外源脂肪酸對辣椒生長及根際土壤環境的影響

張福建，陳 昱，吳超群，肖 晨，吳才君，楊有新

(江西農業大學 農學院，江西 南昌 330045)

外源脂肪酸對辣椒生長及根際土壤環境的影響

張福建，陳 昱，吳超群，肖 晨，吳才君*，楊有新*

(江西農業大學 農學院，江西 南昌 330045)

為探討外源棕櫚酸和油酸對辣椒生長發育、根際土壤微生物數量及酶活性的影響。采用盆栽試驗，設置棕櫚酸處理、油酸處理和對照處理(不加任何脂肪酸)，研究脂肪酸對辣椒生長發育、土壤酶活性及微生物的影響。結果表明，添加棕櫚酸和油酸可促進辣椒的生長發育，提高光合作用，有利于改善根際土壤環境。其中，棕櫚酸處理對辣椒生長的促進效果最為顯著，辣椒株高、莖粗、生物量和光合作用較對照存在顯著性差異。同時，棕櫚酸和油酸處理均增加了辣椒根際土壤放線菌和細菌數量，降低了真菌數量，提高了多酚氧化酶、脲酶和蔗糖酶活性，且兩處理根際土壤pH值顯著升高，電導率顯著降低。可見，在栽培辣椒的土壤中添加棕櫚酸和油酸有助于促進辣椒的生長及根際土壤環境的改善。

辣椒；棕櫚酸；油酸；生長發育；微生物量；土壤酶

植物在自然界生長難免會受到各種逆境脅迫，產生一系列的生理生化問題，使植株生長發育不良、光合速率下降、病蟲害加重、產量品質降低，影響著農業的可持續發展[1]。辣椒(CapsicumannuumL.)為茄科1年生或有限多年生植物，在中國各地廣泛栽培。據統計，近年來中國辣椒種植面積約為150萬～200萬hm2，占全國蔬菜總種植面積的8%～10%，已成為第一大蔬菜經濟作物[2]。但隨著辣椒種植面積不斷擴大，干旱、鹽害、連作障礙等生物和非生物脅迫問題日益突出，已成為限制辣椒增產的嚴重障礙。合理的間作、套作、伴生以及對土壤的改良能夠改善土壤環境，提高植物抗性，促進植物生長[3]。據報道，在土壤中添加植物源物質，可以有效緩解連作障礙。如脂肪酸類物質在抗菌特性方面具有較好的效果。研究表明，連作土壤添加棕櫚酸和油酸能夠抑制番茄枯萎和黃瓜炭疽病菌生長，抑制鏈球菌、葡萄球菌等細菌的活性，進而促進黃瓜和番茄幼苗的生長[4-5]。在連作鹽堿土中添加棕櫚酸和油酸可以降低黃瓜體內Na和Cu的含量，減少鹽脅迫對植株的傷害[6]。此外，脂肪酸在提高植物抗性以及誘導拮抗菌方面也發揮著重要作用，外源脂肪酸可提高鹽脅迫下大麥根中液泡膜磷脂和糖脂含量，增強膜結合酶活性，從而提高大麥的耐鹽性[7]。尹玉玲等[8]通過模擬茄子根系分泌物成分棕櫚酸和豆蔻酸，證實這2種物質處理能夠誘導拮抗菌的產生，抑制茄子根際土壤黃萎菌的增殖，提高茄子的抗性，從而降低黃萎病的發病率。適宜濃度的外源棕櫚酸處理可有效防治西瓜連作導致的枯萎病，促進西瓜的生長發育和產量的提高[9]。

目前，天然脂肪酸在促進辣椒生長發育以及提高辣椒產量方面的研究尚未報道。因此，本試驗以辣椒為研究材料，通過盆栽試驗探討了棕櫚酸和油酸對辣椒生長發育、根際土壤微生物量及酶活性的影響，在為今后施用外源脂肪酸，提高辣椒抗逆能力，實現辣椒的高產穩產提供理論依據和實踐指導。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

