王細(xì)勇 袁琳娜 張志豪
非小細(xì)胞肺癌患者DC-CIK過繼免疫治療前后外周血TLR4表達(dá)的變化
王細(xì)勇 袁琳娜 張志豪
目的 觀察細(xì)胞因子誘導(dǎo)的殺傷細(xì)胞(DC-CIK)過繼免疫治療前后非小細(xì)胞肺癌(NSCLC)患者外周血單個核細(xì)胞(PBMC)Toll樣受體4(TLR4)mRNA表達(dá)變化,及脂多糖刺激下PBMC分泌細(xì)胞因子的變化,探討TLR4在DC-CIK過繼免疫治療中的作用。方法 對50例采用DC-CIK治療的NSCLC患者,運(yùn)用RT-PCR檢測治療前后PBMC TLR4mRNA表達(dá)變化,ELISA法檢測治療前后NSCLC患者PBMC在脂多糖刺激下細(xì)胞因子(IL-6、IL-8及TNF-α)分泌的變化。 結(jié)果 DC-CIK治療后NSCLC患者PBMC TLR4mRNA的表達(dá)水平較治療前顯著降低(t=6.272,P<0.01);脂多糖刺激下PBMC分泌IL-6(t=17.407,P<0.01)、IL-8(t=15.244,P<0.01)及TNF-α(t=12.428,P<0.01)顯著減少。 結(jié)論 DC-CIK過繼免疫治療可能通過降低PBMC TLR4mRNA的表達(dá),提高機(jī)體抗腫瘤免疫功能。
樹突狀細(xì)胞 細(xì)胞因子誘導(dǎo)的殺傷細(xì)胞 非小細(xì)胞肺癌 TLR4
肺癌是全球發(fā)病率最高的惡性腫瘤[1]。非小細(xì)胞肺癌(NSCLC)占肺癌總數(shù)的85%,5年生存率僅為15%。目前對于NSCLC的治療除了手術(shù)、放療、化療等傳統(tǒng)手段外,又出現(xiàn)了靶向治療、免疫治療等新興療法。其中,DC-CIK細(xì)胞療法是過繼細(xì)胞免疫治療的首選方案[2]。研究表明,DC-CIK細(xì)胞治療能顯著提高NSCLC患者的生存期[3]。Toll樣受體4(TLR4)是連接固有免疫及適應(yīng)性免疫的重要橋梁,表達(dá)于多種免疫細(xì)胞[4]。本研究將通過比較NSCLC患者DC-CIK治療前后外周血單個核細(xì)胞(PBMC)TLR4mRNA表達(dá)及功能變化,探討TLR4在過繼細(xì)胞免疫治療中的作用機(jī)制及地位,為NSCLC的DC-CIK的治療提供理論依據(jù)。
1.1 對象 2012年6月至2014年6月,武警浙江總隊(duì)嘉興醫(yī)院胸心外科就診并經(jīng)病理檢查確診的NSCLC患者50例,均行DC-CIK治療。50例NSCLC患者中,男31例,女19例,年齡38~78(62.24±8.62)歲。肺腺癌22例,鱗狀細(xì)胞癌28例。高分化癌11例,中低分化癌39例。有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者31例,無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移者19例。吸煙36例,不吸煙14例;TNM分期根據(jù)2009年國際抗癌聯(lián)盟(UICC)分期標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行,其中Ⅰ期12例,Ⅱ期27例,Ⅲ期11例,無Ⅳ期患者。患者均接受過肺癌的規(guī)范化治療(包括手術(shù)治療及放、化療等);血常規(guī)正常,心、肝、腎功能可耐受生物治療;Karnofsky功能狀態(tài)評分(KPS評分)>60分;末次治療至開始接受DC-CIK細(xì)胞免疫治療的間隔時間≥4周;手術(shù)患者切口完全愈合;無感染、其他惡性腫瘤及傳染性疾病;對生物制品無過敏。
