肽制備工藝及分離純化研究[J].食品工業科技，2015,36(3)：223-226.

[5] 王雙，王昌濤，韓揚.燕麥 ACE 抑制肽的分離純化及其活性研究[J].食品科學，2010，31(24): 222-229.

[6] 王振斌，裴娟娟，閆景坤，等.超濾精制對芝麻蛋白水解液 ACE 抑制活性和抗氧化活性的影響[J].中國糧油學報，2015，30(8): 58-63.

[7] CUSHMAN D W, CHEUNG H S. Spectrophotometric assay and properties of angiotensin-converting of rabbit lung [J]. Biochemical Pharmacology, 1971, 20:1 637-1 648.

[8] WANG Bin, LI Li, CHI Changfeng, et al. Purification and characterization of a novel antioxidant peptide derived from blue mussel (Mytilusedxilis) protein hydrolysate[J].Food Chemistry,2013,138(1):1 713-1 719.

[9] SAMARAKOON K W，LEE J H，KANG M C，et al. Purification and identification of novel angiotensin-I converting enzyme (ACE ) inhibitory peptides from cultured marine microalgae (Nannochloropsisoculata) protein hydrolysate[J].Journal of Applied Phycology，2013，25(5) :1 595-1 606.

Separation and purification of konjac ACE inhibitory peptides and active substance detection

MAO Gen-nian1*,ZHOU Ya-li1, HE Lei1, CAO Qing1，WANG Yong1,2, LI Yan-jun1,2

(School of Food and Biological Engineering ,Shaanxi Unversity of Science & Technology, Xi’an 710021,China)2(Shaanxi Research Institute of Agricultural Products Processing Technology,Xi'an 710021,China)

Protein was extracted from konjac powder by alkali extraction and acid precipitation method; konjac protein is material, konjac ACE inhibitory peptides crude were prepared by alkaline hydrolysis protease on konjac protein; its crude macromolecular impurities were removed by ultrafiltration, Sephadex G-15 column chromatography, and RP-HPLC purification. Highly purified konjac ACE inhibitory peptide was obtained. The ultrafiltration, Sephadex G-15 column chromatographic separation conditions were optimized; hippuric acid was used as the index and Spectrophotometric was used to determine the activity. The results showed that an ultrafiltration membrane has a molecular weight of 1 kDa, The optimal separation condition for Sephadex G-15 was 120 mg/mL, flow rate was 0.8 mL/min, sample volume was 1.0 mL. After RP-HPLC purified, konjac ACE inhibitory peptide inhibition rate was reached to 92.85%. Blank solution Hip content was 22.50 mg, the reaction mixture Hip content was 9.22 mg, which indicates that konjac ACE inhibitory peptide inhibitory activity was better.

konjac protein; ACE inhibitory peptides; separation and purification;activity

學士，教授(本文通訊作者,E-mail：maogn@sust.edu.cn)。

陜西省科技攻關項目(2016NY-167)；西安市科技計劃項目(NC1405(3))；陜西省農業科技創新與攻關項目(2015NY010、2016NY-142)；陜西省協同創新計劃項目(2016XT-21)

2016-09-28，改回日期：2016-11-23

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201706027