供試辣椒品種為線椒辛香8號，由江西華農種業有限公司饋贈。棕櫚酸(palmitic acid，PA)是一種飽和脂肪酸，在許多油和脂肪中以甘油酯的形式存在；油酸(oleic acid，OA)為十八酸，易溶于有機溶液。2種脂肪酸(分析純)分別購自山東西亞化學股份有限公司和如皋市天成電子化工廠。

試驗設在江西農業大學生態園，土壤取自江西省農業科學院試驗基地辣椒連作5年的大田。土壤基本理化性質為：pH 4.52，堿解氮80.7 mg·kg-1，有效磷16.7 mg·kg-1，速效鉀393.0 mg·kg-1，有機質36.5 g·kg-1。

1.2 試驗方法

試驗設置3個處理：CK對照(不加脂肪酸)；PA棕櫚酸處理(2 g棕櫚酸+1 kg土)；OA油酸處理(2 mL油酸+1 kg土)。辣椒催芽播種于穴盤后，待4葉期定植到不同處理的盆(30 cm × 20 cm)中，每個處理10盆，重復3次，隨機排列，定植后放置溫室內進行常規管理。

1.3 測定項目

生長指標：定植后50 d測定，株高使用卷尺測定；莖粗使用游標卡尺測定；葉面積利用網格法測定；先將取好的辣椒植株用剪刀將地上地下部分分開，再將辣椒植株根浸泡在清水中，沖洗掉根系表面的土壤，清洗完畢后用吸水紙吸干根系水分，測定植株生物量、壯苗指數等指標；利用根系掃描系統(WinRHIZO)分析根系指標。

光合特性：定植60 d測定，每株選擇植株頂部向陽展開葉片，采用Li-6400XT光合儀，在天氣晴朗、風速穩定的上午(08：30～10：30)測定辣椒葉片凈光合指標。

葉片指標：定植60 d測定，過氧化氫酶(catalase，CAT)活性采用紫外吸收法測定，以每g辣椒葉片鮮樣每分鐘增加1個吸光值為1個活性單位；采用磺基水楊酸提取法測定游離脯氨酸含量[10]；采用TBA(2-硫代巴比妥酸)比色法測定丙二醛含量[11]。

果實特征及產量：定植90 d測定，每個處理隨機選取5株辣椒，待辣椒收獲后用電子天平測量每株產量并記錄其果實性狀指標。

土壤理化指標：定植90 d測定，電導率、pH分別用電導率和pH儀測定，其中電導率水土比為5∶1，pH水土比為5∶1；土壤微生物數量采用稀釋平板法計數，放線菌采用高氏1號培養基，細菌采用牛肉膏蛋白胨培養基，真菌采用馬丁-孟加拉紅培養基[12]；脲酶、多酚氧化酶、蔗糖酶活性分別采用靛酚比色法、鄰苯三酚比色法、3，5-二硝基SA比色法測定[13]。

1.4 數據處理

試驗數據用Microsoft office excel 2003和SPSS 17.0 進行整理和分析，分析方法采用Duncan法，用GraphPad軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 棕櫚酸和油酸對辣椒生長指標的影響

如表1所示，與對照相比，PA處理使辣椒株高、莖粗、葉面積和壯苗指數分別增加了12.74%、27.34%、50.28%和78.59%，差異達到顯著水平；OA處理后各性狀也顯著高于對照，株高、莖粗、葉面積和壯苗指數增加了7.63%、18.69%、37.37%和39.48%，但增長幅度比PA處理小。生物量是反映植株生長狀況的重要指標，土壤中添加PA和OA顯著地增加了辣椒植株的生物量，且2種脂肪酸間也存在顯著差異。說明添加2種脂肪酸促進了辣椒的生長發育，其中PA處理效果最好。

