999精品在线视频,手机成人午夜在线视频,久久不卡国产精品无码,中日无码在线观看,成人av手机在线观看,日韩精品亚洲一区中文字幕,亚洲av无码人妻,四虎国产在线观看 ?

板栗殼乙酸乙酯提取物活性研究及其化合物結構分析

2017-04-12 10:05:08史玲玲王建中劉玉軍李怡婧代建蓉滕婉昭
食品與機械 2017年2期

史玲玲 王建中 劉玉軍 馬 超 李怡婧 代建蓉 曹 陽 滕婉昭

(北京林業大學生物科學與技術學院,北京 100083)

板栗殼乙酸乙酯提取物活性研究及其化合物結構分析

史玲玲 王建中 劉玉軍 馬 超 李怡婧 代建蓉 曹 陽 滕婉昭

(北京林業大學生物科學與技術學院,北京 100083)

為了研究板栗殼乙酸乙酯提取物體外活性,并分析其活性成分,依次采用DPPH法、ABTS法測定板栗殼乙酸乙酯提取物的抗氧化活性;PNPG法測定其體外抑制α-葡萄糖苷酶活性;超高效液相色譜—質譜聯用技術(UPLC—MS/MS)對其成分進行分析。結果表明:板栗殼乙酸乙酯提取物具有較強的清除DPPH自由基、ABTS自由基的能力且可顯著地抑制α-葡萄糖苷酶的活性,其有效成分主要為脂溶性黃酮類化合物。

板栗殼;乙酸乙酯提取物;抗氧化活性;α-葡萄糖苷酶;化合物結構

板栗(CastaneamollissimaBlume)是殼斗科栗屬植物,原產、主產于中國,有“干果之王”的美稱[1]。板栗殼作為板栗加工業中的廢棄物,近年來也越來越引起人們的關注。研究[2-4]報道板栗殼可以作為水溶液中農藥、銅、鉛、鎘以及其他重金屬的吸附劑。由于板栗殼中含有酚類、有機酸、多糖、內酯、香豆素、鞣質、甾體和黃酮等活性成分[5-6],其水提取物具有多種功能,如抗氧化作用和保肝作用[7-8],因此有必要對板栗殼進行研究以考察其在食品、藥品或保健品等方面的應用潛力。對板栗殼的研究雖有報道,但多集中于板栗殼中多酚的提取,色素的提取工藝及其抗氧化研究[9-12];而研究板栗殼提取物抑制α-葡萄糖苷酶活性的報道僅限于板栗殼的正丁醇提取物[13],未見對板栗殼乙酸乙酯提取物的體外抗氧化活性、抑制α-葡萄糖苷酶活性以及對活性成分進行深入分析的系統研究,因此,本研究擬采用DPPH法和ABTS法,研究板栗殼乙酸乙酯提取物的抗氧化活性,采用PNPG法測定其對體外α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用;同時,應用UPLC—MS/MS分析板栗殼乙酸乙酯提取物的活性成分,尋找其潛在的應用價值,旨在為板栗殼的綜合開發利用提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料

板栗殼:收集于河北省遷西縣(遷西板栗的主產區)。

1.2 試劑

DPPH、ABTS、水溶性維生素E(Trolox):≥98.0%,美國Sigma-Aldrich有限公司;

高硫酸鉀:分析純,國藥集團化學試劑有限公司;

對硝基苯-α-D-葡萄糖苷(PNPG):≥99.0%,美國Sigma-Aldrich有限公司;

α-葡萄糖苷酶:10 units/mg,美國Sigma-Aldrich有限公司;

阿卡波糖:≥99.0%,武漢遠成醫藥有限公司;

甲醇:色譜純,美國Thermo Fisher Scientific公司;

甲酸:色譜純,北京邁瑞達科技有限公司。

1.3 儀器與設備

光吸收全波長酶標儀:TECAN M200 PRO型,瑞士TECAN公司;

電子天平:ML104型,梅特勒-托利多公司;

串聯四極桿質譜系統:QTRAP 5500型,美國AB SCIEX公司;

液相色譜儀:Agilent 1260 型,美國安捷倫公司。

1.4 試驗方法

1.4.1 提取物的制備 干燥的板栗殼經除雜、粉碎后,以料液比1∶9(g/mL)的比例添加75%乙醇溶液對板栗殼粉末進行加熱回流提取2 h,轉移提取液至另一容器內,藥渣部分重復提取一次,合并提取液,過濾,對乙醇提取液進行旋蒸,接著對乙醇蒸干后剩余的水相部分用蒸餾水以1∶1比例進行稀釋,之后依次采用與稀釋液等體積的乙酸乙酯萃取兩次,得到板栗殼乙酸乙酯萃取溶液,經旋蒸得到乙酸乙酯提取物的浸膏。

