黃曉梅 馬盛韜 崔君濤 李佩 曾祥英 于志強



摘要建立了母乳中多種含鹵持久性有機污染物(POPs)的聯合檢測方法,目標化合物主要包括六溴環十二烷(HBCDs)、多溴聯苯醚(PBDEs)、多氯聯苯(PCBs)和有機氯農藥(OCPs)等。樣品的前處理采用液液萃取、凝膠滲透色譜(GPC)凈化和固相萃取(SPE)等技術,目標化合物經氣相色譜質譜聯用儀(GCMS)、液相色譜三重四極桿串聯質譜聯用儀(LCMS/MS)和氣相色譜三重四極桿串聯質譜聯用儀(GCMS/MS)等進行檢測。樣品通過GPC除去脂肪,然后經SPE柱進一步凈化并進行多組分分離,極大程度地減小了生物樣品中復雜基質的干擾,適合樣品量相對較小的人體樣本中多種超痕量POPs的分析。應用靈敏度高、選擇性更好的GCMS/MS對樣品中的PCBs和OCPs等進行分析,進一步降低基質的干擾。方法經過小牛血清加標實驗驗證,穩定可靠。POPs的加標回收率分別為88.7%~98.8%(PBDEs),88.5%~92.5%(HBCDs),67.9%~82.3%(PCBs)和81.7%~116.1%(OCPs),方法檢出限分別為0.13~1.8pg/mL(PBDEs),0.31~1.2pg/mL(HBCDs),0.22~1.4pg/mL(PCBs)和0.20~1.5pg/mL(OCPs)。采用本方法對濰坊地區20例母乳樣品進行分析,結果顯示,濰坊市母乳中HBCDs\,PBDEs\,PCBs、HCHs和DDTs的中值濃度分別為2.86\,7.76\,8.84、140和503ng/g脂重,此濃度水平與國內其它地區人群相當。
關鍵詞六溴環十二烷;多溴聯苯醚;多氯聯苯;有機氯農藥;母乳
1引言
六溴環十二烷(HBCDs)、多溴聯苯醚(PBDEs)、多氯聯苯(PCBs)和有機氯農藥(OCPs)是環境中廣泛存在的持久性有機污染物(POPs)。由于它們具有環境持久性、遠距離傳輸性、生物蓄積性以及對生物和人體具有毒害效應等特性,成為各國環境科學領域研究關注的熱點。PCBs和滴滴涕(DDT)于2001年被列入《關于持久性有機污染物的斯德哥爾摩公約》首批受控POPs名單,α和β六六六(HCH)、林丹以及商用五溴和八溴聯苯醚于2009年被列入新增POPs名單,HBCDs也于2013年被列入POPs名單。盡管這些化合物在全球部分地區的應用已受到控制,但是由于長期大量使用以及持久性特征,使得其在環境介質中依然有較高的儲備,并通過食物鏈或其它途徑進入人體,帶來較大的潛在健康風險,尤其是還在使用這些化合物的地區[1]。因此,有必要持續監測這些POPs在人體內的含量水平,為評估它們的潛在健康風險提供基礎數據。
目前人體樣品中POPs的分析方法有較多報道,但已有的方法通常針對溴代阻燃劑、有機氯農藥等分類進行分析和方法優化[24]。由于母乳和血清等收集難度大,采樣量相對較小,所采集的樣品往往只能進行一次前處理;同時人體往往受到多種POPs的污染暴露,這些POPs的含量水平相對較低(ng/mL水平),因此,有必要建立適合人體樣品多種痕量POPs的聯合檢測方法,從而實現有限的樣品量經一次分析得到多種POPs的濃度水平,這也是當前POPs分析方法發展的主要方向。目前,有關人體樣品的多組分聯合檢測方法的文獻報道較少。Sahlstrm等[5]建立了血清中多種溴阻燃劑聯合檢測方法,該方法在提取脂肪后,將耐酸性化合物與對酸敏感的化合物用固相萃取(SPE)柱分離,然后將二者分開凈化,操作較復雜。Shi等[6]建立了母乳和血清中HBCDs、PBDEs和四溴雙酚A(TBBPA)的聯合檢測方法,Wang等[7]建立了血清中PCBs、OCPs、PBDEs、德克隆(DP)、五溴苯(PBBz)和五溴甲苯(PBT)的聯合檢測方法,以上兩種方法在利用凝膠滲透色譜(GPC)除脂后,分別用濃硫酸和酸性硅膠柱進一步凈化。人體樣品的基質非常復雜,在濃硫酸或酸性硅膠凈化過程中,生物基質與濃硫酸反應生成的產物可能干擾POPs的檢測,母乳中的膽固醇經濃硫酸脫水后形成膽甾烯,后者在GCMS檢測時對BDE99和BDE100產生離子抑制效應或峰干擾效應[8]。
本研究利用液液萃取、GPC凈化和SPE分離等技術,建立了母乳樣品中HBCDs,PBDEs,PCBs和OCPs等多種POPs的聯合檢測方法;同時利用靈敏度高和選擇性好的GCMS/MS對樣品中PCBs和OCPs進行檢測。
2實驗部分
2.1儀器與試劑