2.2 棕櫚酸和油酸對辣椒根系特征的影響

根系特征是衡量植株健康與否的一個重要指標。如表2所示，通過根系掃描儀分析不同處理辣椒根系生長情況。結果發現，PA處理的辣椒根體積、表面積、長度以及根尖數均顯著高于對照，分別增加42.32%、36.16%、55.80%和90.42%；OA處理的辣椒根長度和根尖數較對照增加了25.85%和43.61%，差異達到顯著水平，但根體積、表面積與對照并無顯著性差異。

表1 棕櫚酸和油酸對辣椒生長指標的影響

Table 1 Effects of palmitic acid and oleic acid on the growth of pepper

處理Treatments株高Plantheight/cm莖粗Stemdiameter/mm干質量Dryweight/g根Root地上部Shoot葉面積Leafarea/cm2壯苗指數SeedlingindexCK43 80±0 61c5 78±0 25b1 36±0 08c6 72±0 27c44 55±2 20b2 71±0 17cPA49 38±0 55a7 36±0 06a2 37±0 05a10 58±0 79a66 95±1 59a4 84±0 15aOA47 14±0 51b6 86±0 10a1 85±0 17b8 58±0 30b61 20±3 05a3 78±0 28b

CK為對照(不加任何脂肪酸)；PA，添加棕櫚酸處理，OA，添加油酸處理。表中數據為平均值±標準誤，同列數據后無相同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。下同。

CK， Control (no fatty acids added); PA， palmitic acid Added; OA， oleic acid Added. Each value in the table represents mean ±standard error， data marked without the same lowercase letter in each column indicated significant differences atP<0.05. The same as bellow.

表2 棕櫚酸和油酸對辣椒根系特征的影響

Table 2 Effect of palmitic acid and oleic acid on root morphology of pepper

處理Treatments根體積Volume/mm3根系表面積Superficialarea/mm2根長Length/mm根尖數TipnumberCK6 12±0 45b246 88±15 50b667 48±30 47c371 60±18 75bPA8 71±0 33a336 15±5 82a1039 91±57 04a707 60±56 38aOA6 14±0 39b253 74±14 06b840 04±62 53b659 00±64 49a

2.3 棕櫚酸和油酸對辣椒光合指標的影響

光合作用可作為評價植株生長發育健康狀況的重要指標。由圖1可知，2種脂肪酸均能顯著提高葉片凈光合速率和蒸騰速率(圖1-A、D)，與對照相比，PA和OA處理的辣椒葉片凈光合速率增加了15.38%、9.82%，蒸騰速率增加了36.55%、39.50%。脂肪酸處理后辣椒葉片胞間CO2濃度顯著低于對照，PA和OA處理間差異不顯著。脂肪酸處理后辣椒葉片氣孔導度與對照差異不顯著(圖1-B)。

CK，對照(不加任何脂肪酸)；PA，添加棕櫚酸處理；OA，添加油酸處理。不同處理無相同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。下圖同CK， Control (no fatty acids addition); PA， Added palmitic acid; OA， Added oleic acid. Values without the same lower letters in different treatments indicate significant difference (P<0.05). The same as below圖1 棕櫚酸和油酸對辣椒光合指標的影響Fig.1 Effect of exogenous palmitic acid and oleic acid on photosynthetic characteristics in pepper plants

2.4 棕櫚酸和油酸對辣椒產量性狀的影響

如表3所示，PA和OA處理后辣椒單株產量分別比對照增加120.89%和90.53%，單株結果數較對照增加84.38%和46.88%，差異達到顯著水平。油酸處理后辣椒的單果長、單果莖粗以及單果重與對照差異不顯著。

2.5 棕櫚酸和油酸對辣椒葉片指標的影響

如圖2所示，2種脂肪酸均可降低辣椒葉片丙二醛和脯氨酸含量，其中棕櫚酸處理效果最好，與對照相比， 丙二醛和脯氨酸含量降低了26.79%和33.04%，差異達顯著水平。土壤添加PA和OA均能夠顯著提高辣椒葉片中過氧化氫酶活性。