1.2 主要試劑 淋巴細(xì)胞分離液購自北京賽馳生物科技有限公司;腫瘤細(xì)胞株購自金斯瑞生物科技有限公司;重組人IFN-γ、IL-2、GM-CSF、IL-4、TNF-α均購自上海高創(chuàng)化學(xué)科技有限公司;抗人CD3單抗購自北京思科達(dá)生物科技有限公司;胎牛血清為美國Hyclone公司產(chǎn)品,RPMI-1640培養(yǎng)基為美國Gibco產(chǎn)品。總RNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及DNA ladder均購自TAKARA公司;TaqDNA聚合酶,dNTP均購自天為時代公司;TLR4(622 bp)引物:5′-CTGCAATGGATCAAGGACCA-3,5′-TCCCACTCCAGGTAAGTGTT-3′;βactin(374 bp)引物:5′-CGTGACATTAAGGAGAAGCTGTGC-3′,5′-CTCAGGAGGAGCAATGATCTTGAT-3′;引物由上海英駿生物技術(shù)有限公司合成。人IL-6、IL-8及TNF-α雙抗夾心Elisa檢測試劑盒購自上海巧伊生物科技有限公司。
1.3 方法
1.3.1 抗原制備方法 根據(jù)患者腫瘤類型選擇相同病理的腫瘤細(xì)胞株制備抗原。取對數(shù)生長期的細(xì)胞株細(xì)胞,加入0.9%氯化鈉溶液調(diào)細(xì)胞數(shù)至5×106/ml,反復(fù)凍融(-196~37℃)12次。細(xì)胞裂解物經(jīng)12 000r/min離心5min,取上清液備用。
1.3.2 DC-CIK細(xì)胞制備誘導(dǎo)方法 無菌抽取患者外周血50ml,常規(guī)Ficoll密度梯度離心法分離PBMC,加入適量RPMI-1640培養(yǎng)液,調(diào)整細(xì)胞濃度至2×106/ml,加入培養(yǎng)瓶中,置于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱中孵育2h。吸出未貼壁細(xì)胞,經(jīng)離心洗滌后以PRMI-1640培養(yǎng)液重懸(密度2×106/ml),接種于培養(yǎng)瓶,加入重組人IFN-γ 100μg/L及重組人IL-2 500kU/L,第2天加入抗人CD3單抗50μg/L,保持細(xì)胞密度(1~2)×106/ml,于第10~11天收集多種細(xì)胞因子誘導(dǎo)的殺傷細(xì)胞(CIK細(xì)胞)。在剩下的貼壁細(xì)胞中加入含重組人GM-CSF(100μg/ L)、重組人IL-4(50μg/L)的RPMI-1640培養(yǎng)基,于37℃,5%CO2的培養(yǎng)箱培養(yǎng)。每3d換液1次,于培養(yǎng)的第5天加入腫瘤裂解物(40μg/ml),于第6天加入重組人TNF-α(500U/ml),培養(yǎng)至第7天即獲得抗原致敏的樹突狀細(xì)胞(DC細(xì)胞)。將DC及CIK細(xì)胞以1∶20比例混合,用含重組人IL-2(250kU/L)的RPMI-1640培養(yǎng)液培養(yǎng)4d,即為DC-CIK細(xì)胞。
1.3.3 DC-CIK治療方案 將經(jīng)鑒定和質(zhì)檢合格(細(xì)菌、真菌培養(yǎng)陰性,細(xì)胞活性>95%)的DC-CIK細(xì)胞制成含1%白蛋白及0.9%氯化鈉溶液的細(xì)胞混懸液,分4次經(jīng)靜脈回輸,每療程回輸細(xì)胞總數(shù)為(5~10)×109個。
1.3.4 RT-PCR檢測PBMC TLR4mRNA表達(dá) 于DCCIK治療前1d及治療后第10天,無菌條件下分別取患者外周血5ml,常規(guī)Ficoll密度梯度離心法分離PBMC。按照總RNA提取試劑盒說明書提取總RNA,進(jìn)行紫外定量,并鑒定RNA的質(zhì)量。按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄。25μlPCR體系,β-actin為內(nèi)參。擴(kuò)增參數(shù):94℃5min;再以94℃40s、50℃40s、72℃90s為1循環(huán),共30個循環(huán);72℃5min。PCR產(chǎn)物在含有g(shù)oldview的1.5%瓊脂糖凝膠上95V恒壓電泳35min,最后置于凝膠成像分析儀觀察結(jié)果,TLR4 mRNA和β-actin均能擴(kuò)增成功。
