牛乳中頭孢噻呋殘留檢測方法的研究

孫慧葉，孫大慶，魏玉龍

牛乳中頭孢噻呋殘留檢測方法的研究

孫慧葉1，*孫大慶2，魏玉龍2

（1.集賢縣職業學校，黑龍江雙鴨山155900；2.黑龍江八一農墾大學牡丹江食品與生物技術創新研究院，黑龍江牡丹江157000）

采用TTC法、微生物抑制紙片法和HPLC法對牛乳中頭孢噻呋殘留進行檢測，比較不同檢測方法的優缺點。結果表明，TTC法檢測頭孢噻呋殘留的檢出限為0.10mg/L；微生物抑制紙片法的檢出限為0.01mg/L，符合限量要求；HPLC法的檢出限為0.10μg/L。通過比較發現，TTC法簡單、快速，不需要特殊設備，適合養殖場和基層使用；HPLC法靈敏度、準確度高，適合于實驗室檢測使用。

牛乳；頭孢噻呋；微生物抑制法；高效液相色譜

隨著抗生素在乳畜飼養業中的廣泛應用，牛乳中抗生素殘留問題日益受到國際社會的重視。頭孢噻呋是美國于20世紀80年代成功開發的獸醫專用第3代頭孢菌素，該藥自上市以來，由于其優良的抗菌活性和藥物代謝動力學特征，常用于奶牛感染的防治[1]。尋求簡便、快速、準確、敏感性高的檢測方法可滿足日趨嚴格的殘留限量要求，對保障人們飲用牛乳的衛生和安全具有重要現實意義[2]。國外采用微生物抑制紙片法檢測牛乳中抗生素殘留起步較早[3]，而TTC法在國際上應用較少。我國2008年更新了TTC法檢測牛乳中抗生素殘留的國標方法，但還沒有微生物抑制紙片法檢測牛乳中抗生素殘留的標準方法[4]。另外，由于高效液相色譜法（HPLC）的色譜條件不確定，也沒有對頭孢噻呋殘留的HPLC檢測方法研究[5-6]。研究采用微生物抑制紙片法、TTC法和HPLC法檢測牛乳中的頭孢噻呋殘留，比較3種檢測方法的最低檢出量，探討不同方法的優缺點，可為衛生安全地食用牛乳奠定一定理論基礎。

1 材料與方法

1.1 菌種及原料

藤黃微球菌、枯草芽孢桿菌、大腸桿菌，由黑龍江八一農墾大學牡丹江食品與生物技術創新研究院微生物實驗室保藏；牛乳，購于當地超市。

1.2 試劑及儀器

頭孢噻呋鈉標準品，純度87.5%（批號K0330406）；乙腈（色譜純）；三氯乙酸（色譜純），購自Sigma公司。檢測培養基：AM1瓊脂（抗生素測定1號瓊脂）；純化及傳代培養基（胰蛋白胨大豆瓊脂）；營養瓊脂；氯化三苯基四氮唑（TTC），購自上海生工生物工程公司。TGL-16B型離心機；510 Pump型液相色譜儀；JD100-3B型電子分析天平；RP-9082型電熱恒溫培養箱。

1.3 TTC法測定頭孢噻呋殘留

分別在牛乳中添加質量濃度為1.000，0.500，0.100，0.050，0.010，0.005 mg/L頭孢噻呋的標準工作液，混勻后作為抗生素殘留乳樣。頭孢噻呋殘留的測定，參照GB/T 4789.27—2008進行。

1.4 微生物抑制紙片法測定頭孢噻呋殘留

1.4.1 菌懸液的制備

將藤黃微球菌、枯草芽孢桿菌、大腸桿菌用普通營養肉湯復活，接種皿平板分離出單個菌落，挑取單個菌落接種TSA斜面，于37℃條件下培養18~ 24 h。取斜面菌苔制成0.5麥氏單位的菌懸液0.5 m L注入滅菌平皿內，加入10mL溶化后冷卻至50℃左右的AM1瓊脂，將瓊脂與菌懸液充分混勻后保持水平使其凝固，置于42℃溫箱中烘干20 min。分別在牛乳中添加不同質量濃度的頭孢噻呋工作液（0.500，0.100，0.050，0.010，0.005mg/L），混勻后作為測定試樣。