2.6 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤微生物數量的影響

從表4可以看出，PA處理的細菌、放線菌數量及總菌數均顯著高于OA和對照處理，且差異達到顯著水平。而OA處理也能夠增加根際土壤中細菌、放線菌和總菌數量，但增加幅度低于PA處理，且與對照無顯著性差異。真菌在土壤微生物總數中的比例最小，2種脂肪酸處理下的真菌數所占比例均顯著小于對照。可見，脂肪酸處理改變了土壤中微生物的數量。

表3 棕櫚酸和油酸對辣椒單株產量的影響

Table 3 Effects of exogenous palmitic acid and oleic acid on yield characters of pepper plants

處理Treatments單果長FruitLength/cm單果莖粗Fruitdiameter/mm單果重Fruitweight/g單株結果數Fruitnumber單株產量Yields/gCK14 04±0 40b10 02±0 22b6 53±0 41b6 40±0 51c52 14±4 67bPA17 05±0 36a12 04±0 29a10 68±0 60a11 80±0 73a115 17±4 81aOA16 21±0 31b11 97±0 32b10 60±0 68b9 40±0 51b99 34±6 78a

圖中數據以鮮質量計Data was detected based on fresh weight圖2 棕櫚酸和油酸對辣椒葉片指標的影響Fig.2 Effects of exogenous palm acid and oleic acid on leaves index of pepper

2.7 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤酶活性的影響

由表5可以看出，經過脂肪酸處理后，辣椒根際土壤酶活性均高于對照。PA和OA處理的多酚氧化酶和蔗糖酶活性均顯著大于對照； PA處理的脲酶活性較對照增加了63.31%，差異達到顯著水平；而油酸處理后脲酶活性增加了4.14%，但與對照相比差異不顯著。

2.8 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤pH及電導率的影響

土壤酸堿度和土壤電導率是土壤重要的基本性質之一，合適的土壤pH值和較低的電導率是滿足辣椒生長的重要保證。從圖3可以看出，PA和OA處理的辣椒根際土壤pH值均高于對照，根際土壤電導率分別較對照降低了64.21%和49.47%。

3 討論

天然脂肪酸類物質在防治病害、調控植物生長發育和改善土壤理化性質方面具有重要的應用價值[4-8]。本研究結果表明，栽培辣椒的土壤中添加外源物質PA和OA顯著影響辣椒生理代謝，調控辣椒生長發育。2種脂肪酸處理均能顯著促進辣椒生長發育，提高辣椒生物量和單株產量，有利于植株壯苗。根系的形態變化直接反映植株健康與否[14]。脂肪酸處理后的辣椒根系無論是體積、表面積還是長度和根尖數均得到顯著改善，原因可能是土壤中添加的PA和OA促進了根系對養分的吸收，這與PA和OA對黃瓜和番茄生長作用規律是一致的[4]。光合作用是植物維持生命及獲得高產優質的保證[15]。試驗發現，PA和OA處理顯著提高了辣椒葉片光合速率和蒸騰速率，但葉片氣孔導度反而有所降低，可能是由于土壤經過脂肪酸處理后，辣椒根系生長改善所致，根系吸水能力變強，進而促進了光合作用和蒸騰速率。

表4 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤微生物數量的影響

Table 4 Effects of exogenous palmitic acid and oleic acid on the number of microorganisms in rhizosphere soil of pepper plants

處理Treatments放線菌數Actinomycenumber/(104cfu·g-1)細菌數Bacterianumber/(106cfu·g-1)真菌數Fungusnumber/(103cfu·g-1)總菌數Totalnumber/(107cfu·g-1)CK28 00±2 08b21 33±2 96b54 00±2 08a2 17±0 30bPA58 67±0 88a62 33±6 36a25 00±3 00c6 29±0 64aOA28 33±1 20b35 50±3 50b36 00±2 00b3 58±0 35b