1.3.5 ELISA檢測脂多糖誘導(dǎo)外周血PBMC釋放細(xì)胞因子 于DC-CIK治療前1d及治療后第10天,無菌條件下分別取患者外周血5ml,常規(guī)Ficoll密度梯度離心法分離PBMC。加入適量含脂多糖(1μg/ml)的RPMI-1640培養(yǎng)液,調(diào)整細(xì)胞濃度至1×106/ml,加入培養(yǎng)瓶中,置于37℃,5%CO2濃度的培養(yǎng)箱中孵培養(yǎng)24h。取上述細(xì)胞懸液,4℃,3 000r/min離心3min,收集上清液。根據(jù)ELISA試劑盒說明書檢測上清液中IL-6,IL-8,TNF-α水平。
1.3.6 計(jì)算機(jī)圖像處理 RT-PCR用bandscan4.3,對每個目的條帶進(jìn)行總光密度值的分析,以目的產(chǎn)物條帶與β-actin產(chǎn)物條帶的OD值的比值代表目的基因mRNA表達(dá)的相對水平。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS19.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以表示,治療前后比較采用配對t檢驗(yàn)。
2.1DC-CIK治療前后NSCLC患者PBMC TLR4mRNA表達(dá) 見圖1。
由圖1可見,DC-CIK治療后NSCLC患者外周血PBMC TLR4mRNA的表達(dá)量(0.43±0.15)低于治療前的表達(dá)量(0.60±0.12),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(t=6.272,P<0.01)。
2.2 DC-CIK治療前后NSCLC患者IL-6、IL-8、TNF-α水平的比較 見表1。
由表1可見,DC-CIK治療后NSCLC患者PBMC在脂多糖刺激下IL-6、IL-8及TNF-α分泌顯著減少,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

圖1 DC-CIK治療前后NSCLC患者PBMC TLR4mRNA表達(dá)

表1 DC-CIK治療前后NSCLC患者IL-6、IL-8、TNF-α水平的比較
大量研究表明,惡性腫瘤患者免疫系統(tǒng)(尤其是細(xì)胞免疫系統(tǒng))表現(xiàn)出明顯功能障礙,主要包括CD3+CD4+T細(xì)胞減少,CD3+CD8+T細(xì)胞增多,CD4+/CD8+比例降低,以及NK細(xì)胞活性降低[5],腫瘤患者外周血中有功能的成熟DC細(xì)胞數(shù)量顯著減少,未成熟DC細(xì)胞數(shù)量聚集[6]。過繼細(xì)胞免疫治療能提高患者免疫力,達(dá)到治療和預(yù)防腫瘤復(fù)發(fā)的目的。
CIK細(xì)胞是人外周血PBMC加入各種細(xì)胞因子共刺激后得到的一群異質(zhì)細(xì)胞,主要效應(yīng)細(xì)胞既表達(dá)T細(xì)胞標(biāo)記CD3,又表達(dá)NK細(xì)胞標(biāo)記CD56,對腫瘤細(xì)胞具有非主要組織相容性復(fù)合體(MHC)限制的強(qiáng)大細(xì)胞毒反應(yīng)[7],在腫瘤的過繼免疫治療中顯示出了重大的應(yīng)用價值。DC是人體功能最強(qiáng)的抗原提呈細(xì)胞,由DC與CIK細(xì)胞共培養(yǎng)形成的DC-CIK細(xì)胞,具有比CIK細(xì)胞更強(qiáng)的增殖活性及細(xì)胞毒性,并在臨床應(yīng)用中具有更少的不良反應(yīng)[8]。DC-CIK細(xì)胞療法在臨床上已用于甲狀腺癌、肺癌、結(jié)直腸癌,肝癌等惡性腫瘤,并取得了一定的治療效果[9]。
Toll樣受體(TLRS)屬于模式識別受體家族,可以識別多種病原微生物產(chǎn)物及內(nèi)源性配體[10-11],其中,TLR4是TLRs家族成員中研究較深入的受體之一。TLR4廣泛表達(dá)于多種免疫細(xì)胞,它介導(dǎo)MyD88依賴性及非依賴性信號途徑,從而促進(jìn)免疫細(xì)胞產(chǎn)生IL-6、IL-8及TNF-α等炎性細(xì)胞因子[12]。鑒于TLR4在免疫系統(tǒng)中的重要作用,