1.4.2 板栗殼乙酸乙酯提取物的抗氧化活性測定 精確稱取乙酸乙酯提取物浸膏0.05 g,用95%乙醇定容到25 mL,得到溶液質量濃度為2 mg/mL的溶液,再將各溶液分別稀釋為0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7,0.8 mg/mL的待測樣品溶液。

(1) 對DPPH自由基清除能力測定:量取0.01 mL不同質量濃度的樣品溶液,加入0.2 mL甲醇,以及0.025 mL 1 mmol/L的DPPH乙醇溶液于96微孔板中,混勻后室溫避光放置30 min。分別測定其在517 nm處的吸光度值。以甲醇為空白對照,以0.025 mL甲醇替代抗氧化劑溶液做空白試驗。以Trolox(水溶性維生素E)作為陽性對照,根據文獻[14]按式(1)計算板栗殼乙酸乙酯提取物對DPPH自由基的清除能力。

(1)

式中:

k——DPPH自由基清除率,%;

Ac——未加樣品溶液的DPPH自由基吸光度值;

Ai——加入樣品溶液反應后的DPPH自由基吸光度值。

(2) 對ABTS自由基清除能力測定:將7 mmol/L的ABTS溶液和140 mmol/L的高硫酸鉀溶液以62.5∶1的比例混合,室溫避光靜置16 h,形成ABTS自由基儲備液。用無水甲醇稀釋該儲備液,使其在734 nm下吸光度為0.70±0.02。分別取0.015 mL不同質量濃度的樣品甲醇溶液與0.285 mL ABTS+工作液于96微孔板中混合10 s,30 ℃下靜置6~10 min,以無水甲醇為空白在734 nm波長下測吸光度。板栗殼乙酸乙酯提取物對ABTS自由基的清除能力按式(2)計算:

(2)

式中:

c——ABTS自由基清除率,%;

Ao——未加樣品溶液的ABTS自由基吸光度值;

As——加入樣品溶液反應后的ABTS自由基吸光度值。

半數抑制率(IC50)的計算:以樣品的濃度對自由基清除率作圖并進行線性擬合,并計算(IC50)值。其中,IC50值定義為清除率為50%時所需抗氧化劑的濃度。

1.4.3 板栗殼乙酸乙酯提取物對α-葡萄糖苷酶抑制活性的測定 采用PNPG法,根據文獻[15],反應體系改進如下:量取50 μL不同質量濃度的板栗殼乙酸乙酯提取物溶液于96微孔板中,加入1 U/mL的α-葡萄糖苷酶溶液,混勻,37 ℃ 恒溫 10 min 后,加入2 mmol/L PNPG溶液30 μL,用0.1 mmol/L 磷酸鈉緩沖液(pH 6.8)定容至250 μL。反應過程在37 ℃下進行,每隔15 min測定一次405 nm處的吸光度值,直至反應完全。以阿卡波糖為陽性對照,同時設定陰性對照組(緩沖液+酶液+底物),空白對照組(緩沖液)。酶抑制活性按式(3)計算:

(3)

式中:

I——酶抑制活性,%;

AX——樣品OD值-樣品空白OD值;

An——陰性對照OD值。

半數抑制濃度(IC50)的計算:以樣品的濃度對酶抑制活性作圖并進行線性擬合,并計算IC50值。其中,IC50值定義為抑制率為50%時所需酶抑制劑的濃度。

1.4.4 板栗殼乙酸乙酯提取物成分分析 精密稱取乙酸乙酯提取物浸膏5 mg,用色譜甲醇溶解,定容至10 mL;超聲輔助溶解完全后經0.45 μm微孔濾膜過濾后備用。

分析條件:根據文獻[16]修改如下:Diamonsil C18(2)色譜柱,(250 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30 ℃;流動相:流動相A為甲醇,流動相B為超純水(用甲酸調pH為2.05);梯度洗脫,采樣時間80 min;流速0.6 mL/min;自動進樣器進樣量:20 μL;二極管陣列檢測器(DAD)全掃描波長:190~400 nm。紫外檢測波長280 nm。質譜條件:采用電噴霧離子源(ESI),負離子模式離子掃描范圍:100~1 000m/z;離子原溫度(TEM):550 ℃;離子原電壓:-4 500 V;裂解電壓(DP):-60 V;碰撞能量(CE):-35 eV;碰撞能量擴展(CES):15 eV。霧化氣體:氮氣,輔助氣1為379.225 kPa,輔助氣2為344.75 kPa;數據采集所用軟件:Analyst 1.5 software。流動相由pH 2.05的甲酸溶液(A)和甲醇溶液(B)組成,梯度洗脫以15%的甲醇開始15 min,之后的25 min內增長到25%甲醇,65 min時增長至75%甲醇,之后在70 min時減少至15%甲醇,以此濃度再持續洗脫10 min。