表5 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤酶活性的影響

Table 5 Effects of exogenous palm acid and oleic acid on pepper soil enzyme activities

處理Treatment多酚氧化酶Polyhenoloxidase/(mg·g-1soil·3h-1)脲酶Urease/(mgNH3?N·g-1soil·24h-1)蔗糖酶Sucrase/(mg·g-1soil·24h-1)CK0 18±0 02b1 69±0 03b2 21±0 03bPA0 44±0 06a2 76±0 03a2 93±0 06aOA0 48±0 04a1 76±0 03b2 80±0 16a

圖3 棕櫚酸和油酸對辣椒根際土壤pH及電導率的影響Fig.3 Effects of exogenous palmitic acid and oleic acid on pH and electrical conductivity of pepper rhizosphere soil

正常情況下，植物體內丙二醛和脯氨酸含量均較低，當植物處于逆境時，這2種物質就會大量積累[16]。而過氧化氫酶作為一種重要的氧化還原酶，與植物根系及土壤微生物等都有關系[17]。本研究結果表明，PA和OA處理顯著降低了辣椒葉片丙二醛和脯氨酸的含量，提高了過氧化氫酶活性，說明脂肪酸處理可緩解逆境脅迫對辣椒的傷害，有助于提高辣椒抵抗逆境的能力。

土壤微生物是土壤多樣性中最活躍的有機體，在有機質的分解轉化中起著核心作用[19]。當土壤中真菌數量降低，細菌和放線菌數量增加時，土傳病害發生概率下降[20]。本試驗研究結果表明，棕櫚酸和油酸顯著降低了辣椒根系土壤真菌數量，增加了細菌、放線菌和總菌數量，該結果與周寶利等[21]研究結果一致，他們發現化感物質棕櫚酸能夠改變茄子根際土壤微生物數量，增加微生物碳、氮、磷含量，提高土壤養分利用率，進而促進茄子生長發育。土壤酶是土壤中的生物催化劑，與土壤微生物息息相關，而脲酶、多酚氧化酶和蔗糖酶是土壤中主要的幾種酶，參與土壤代謝以及有機質的分解轉化[22]。本試驗結果顯示，經脂肪酸處理的辣椒根際土壤酶活性顯著高于對照，說明脂肪酸具有促進土壤有機養分轉化，刺激土壤酶活性提高的功能。適宜的土壤pH值和較低的電導率有利于植物生長發育。本試驗中，PA和OA處理顯著提高了辣椒根際土壤pH值，降低了電導率，原因可能是PA和OA所產生的有機酸被土壤微生物利用，進而活化了土壤中的養分所致[9]。

綜上所述，本研究證實了棕櫚酸和油酸能夠在一定程度上促進辣椒的生長發育，改善根際土壤環境，但脂肪酸促進辣椒生長的具體作用機理還有待進一步研究。

[1] ERASLAN F， INAL A， GUNES A， et al. Comparative physiological and growth responses of tomato and pepper plants to fertilizer induced salinity and salt stress[J].FreseniusEnvironmentalBulletin， 2015， 24(5A): 687-696.

[2] 王立浩， 張正海， 曹亞從， 等. “十二五”我國辣椒遺傳育種研究進展及其展望[J]. 中國蔬菜， 2016， 1(1): 1-7. WANG L H， ZHANG Z H， CAO Y C， et al. Research progress and prospect of pepper genetic breeding in China in 12th Five-Year[J].ChinaVegetables， 2016， 1(1): 1-7. (in Chinese)

[3] FU X P， WU X， ZHOU X， et al. Companion cropping with potato onion enhances the disease resistance of tomato againstverticilliumdahlia[J].FrontiersinPlantScience， 2015， 6(1): 726.