1.4.2 測定

取制備好的檢定用平板，在平板底部做好標記，把濾紙片以適當間隔置于平板上，每個平板放置3個濾紙片，用鑷子輕壓使其固定，在每片濾紙上加100μL測定試樣液，同時作陰性、陽性對照，靜置10 min后，置于37℃條件下培養18 h后觀察，用游標卡尺測量抑菌圈直徑大小。每份試樣做2個平板的平行試驗。陽性對照采用頭孢噻呋的工作應用液，無添加頭孢噻呋標準液的牛乳作為陰性對照。

1.5 HPLC法測定頭孢噻呋殘留

1.5.1 樣品處理

用吸管準確吸取0.5mL牛乳樣品于1.5mL微型離心管中，用超聲波清洗器超聲處理20min，使其均勻，加入0.5mL質量分數為10%的三氟乙酸，搖勻后放置20 min，放入離心機中，以轉速12 000 r/min離心5 min，上層液體通過0.45μm水系微孔濾膜過濾，收集濾液，供高效液相色譜分析。

1.5.2 色譜條件

色譜柱：C18色譜柱（Waterssysmmetry），250mm× 4.6mm（I.D.），粒徑5μm；流動相：質量分數為0.2%三氟乙酸∶乙腈（70∶30）；檢驗波長290 nm；流速1.0mL/min；進樣量20μL；柱溫40℃。

1.5.3 標準工作液曲線制備

頭孢噻呋標準溶液配制：準確稱取頭孢噻呋標準品0.01 g于100 mL容量瓶中，用質量分數0.2%的三氟乙酸定容至刻度，配制成質量濃度為10 g/L的頭孢噻呋標準溶液。

分別在牛乳中添加不同量的頭孢噻呋標準工作液，混勻后作為測定試樣，待測乳樣的質量濃度分別為1.00，0.50，0.10，0.05，0.01 mg/L，然后分別過0.45μm水系醋酸纖維微孔濾膜，收集濾液供高效液相色譜分析。以保留時間定性、峰面積定量，繪制標準工作曲線，并確定最低檢出量。

2 結果與分析

2.1 TTC法測定結果

TTC法測定樣品中頭孢噻呋殘留結果見表1。

表1 TTC法測定樣品中頭孢噻呋殘留結果

加入TTC指示劑的乳樣準確培養30 min后，第1次觀察結果如不顯色者，再繼續培養30 min，作為第2次觀察，判斷其顯色狀態。檢樣呈牛乳的本色時為陽性，如呈紅色者為陰性。由表1可以看出，TTC法的頭孢噻呋最低檢出量為0.100mg/L。該法簡便、快速，無需特殊設備，3~4 h可見報告，適合牧場、乳品廠及食品衛生檢測部門采用。

2.2 微生物抑制紙片法測定結果

如果檢定平板中陽性對照的抑菌圈直徑≥13mm，陰性對照無抑菌圈，可認為檢出頭孢噻呋殘留。用游標卡尺測量測定試樣的抑菌圈直徑大小，計算平均值。

微生物抑制紙片法測定頭孢噻呋殘留結果見表2。

表2 微生物抑制紙片法測定頭孢噻呋殘留結果

微生物抑制紙片法的最低檢出量為0.01 mg/L，試驗所選用的3種測定用菌株對奶牛飼養業常使用的抗生素均有良好的敏感性。由表2可以看出，藤黃微球菌對頭孢噻呋敏感，其他2種菌不敏感。

試驗測定用平板瓊脂的厚度直接影響抑菌圈直徑的大小，瓊脂厚的抑菌圈小，瓊脂薄的抑菌圈大。9 cm的平板加注8 mL瓊脂較合適，瓊脂太薄，經37℃培養容易引起平板干燥裂開，影響結果判斷。試驗測定用平板檢定用菌的濃度和加入量直接影響抑菌圈大小與清晰度，抑菌圈直徑大小隨著測定菌液濃度的增加而減小，但菌液濃度太小會導致抑菌圈模糊不清。選擇0.5麥氏單位的菌液濃度，每個平板上加入0.5mL的菌液在抑菌圈大小與清晰度方面取得平行，效果最佳。采用微生物抑制紙片法檢測牛乳中的抗生素，具有快速靈敏、儀器要求簡單、成本低廉的優點，18~24 h即可得出結果，適應奶牛養殖場和基層實驗室使用。