7890A5975C氣相色譜質譜聯用儀、7890A7000氣相色譜三重四極桿串聯質譜聯用儀(美國安捷倫公司);1100液相色譜(LC,美國安捷倫公司)耦合應用生物系統API4000三重四極桿串聯質譜系統(MS/MS,美國AB公司);BS210s電子天平(德國Sartorius公司);TDL5A離心機(上海菲恰爾分析儀器有限公司);R210旋轉蒸發儀(瑞士步琪公司);50mL聚四氟乙烯離心管(美國橡樹嶺公司)等。
PCBs混合標樣(包含PCB28\,52\,101\,118\,138\,153\,180),PBDEs混合標樣(包含BDE28\,47\,99\,100\,153\,154\,183\,209),高溴PBDE單標(BDE196\,197\,201\,202\,203\,206\,207\,208\,209),以及單標BDE77\,BDE128\,BDE181均購自美國Accustandard;α、β、γHBCD,13C12標記和d18標記的α\,β\,γHBCD,13C10PCB141,13C10PCB208,以及13COCPs(含13C6標記的βHCH\,13C12標記的4,4′DDE和4,4′DDT)均購自美國劍橋同位素實驗室;OCPs混標(含αHCH\,βHCH\,γHCH\,4,4′DDD\,4,4′DDE\,4,4′DDT)購自美國Supelco公司。
二氯甲烷(農殘級,德國CNW公司);正己烷和甲醇(LC級,德國Merck公司);甲基叔丁基醚和乙醇(LC級,德國CNW公司);草酸鉀(99%,美國AlfaAesar公司);無水硫酸鈉(分析純,江蘇強盛功能化學股份有限公司);凝膠滲透色譜填料為BioBeadsSX3(美國BioRad公司);硅膠(63200μm,德國Merck公司)。
2.2實驗用品的制備
玻璃器具用熱洗液(含5%K2Cr2O7的濃H2SO4)清洗,放置5h后,依次用自來水和去離子水清洗,烘干后,經450℃高溫焙燒5h后,用鋁箔紙封口保存備用。無水硫酸鈉經450℃高溫焙燒5h后,置于密封干燥器中保存備用。硅膠經150℃活化12h后,在干燥器中平衡12h,加入2.5%(m/m)的水失活,置于密封干燥器中備用。
2.3母乳樣品的采集
母乳樣品于2010年11月至2011年03月采自山東省濰坊某醫院。所有志愿者都自愿參加并簽署知情同意書,在該醫院醫護人員的協助下,收集母乳量約20mL。母乳樣品置于
80℃冰箱保存。同時對參與人員進行無記名登記調查,記錄相應母親的年齡、胎次、職業等信息。
2.4樣品處理
基于本課題組建立的母乳中PBDEs的分析方法[9],建立母乳樣品中POPs多組分聯合檢測方法。樣品依次經過脂肪提取、GPC除脂和SPE分離純化等過程。
2.4.1脂肪提取取5mL解凍后的母乳樣品,加入加標指示物(BDE77,BDE128,BDE181,13C6標記的βHCH,13C12標記的4,4′DDE和4,4′DDT,13C10標記的PCB141,13C12標記的α,β,γHBCD),振蕩后平衡12h。加入5mL水稀釋母乳,再加入1mL飽和草酸鉀溶液和10mL乙醇使蛋白質變性并沉淀。用10mL甲基叔丁基醚和正己烷混合溶液(1〖KG-3∶〖KG-51,V/V)萃取一次,再用5mL正己烷萃取兩次。合并有機萃取液,無水Na4SO4除水,旋轉蒸發儀濃縮至1mL,轉移至細胞瓶并用柔和氮氣吹干,放入干燥器中恒重后,稱量脂肪的質量。
2.4.2GPC凈化與SPE分離
恒重后的脂肪溶于1mL正己烷二氯甲烷混合溶液(1〖KG-3∶〖KG-51,V/V)中,通過GPC除去脂肪等大分子,收集55~175mL淋洗液,經旋轉蒸發儀濃縮至1mL。濃縮液經SPE柱(填料是以2.5%水失活的中性硅膠,0.50g)分離非極性組分與極性組分。非極性組分(F1,含PBDEs,PCBs,DDTs等)由10mL正己烷洗脫下來,氮吹濃縮至1mL后,轉移至進樣瓶,氮吹至干,加入進樣內標(13C10PCB208),定容至20μL異辛烷中。極性組分(F2組分,含HBCDs、HCHs等)用7mL正己烷二氯甲烷混合溶液(1〖KG-3∶〖KG-51,V/V)洗脫,氮吹濃縮至1mL后,轉移至進樣瓶,氮吹至干,加入進樣內標(13C10PCB208),定容至20μL正己烷中。F2組分先經GCMS/MS檢測OCPs的含量,再將溶劑切換至200μL甲醇中,加入進樣內標(d18標記的α,β,γHBCD),經LCMS/MS檢測HBCDs的含量。
2.5儀器分析