[4] 李晶， 阮維斌， 陳永智，等. 天然脂肪酸類物質對溫室連作黃瓜和番茄幼苗生長的影響[J]. 農業環境科學學報， 2008， 27(3): 1022-1028. LI J， RUAN W B， CHEN Y Z， et al. Effects of natural fatty acids on the growth of cucumber (CucumissativusL.) and tomato (LycopersicumesculentumMill.) seedlings in the continuously mono-cropped soil in greenhouse[J].JournalofAgriculturalEnvironmentalScience， 2008， 27(3): 1022-1028. (in Chinese with English abstract)

[5] VAUGHN S F， GARDNER H W. Lipoxygenase-derived aldehydes inhibit fungi pathogenic on soybean[J].JournalofChemicalEcology， 1993， 19(10): 2337-2345.

[6] RUAN W B， WANG J， PAN J， et al. Effects of sesame seed cake allelochemicals on the growth cucumber (CucumissativusL. cv. Jinchun 4)[J].AllelopathyJournal， 2005， 16(2): 217-225.

[7] 龔紅梅， 於丙軍， 劉友良. 脂肪酸對鹽脅迫大麥幼苗液泡膜微囊膜脂組分及功能的影響[J]. 植物學報， 1999， 41(4): 74-79. GONG H M， YU B J， LIU Y L. Effects of fatty acids on lipid composition and function of tonoplast vesicles in barley seedlings under salt stress[J].JournalofPlantScience， 1999， 41(4): 74-79. (in Chinese with English abstract)

[8] 尹玉玲， 劉圓， 湯泳萍， 等. 豆蔻酸和棕櫚酸誘導茄子根際拮抗菌與黃萎菌數量消長的關系[J]. 生態學報， 2015， 35(20): 6728-6733. YIN Y L， LIU Y， TANG Y P， et al. Population fluctuations of antagonistic microbes andverticilliumdahliaeinfluenced by myristic and palmitic acids in root exudates present in eggplant rhizospheres[J].ActaEcologicaSinica， 2015， 35(20): 6728-6733. (in Chinese with English abstract)

[9] 楚麗榮. 外源棕櫚酸對連作西瓜生長及土壤微生物的影響[D]. 哈爾濱: 東北農業大學， 2015. CHU L R. Effect of hexadecanoic acid on watermelon growth and microbial of continuous cropping soil [D]. Harbin: Northeast Agricultural University， 2015. (in Chinese with English abstract)

[10] 鄒琦. 植物生理學實驗指導[M]. 北京: 中國農業出版社， 2000: 129， 174.

[11] 李合生，孫群，趙氏杰.植物生理生化試驗原理與技術[M]. 北京: 高等教育出版社， 2000: 57-58.

[12] 阮奕平. 蔬菜連作障礙中自毒作用及其緩解措施研究[D]. 杭州: 浙江大學， 2013. RUAN Y P. Studies on autotoxity and mitigation measures of vegetable continuous cropping obstacles [D]. Hangzhou: Zhejiang University， 2013. (in Chinese with English abstract)

[13] 關松蔭. 土壤酶及其研究法[M]. 北京: 農業出版社， 1986.

[14] BOWSHER A W， MILLER B J， DONOVAN L A. Evolutionary divergences in root system morphology， allocation， and nitrogen uptake in species from high-versus low-fertility soils[J].FunctionalPlantBiology， 2015，43(2): 129-140.

[15] NOWICKA B， KRUK J. Powered by light: Phototrophy and photosynthesis in prokaryotes and its evolution[J].MicrobiologicalResearch， 2016 (186): 99-118.

[16] PEI Z F， MING D F， LIU D， et al. Silicon improves the tolerance to water-deficit stress induced by polyethylene glycol in wheat (TriticumaestivumL.) seedlings[J].JournalofPlantGrowthRegulation， 2010， 29(1): 106-115.

