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河內白曲霉酸性α-淀粉酶高產菌株的誘變選育*

2017-06-20 10:01:20張玉然張曉云郭蘭英張海林
生物學通報 2017年7期
關鍵詞:高產

張玉然 張曉云 郭蘭英 張海林

(1濟寧醫學院生物科學學院 山東日照 276826 2山東徐旭酒曲有限公司 山東濟寧 272000)

酸性α-淀粉酶屬于液化酶(α-淀粉酶)的一種,可在低pH值條件下隨機切斷淀粉分子內的α-1,4糖苷鍵,迅速將其降解為糊精、寡糖等小分子[1-2]。 酸性 α-淀粉酶廣泛應用于釀酒、制糖、紡織、飼料、造紙等行業,具有良好的社會和經濟效益[3]。

在淀粉質原料的水解制糖工藝中,由于α-淀粉酶和糖化酶最適反應pH值的差異,淀粉質原料液化后進入糖化前需加入大量酸試劑調低pH值。開發耐酸性的α-淀粉酶,使其最適反應pH值與糖化酶相近,可節省大量酸試劑的消耗,節約成本[4-5]。

目前,研究者對黑曲霉和枯草芽孢桿菌液態發酵生產酸性α-淀粉酶的研究較多,并通過多種方法選育獲得了高產菌株,廣泛應用于醫藥、紡織和環境治理等領域[6-8]。 但在釀酒行業,由于白酒香味和口感的特殊需求,常利用河內白曲霉(Hanoiwhite starter)固態發酵生產酸性α-淀粉酶,并將生產出的含酸性α-淀粉酶的固態白曲直接應用于白酒生產。目前研究者對該菌株的研究較少,固態發酵的酸性α-淀粉酶酶活力普遍較低,篩選具有高產酸性α-淀粉酶能力的河內白曲霉勢在必行。

本研究以河內白曲霉為出發菌株,采用不同濃度的DES誘變處理萌發過夜的河內白曲霉孢子,后根據透明圈法篩選高產突變株,進一步搖瓶復篩,以期獲得產量高、穩定性好的河內白曲霉突變株。

1 材料與方法

1.1 材料

1)菌種。河內白曲霉為實驗室保存。

2)培養基。

①改良的PDA培養基:土豆浸出汁 30%,瓊脂 2%,自然pH值。②篩選培養基:玉米淀粉2%,酵母 0.5%,KCl 0.1%,KH2PO40.03%,MgSO4·7H2O 0.05%,FeSO4·7H2O 0.0002%,瓊脂 2%,pH 6.5~7.0。③固體發酵培養基:麩皮12.5 g,自來水12.5 mL,置于500 mL三角燒瓶。

1.2 菌株的誘變篩選

1.2.1 孢子懸液的制備 于麥芽汁斜面培養基中刮取孢子,加入含25 mL 2 g/L葡萄糖的三角瓶中,混勻打散,稀釋至孢子數為107CFU/mL,于室溫下靜置萌發過夜。

1.2.2 DES誘變及初篩 取5 mL過夜萌發的孢子懸液,分別加入DES至終濃度為0%、1%、3%、5%、6%、7%、9%、12%,混勻,30℃,220 r/min 振蕩處理20 min后,各組分別加入等體積的25%Na2S2O3溶液終止反應。將誘變處理后的孢子懸液適當稀釋,涂布于篩選培養基,35℃培養3~4 d,以未經誘變處理的出發菌株為對照,計算致死率。挑選長勢良好、透明圈與菌落直徑比值(HC)較大的單菌落進行復篩。

1.2.3 搖瓶復篩 挑取2環孢子,接種于固體發酵培養基,35℃培養,分別于第 24 h、36 h、48 h各翻曲一次,測定不同突變株酸性α-淀粉酶的酶活力。

1.2.4 傳代培養 將誘變篩選出的突變株連續傳代培養,測定各批次酸性α-淀粉酶酶活力。

1.3 酶活力測定 方法參照相關參考文獻[9]進行。

2 結果與分析

2.1 不同濃度DES的致死率 誘變育種是獲得高產菌株的常用方法[10-11],將誘變致死率控制在75%~85%時誘變效果較佳,易獲得高產突變菌。利用不同濃度DES處理河內白曲霉孢子20 min后的致死率曲線如圖1所示。由圖1可知,使用1%DES誘變處理20 min時,對河內白曲霉的致死率為84.3%。