2.5.1GCNCIMS測定PBDEs色譜條件:DB5HT高溫毛細管柱(15m×0.25mmi.d.,0.10μm,J&WScientific公司);載氣為氦氣(1.2mL/min),恒流模式;無分流模式,進樣量為1μL;進樣口溫度為290℃。色譜柱初始溫度為110℃,保持5min;以20℃/min升至200℃,保持4.5min;以7.5℃/min升至300℃,保持10min。質譜采用負化學電離源(NCI):甲烷為反應氣(2mL/min);離子源溫度為250℃;四極桿溫度為150℃;傳輸線溫度為300℃。采用選擇離子監測模式(SIM),進行定性與定量分析,監測離子分別為13C10PCB208:m/z473.7和m/z475.7;3~8溴PBDEs:m/z79和m/z81;9~10溴PBDEs:m/z79、m/z81、m/z486.7和m/z488.7。
2.5.2GCMS/MS測定PCBs和OCPs色譜條件:DB5MS(30m×0.25mmi.d.,0.25μm,J&WScientific公司);載氣為高純氦氣(1.2mL/min),恒流模式;無分流模式,進樣量為1μL;進樣口溫度為250℃。色譜柱初始溫度為70℃(保持1min),以10℃/min升溫至160℃,以5℃/min升至280℃(保持5min),以20℃/min升至300℃(保持5min)。質譜采用電子轟擊離子源(EI):碰撞氣為高純氦氣和高純氮氣,淬滅氣為高純氦氣;離子源溫度為230℃;四極桿溫度為150℃;傳輸線溫度為300℃。
2.5.3LCMS/MS測定HBCDsZorbaxSBC18反相色譜柱(250mm×4.6mmi.d.,5μm,Agilent公司);進樣量為20μL;流動相組成為水(A)/甲醇(B)/乙腈(C),流速為0.5mL/min;初始流動相組成為A〖KG-3∶〖KG-5B〖KG-3∶〖KG-5C=10〖KG-3∶〖KG-580〖KG-3∶〖KG-510(V/V,下同),在18min內緩慢調整為A〖KG-3∶〖KG-5B〖KG-3∶〖KG-5C=10〖KG-3∶〖KG-550〖KG-3∶〖KG-540,23min時調整為B〖KG-3∶〖KG-5C=30〖KG-3∶〖KG-570(保持7min),然后在5min內調整為A〖KG-3∶〖KG-5B〖KG-3∶〖KG-5C=10〖KG-3∶〖KG-580〖KG-3∶〖KG-510,最后色譜柱平衡10min。質譜分析采用負離子電噴霧離子源(ESI)和多重離子裂解監測模式(MRM),監測離子對為\[M-H\]
→Br
;高純氮氣為輔助氣、簾氣和碰撞氣;13C12標記的、d18標記的以及未標記的HBCDs的監測離子對分別為m/z652.7→78.8,m/z658.7→78.8,m/z640.7→78.8。
3結果與討論
3.1SPE柱分離與凈化流程的優化
母乳樣品經GPC凈化后,已除去大部分脂肪和蛋白質等大分子基質,對于小分子基質,利用它們與目標化合物在硅膠上的吸附特征不同,通過硅膠SPE柱進一步分離凈化,最大程度減小儀器分析時生物基質的干擾。
在利用SPE柱凈化的同時,通過改變洗脫劑的極性將母乳樣品中目標化合物分成兩個組分:F1組分包括PCBs、PBDEs和DDTs等,F2組分主要是HCHs和HBCDs。首先以正己烷為洗脫劑將非極性組分洗脫下來,然后增加洗脫劑的極性(正己烷二氯甲烷,1〖KG-3∶〖KG-51,V/V),將一定極性的化合物洗脫下來,極性更強的小分子基質則保留在SPE柱上,從而達到分離與凈化的目的。
3.2PCBs和OCPs檢測方法的優化
母乳中PCBs和OCPs的含量采用GCMS/MS測定。母乳樣品中目標化合物經SPE柱分離后,盡管DDTs與HCHs在不同的組分,但是PCBs與DDTs均在同一組分,故建立PCBs和DDTs同時檢測方法,可以減少進樣次數,提高實驗效率。首先,在質譜單掃描模式下,對PCBs和DDTs目標化合物分別進行全掃描(Fullscan,m/z50~500),確定每個化合物的特征碎片離子;然后,將特征碎片離子作為母離子,進行子離子掃描,確定每個目標化合物的定性和定量離子對;最后,通過多級反應監測模式(MRM),對每個化合物的碰撞能等參數逐一優化,使其達到最優。以同樣的方法優化HCHs的儀器參數。最終確定的OCPs和PCBs的定性和定量離子對以及碰撞能如表1所示。
3.3檢出限、回收率及重現性