TLR4與腫瘤免疫的關(guān)系已有很多研究,研究表明調(diào)節(jié)性T細(xì)胞的TLR4受體激活可能導(dǎo)致腫瘤免疫抑制[13],死亡腫瘤細(xì)胞釋放的高遷移率族蛋白1(HMGB1)和DC細(xì)胞表達(dá)的TLR4的相互作用是腫瘤細(xì)胞免疫抗原交叉遞呈所必需的,也可以促進(jìn)腫瘤細(xì)胞毒T細(xì)胞特有的反應(yīng)[14]。但DC-CIK治療后,NSCLC患者外周血PBMC其表達(dá)及功能變化國內(nèi)外尚未見報(bào)道。本研究發(fā)現(xiàn),DC-CIK治療后NSCLC患者PBMC TLR4mRNA的表達(dá)較治療前顯著降低,在TLR4天然配體脂多糖刺激下,PBMC分泌炎性因子(IL-6、IL-8及TNF-α)顯著減少。血清中IL-6細(xì)胞因子水平升高與進(jìn)展期腫瘤患者免疫抑制有關(guān)[15],IL-8是炎癥致癌的主要因子之一,與腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[16],而TNF-α雖然能直接或介導(dǎo)免疫反應(yīng)殺傷腫瘤細(xì)胞,但如果TNF-α異常增高,會造成腫瘤患者免疫紊亂,使腫瘤細(xì)胞逃避宿主免疫監(jiān)視[17]。這也提示DC-CIK過繼免疫治療可以抑制PBMC的TLR4信號,使TLR4介導(dǎo)的炎癥因子產(chǎn)生減少,進(jìn)而減少慢性炎癥及免疫抑制,從而抑制腫瘤的生長和進(jìn)展。
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Changes of TLR4 mRNA expression in peripheral blood of patients with non-small cell lung cancer after DC-CIK immunotherapy
Objective To investigate the changes of TLR4 mRNA expression in peripheral blood mononuclear cell (PBMC)of patients with non-small cell lung cancer(NSCLC)after DC-CIK immunotherapy.Methods The mRNA expression of TLR4 in PBMC was detected by reverse transcription PCR(PT-PCR)in 50 patients with NSCLC before and after DC-CIK therapy.The secretion of cytokines(IL-6,IL-8 and TNF-α)of PBMC stimulated with LPS was detected by ELISA before and after DC-CIK therapy. Results After DC-CIK treatment,the relative expression level of TLR4 mRNA in PBMC of NSCLC patients was significantly decreased(t=6.272,P<0.01),the secretion of IL-6(t=17.407,P<0.01),IL-8(t=15.244,P<0.01)and TNF-α (t=12.428,P<0.01)by PBMC stimulated with LPS was significantly decreased. Conclusion DC-CIK immunotherapy can down-regulate TLR4 expression in PBMC of NSCL patients to enhance the anti-tumor immunity.
Dendritic cells(DC) Cytokine-induced killer(CIK) Non-small cell lung cancer TLR4
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2015-11-24)
(本文編輯:楊麗)