圖1 不同濃度DES誘變河內白曲霉的致死率

2.2 高產酸性α-淀粉酶突變株的初篩 將1%DES誘變處理20 min的河內白曲霉孢子懸液適當稀釋涂布,培養觀察并計算HC比值。從502株突變株中挑選出HC比值較高的突變株列于表1,可知突變株Hanoi white starter 4的HC比值最大,且長勢良好。

表1 酸性α-淀粉酶高產突變株的初篩

2.3 高產酸性α-淀粉酶突變株的搖瓶復篩 對表1中初篩獲得的突變株進行搖瓶復篩,各突變株發酵產酸性α-淀粉酶的能力如表2所示。可知,Hanoiwhite starter 4發酵酶活力最高,達20.8 U/g,較出發菌株提高了61.2%,這也與其HC比值最高相對應。

表2 高產酸性α-淀粉酶突變株的復篩

2.4 突變株Hanoi white starter 4的遺傳穩定性將高產酸性α-淀粉酶的突變株Hanoi white starter 4于麩皮固體發酵培養基中連續傳代培養6次,測定每批次的酸性α-淀粉酶酶活力,結果如圖2所示。可知,該菌株產酸性α-淀粉酶的遺傳穩定性良好,可用于后續工業放大生產。

圖2 高產酸性α-淀粉酶突變株的遺傳穩定性

3 結論

在釀酒行業,鑒于酒品質的高要求,該行業常使用河內白曲霉固態發酵生產酸性α-淀粉酶,為使淀粉質原料水解制糖工藝中α-淀粉酶和糖化酶最適反應pH值相近,節省大量酸試劑的消耗,節約成本,篩選耐酸性的α-淀粉酶十分必要。本研究以河內白曲霉為出發菌株,采用不同濃度DES誘變處理萌發的河內白曲霉孢子,根據透明圈大小初篩、搖瓶復篩高產酸性α-淀粉酶的突變株。研究結果表明,將萌發的孢子于1%DES處理20 min后,對河內白曲霉的致死率為84.3%,后經涂布篩選獲得一株高產酸性α-淀粉酶的突變株Hanoi white starter 4,發酵后酶活力達20.8 U/g,較出發菌株提高61.2%。該突變株產酸性α-淀粉酶的遺傳穩定性良好,可用于后續工業放大生產。

[1]王建玲,陳志鑫,劉逸寒,等.產耐酸性α-淀粉酶菌株的分離、鑒定、酶學特性研究及發酵培養基的優化.生物技術通報,2014,30(4):159.

[2]Sharma A,Satyanarayana T.Microbial acid-stable α-amylases:characteristics,genetic engineering and applications.Process Biochemistry,2013,48(2):201.

[3]Kalpana B J,Pandian S K.Halotolerant,acid-alkali stable,chelator resistant and raw starch digesting α-amylase from a marine bacterium Bacillus subtilis S8-18.Journal of Basic Microbiology,2014,54(8):802.

[4]Liu JH,Xia W G,Abdullahi A Y,et al.Purification and partial characterization of an acidic α-amylase from a newly isolated Bacillus subtilis ZJ-1 that may be applied to feed enzyme.Preparative Biochemistry and Biotechnology,2015,45(3):259.

[5]張玉然,張曉云,田田,等.酸性α-淀粉酶研究進展.濟寧醫學 院 學 報,2015,38(5):310.

[6]錢萍.酸性淀粉酶菌株的誘變選育及酶學性質研究.食品工業 科 技,2012,33(11):184.

[7]王發祥,俞健,王建輝,等.1株產酸性α-淀粉酶黑曲霉原生質體制備和再生條件優化.食品科學,2014,35(1):156.

[8]Sharma A,Satyanarayana T.Production of acid-stable and high-maltose-forming α-amylase of Bacillus acidicola by solid-state fermentation and immobilized cells and its applicability in baking.Applied Biochemistry and Biotechnology,2012,168(5):1029.

[9]賀勝英,楊云娟,許波,等.白曲霉Asp-amy1固體發酵生產酸性淀粉酶的初步研究.釀酒科技,2009(8):42.

[10]田豐偉,程傳榮,袁維涵,等.原生質體誘變選育ε-聚賴氨酸高產菌株.微生物學通報,2010,37(10):1457.

[11]劉俊梅,王慶,王丹,等.紫外線和硫酸二乙酯復合誘變選育PHB 高產菌株.微生物學通報,2016,43(10):2242.

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