配制2.5,5,10,25,50,100,200和400ng/mL的混合標準溶液,以標準品與內標濃度比值為Y軸,標準品與內標峰面積比值為X軸,繪制標準曲線。目標化合物在相應濃度范圍內線性良好,相關系數R2≥0.998。取信噪比大于5時的標準溶液,連續進樣6次,計算標準偏差S,根據檢出限(LOD)=3.36S,計算PBDEs,HBCDs,PCBs和OCPs的儀器檢出限分別為0.06~0.25pg/μL,0.08~0.19pg/μL,0.07~0.28pg/μL和0.07~0.18pg/μL。以低濃度的母乳(5mL)為基準,PBDEs,HBCDs,PCBs和OCPs的方法檢出限分別為0.13~1.8pg/mL\,0.31~1.2pg/mL\,0.22~1.4pg/mL和0.20~1.5pg/mL。
由于母乳樣品采集難度大且樣品量相對較小,以及母乳中含有一定濃度的目標化合物,尤其是DDTs和HCHs(我國12省普通地區人群所有母乳中均檢測到DDTs和HCHs,其最低含量分別高達149和52ng/g脂重[10]),故分析方法的研究中一般不用母乳進行測定。以往文獻中曾使用牛奶作為基質進行加標實驗[10~12],Shi等[6]在建立血清和母乳中HBCDs、PBDEs和TBBPA的聯合分析方法時,分別用新生小牛血清和牛奶進行基質加標實驗,結果顯示,兩種基質中目標化合物的回收率一致,但是牛奶中目標化合物回收率的相對標準偏差(RSD)顯著大于新生小牛血清,尤其是αHBCD(13.9%vs2.7%)和βHBCDs(14.0%vs1.7%)。本研究中也有同樣的發現,牛奶作為基質的方法穩定性較差,而新生小牛血清中加標指示物的回收率和RSD值與母乳接近(表2),證實新生小牛血清可以替代母乳用于基質加標實驗。因此,本研究采用新生小牛血清(5mL)進行基質加標實驗,表3列出了各目標化合物的加標回收率。PBDEs,HBCDs,PCBs和OCPs的加標回收率分別為88.7%~98.8%\,88.5%~〖CM(4492.5%\,67.9%~82.3%和81.7%~116.1%,其RSD值分別為8.7%~11.7%、3.6%~4.0%、0.72%~〖CM)
5.5%和7.5%~11.1%,表明本研究建立的多組分聯合檢測方法穩定可靠。
將本方法與文獻報道的人體樣品中多組分聯合分析方法進行比較(表4)可知,本方法具有良好的加標回收率和較低的方法檢出限,能滿足實際樣品測定的要求。
3.4實際樣品的分析
將本研究方法應用于山東濰坊市20份母乳樣品中PBDEs,HBCDs,PCBs和OCPs的分析。圖1是母乳樣品中POPs的典型色譜圖。高溴PBDEs(8~10溴)是濰坊母乳樣品中主要的PBDEs同系物,與本課題組報道的上海地區人群母乳類似[9]。參考高溴PBDEs標準物質,鑒定母乳中高溴PBDEs的同系物組成如圖1A所示。αHBCD是濰坊母乳中最主要的HBCD異構體(圖1B),與Shi等[15]報道的我國12省普通人群母乳類似。PCB28和PCB153是母乳中最主要的PCBs同系物(圖1C),這與我國12省飲食中PCBs的組成特征類似[16]。4,4′DDE和βHCH分別是母乳中最主要的DDTs和HCHs(圖1C〖CM(44和圖1D),與國內其它地區普通人群母乳類似[10]。母乳樣品中POPs的濃度如圖2所示,HBCDs,〖CM)
PBDEs\,PCBs\,HCHs和DDTs的中值濃度分別為2.86\,7.76\,8.84\,140和503ng/g脂重,該濃度水平與我國其它地區普通人群相當[9,10,12,17]。其中,DDTs的含量最高,HCHs次之,與中國疾病預防控制中心對我國12省普通人群的POPs內暴露調查結果一致[10,15,17],表明我國普通人群以DDTs和HCHs為〖CM(44主的暴露特征。這與我國歷史上曾大量生產和使用DDTs和HCHs,以及它們在環境和生物體內難以降解轉化有關。
4結論
本研究建立了母乳樣品中HBCDs,PBDEs,PCBs和OCPs等多種POPs的聯合檢測方法,利用GPC除脂,有效避免了濃硫酸在除脂過程中帶入新的基質干擾,并用SPE柱進一步凈化,極大程度降低了生物樣品中復雜基質的干擾。另外,本研究利用靈敏度高和選擇性好的GCMS/MS檢測OCPs和PCBs的含量,進一步降低了生物基質的干擾。本方法具有良好的加標回收率和較好的重復性,適合于實際母乳樣品中HBCDs、PBDEs、PCBs和OCPs等多種POPs的聯合分析檢測。