2.3 HPLC法測定結果

2.3.1 標準曲線

頭孢噻呋標準品的液相色譜分析結果見圖1，HPLC法測定頭孢噻呋殘留標準曲線見圖2。

圖1 頭孢噻呋標準品的液相色譜分析結果

圖2 HPLC法測定頭孢噻呋殘留標準曲線

由圖1可知，頭孢噻呋的保留時間為3.127 min，根據保留時間和標準品質量濃度，測定乳樣中頭孢噻呋的質量濃度，結果以峰面積歸一法計算。以標準品質量濃度為橫坐標、峰面積為縱坐標繪制標準曲線，結果如圖2所示。所得線性回歸方程為Y= 753.02X+4.795 8，相關系數為0.997 9，線性關系良好。

2.3.2 頭孢噻呋殘留的最低檢出限

將頭孢噻呋標準液進行系列稀釋，當上樣質量濃度為0.005 mg/L時上樣20μL，信號限與噪音限之比為2∶1~3∶1，因此確定最低檢出量為0.10μg/L。

3 結論

比較不同檢測方法測定頭孢噻呋殘留的最低檢出限，高效液相色譜法檢出量最低，為0.10μg/L，具有靈敏度高、準確度好、色譜峰分離優良等優點，但成本偏高，比較適合于實驗室操作研究。其次是微生物抑制紙片法，最低檢出限為0.01 mg/L，此法易操作，最低檢出量較低，且成本不高，但培養菌種時間過長，不適合企業快速測定抗生素殘留。TTC法的最低檢出限最高，為0.10 mg/L，但TTC法簡便、快速，無需特殊設備，3~4 h可見報告，比較適合牧場、乳品廠及食品衛生檢測部門采用。

[1]Marchetti M，Schwaiger I，Schmid E.Determination of benzylpenicillin，oxacillin，cloxacillin，and dicloxacillin in cows'milk by ion-pair high-performance liquid chromatography after precolumn derivatization[J].Fresenius'Journal of AnalyticalChemistry，2001（1）：64-67.

[2]Linage B，Gonzalo C，Carriedo JA，et al.Performance of blue-yellow screening test for antim icrobial detection in ovinemilk[J].Journal of Dairy Science，2007，90（12）：5 374-5 379.

[3]Wang J，Leung D.Analyses ofmacrolide antibiotic residues in eggs，rawmilk，and honey using both ultra-performance liquid chromatography/quadrupole time-of-flightmass spectrometry and high-performance liquid chromatography/tandem mass spectrometry[J].Rapid Communications in Mass Spectrometry，2007，21（19）：3 213-3 222.

[4]Townsend D E，Irving R L，Naqui A.Comparison of the SimPlate coliform and Escherichia coli test with Petrifilm, three-tube MPN，and VRBA+MUGmethods for enumerating coliforms and E.coli in food[J].Journal of Food Protection，1998，61（4）：444-449.

[5]Gunasekera T S，Veal D A，Attfield P V.Potential for broad applications of flow cytometry and fluorescence techniques in microbiological and somatic cell analyses of milk[J].International Journal of Food Microbiology，2003，85（3）：269-279.

[6]Gunasekera TS，Attfield PV，Veal D A.A flow cytometry method for rapid detection and enumeration of total bacteria in milk[J].Applied and Environmental Microbiology，2000，66（3）：1 228-1 232.◇

Research on the Detection Method of Ceftiofur Residue in Milk

SUN Huiye1，*SUN Daqing2，WEIYulong2
（1.Vocational School of Jixian County，Shuangyashan，Heilongjiang 155900，China；2.Mudanjiang Food and Biotechnology Innovation Institute，Heilongjiang Bayi Agricultural University，Mudanjiang，Heilongjiang 157000，China）

The ceftiofur residues inmilk is determined by TTC，microbial inhibition and HLPCmethods.Advantages and disadvantagesof thesemethods are compared.The resultsshow theminimum detection limitof TTCmethod is 0.10mg/L.Theminimum detection limitofmicrobial inhibitionmethod is 0.01mg/L.Theminimum detection limitof HPLCmethod is 0.10μg/L.By comparing distrinctmethods，the TTCmethod is simple，fast and does not require special equipment and is particularly suitable for use in farms and grass roots，while HPLC is accurate，sensitive and suitable for laboratory.

milk；ceftiofur；microbial inhibitionmethod；high performance liquid chromatography

S859.84

A

10.16693/j.cnki.1671-9646（X）.2017.04.016

1671-9646（2017）04a-0048-03

2017-03-23

孫慧葉（1980—），女，本科，中學一級教師，研究方向為食品教育與研究。

*通訊作者：孫大慶（1979—），男，博士，副研究員，研究方向為食品安全與檢測。