[17] 徐偉慧， 吳鳳芝. 西瓜根際土壤酶及微生物對小麥伴生的響應[J]. 浙江農業學報， 2016， 28(9): 1588-1594. WU W H， WU F Z. Response of soil enzymes activities and microorganism in rhizosphere of watermelon to wheat as companion crop[J].ActaAgriculturaeZhejiangensis， 2016， 28(9): 1588-1594. (in Chinese with English abstract)

[18] CAI Z， WANG B， XU M， et al. Intensified soil acidification from chemical N fertilization and prevention by manure in an 18-year field experiment in the red soil of southern china[J].JournalofSoilsandSediments， 2015， 15(2): 260-270.

[19] WU F， WANG J T， YANG J， et al. Does arsenic play an important role in the soil microbial community around a typical arsenic mining area？[J].EnvironmentalPollution， 2016， 213: 949-956.

[20] 韓雪， 吳鳳芝， 潘凱. 根系分泌物與土傳病害關系之研究綜述[J]. 中國農學通報， 2006， 22(3): 316-318. HAN X， WU F Z， PAN K. Review on the relation between the root exudates and soil-spread disease[J].ChineseAgriculturalScienceBulletin， 2006， 22(3): 316-318. (in Chinese with English abstract)

[21] 周寶利， 韓琳， 尹玉玲， 等. 化感物質棕櫚酸對茄子根際土壤微生物組成及微生物量的影響[J]. 沈陽農業大學學報， 2010， 41(3): 275-278. ZHOU B L， HANG L， YIN Y L， et al. Effects of allelochemicals hexadecanoic acid on soil microbial composition and biomass in rhizosphere of eggplant[J].JournalofShenyangAgriculturalUniversity， 2010， 41(3): 275-278. (in Chinese with English abstract)

(責任編輯 侯春曉)

Effects of exogenous fatty acids on growth and rhizosphere soil of pepper plants

ZHANG Fujian， CHEN Yu， WU Chaoqun， XIAO Chen， WU Caijun*, YANG Youxin*

(CollegeofAgronomy，JiangxiAgriculturalUniversity，Nanchang330045，China)

To investigate the effects of palmitic acid and oleic acid on the pepper plant growth， the rhizosphere soil microorganism and enzyme activities， pot experiments were performed to investigate the exogenous fatty acids function on the growth of pepper plants and soil environment， including three treatments (palmitic acid， oleic acid and control without any fatty acid added to the soil). The results showed that palmitic acid and oleic acid added to soil could promote growth and development of pepper plants， and improve rhizosphere soil microorganism. The palmitic acid treatment significantly promoted the growth of pepper plants， including plant height， stem diameter， biomass， and photosynthesis compared with the control. At the same time， the palmitic acid and oleic acid treatment increased the rhizosphere actinomycetes and bacteria， reduced the number of fungi， accompanying with increasing of polyphenol oxidase， urease and invertase activity. The two treatments increased pH value and decreased electrical conductivity of the rhizosphere soil. Therefore， soil added with palmitic acid and oleic acid promoted pepper growth and improved its soil environment.

pepper; palmitic acid; oleic acid; growth; microbial quantity; soil enzyme

http://www.zjnyxb.cn張福建， 陳昱， 吳超群， 等. 外源脂肪酸對辣椒生長及根際土壤環境的影響[J]. 浙江農業學報， 2017， 29(5): 760-766.

10.3969/j.issn.1004-1524.2017.05.11

2016-12-30

江西省現代農業科研協同創新專項經費(JXXTCX2015005-002)；江西省科技廳重點研發計劃重大項目(20161ACF60015)

張福建(1990—)，男，江蘇連云港人，碩士研究生，從事蔬菜生理生態研究。E-mail: zhangfujianjxau@163.com

*通信作者，吳才君，E-mail: wucj12@126.com；楊有新，E-mail: yangyouxinchina@163.com

S641.3

A

1004-1524(2017)05-0760-07

浙江農業學報ActaAgriculturaeZhejiangensis， 2017，29(5): 760-766