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AbstractAmethodwasdevelopedforsimultaneousdeterminationofmultiplepersistentorganicpollutants(POPs)suchashexabromocyclododecanes(HBCDs),polybrominateddiphenylethers(PBDEs),polychlorinatedbiphenyls(PCBs),andorganochlorinepesticides(OCPs)inhumanbreastmilk.Thesamplepretreatmentproceduresincludedliquidliquidextraction,gelpermeationchromatography(GPC),andsolidphaseextraction(SPE)cleanup.Gaschromatographycoupledwithmassspectrometry(GCMS),liquidchromatographycoupledwithtandemmassspectrometry(LCMS/MS),andgaschromatographycoupledtotandemmassspectrometry(GCMS/MS)wereappliedinanalysisofthetargetcompounds.ByusingGPCtoremovehighmolecularmasslipidsandSPEforfurthercleanupandseparationoftargetcompounds,theinterferencesofbiologicalmatrixweregreatlyreduced.ThedevelopedsamplepretreatmentprocedurewassuitableforthemulticomponentanalysisofPOPsinhumansampleswhichhadverylowerPOPsconcentrationsandsmallersamplevolumes.ThesimultaneousdeterminationofPCBsandOCPsbyGCMS/MSexhibitedexcellentsensitivityandselectivity.Themethodrecoveriesweretestedbyspikedtargetcompoundsintofetalbovineserumsamples.Therecoverieswere88.7%-98.8%forPBDEs,88.5%-92.5%forHBCDs,67.9%-82.3%forPCBs,and81.7%-116.1%forOCPs,respectively.Limitsofdetectionofthemethodwereintherangeof0.13-1.8ng/LforPBDEs,0.31-1.2ng/LforHBCDs,0.22-1.4ng/LforPCBs,and0.20-1.5ng/LforOCPs,respectively.Finally,thedevelopedmethodwasappliedinPOPsanalysisof20humanbreastmilksamplesfromWeifangcity.TheresultsshowedthatthemedianconcentrationsofHBCDs,PBDEs,PCB,HCHSandDDTswere2.86,7.76,8.84,140and503ng/glipidweight,respectively.LevelsofthetargetcompoundswerecomparabletothosereportedinhumanbreastmilkforgeneralpopulationfromotherregionsinChina.
KeywordsHexabromocyclododecanes;Polybrominateddiphenylethers;Polychlorinatedbiphenyls;Organochlorinepesticides;Humanbreastmilk
(Received30September2016;accepted11January2017)
ThisworkwassupportedbytheNationalScienceFoundationforDistinguishedYoungScholarsofChina(No.41225013)andthestrategicpriorityResearchProgramoftheChineseAcademyofSciences(No.XDB14010202)