2 結果與分析

2.1 板栗殼乙酸乙酯提取物的抗氧化活性

2.1.1 清除DPPH自由基能力 由圖1可知,板栗殼乙酸乙酯提取物在一定濃度范圍內(0.1~0.8 mg/mL),自由基的清除率與樣品濃度呈正相關,隨著樣品溶液濃度的升高,其對自由基的清除率也越來越高。其中當溶液濃度為0.6 mg/mL時,板栗殼乙酸乙酯提取物對DPPH自由基的清除率達到70%以上。但其對DPPH自由基的清除能力弱于陽性對照品Trolox,當Trolox達到一定濃度(0.4 mg/mL)后對DPPH自由基的清除率可達到90%以上,之后趨于平緩。板栗殼乙酸乙酯提取物以及Trolox對DPPH自由基的抑制中濃度(IC50)分別為(0.326±0.050),(0.160±0.250) mg/mL。

圖1 板栗殼乙酸乙酯提取物對DPPH自由基的清除能力

Figure 1 Scavenging capacity of DPPH free radical from ethyl acetate extracts of Chestnut shell

2.1.2 板栗殼乙酸乙酯提取物清除ABTS自由基能力 由圖2可知,板栗殼乙酸乙酯提取物具有清除ABTS自由基的能力,在一定濃度范圍內(0.1~0.5 mg/mL),自由基的清除率與樣品濃度呈正相關。其中當溶液濃度為0.5 mg/mL時,乙酸乙酯提取物對ABTS自由基的清除率達到90%以上。但在一定濃度范圍內(0.1~0.4 mg/mL),板栗殼乙酸乙酯提取物對ABTS自由基的清除能力弱于陽性對照Trolox,但當樣品溶液濃度高于0.5 mg/mL時,二者清除ABTS自由基能力相當。板栗殼乙酸乙酯提取物以及Trolox對ABTS自由基的抑制中濃度(IC50)分別為(0.164±0.050),(0.099±0.150) mg/mL。

圖2 板栗殼乙酸乙酯提取物對ABTS自由基的清除能力

Figure 2 Scavenging capacity of ABTS free radical from ethyl acetate extracts of Chestnut shell

2.2 板栗殼乙酸乙酯提取物抑制α-葡萄糖苷酶活性能力

對硝基苯-α-D-葡萄糖苷(PNPG)經α-葡萄糖苷酶水解可產生對硝基苯酚,其在水溶液中顯黃色,于405 nm處呈特異性吸收。因此可以通過檢測對硝基苯酚的生成量而檢測α-葡萄糖苷酶的活性[17]。

由圖3、4可知,在反應時間165 min內,酶反應完全。板栗殼乙酸乙酯提取物在2.5~12.5 μg/mL時,隨樣品濃度的增加,其對α-葡萄糖苷酶的抑制作用也不斷增加。當樣品濃度高于10 μg/mL時,其對α-葡萄糖苷酶的抑制率達80%以上,遠高于對照品阿卡波糖對α-葡萄糖苷酶的抑制率;板栗殼乙酸乙酯提取物的IC50為 2.536 μg/mL,而市售阿卡波糖的IC50為200 μg/mL,表明板栗殼乙酸乙酯提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制活性明顯高于阿卡波糖。本研究表明板栗殼乙酸乙酯提取物可顯著地抑制α-葡萄糖苷酶的活性,但目前還僅限于體外試驗,板栗殼乙酸乙酯提取物活性成分較為復雜,需要進一步研究。

2.3 板栗殼醇提物乙酸乙酯提取物成分的UPLC—MS/MS分析

板栗殼乙酸乙酯提取物的色譜圖見圖5。

在ESI負離子模式下,通過對板栗殼乙酸乙酯提取物樣品的總離子色譜圖進行離子色譜圖提取,根據主要化合物的質譜數據[M-H]-m/z和[M-H]-2m/z值與化合物的相對分子質量的對比,并結合文獻對照,對化合物進行分析鑒別,初步推測出板栗殼中10種化合物。化合物1的準分子離子峰[M-H]-m/z為179,說明該化合物的分子量為180,與咖啡酸的分子量相同。且有碎片離子m/z147.1,與文獻[18]報道的咖啡酸一致。因此可以推斷該化合物是咖啡酸;化合物2的準分子離子峰[M-H]-m/z為353,所以得出其分子量為354。并且有m/z147.1的碎片離子,與文獻[18]報道的綠原酸一致,可推測該化合物為綠原酸;化合物3的準分子離子峰[M-H]-m/z285,分子量為286,二級質譜圖中碎片有m/z284.8,與文獻[19]報道的山奈酚的特征峰一致,因此該化合物可能是山奈酚;化合物4的準分子離子峰[M-H]-m/z為169,說明其分子量為170,與沒食子酸的分子量一致,且有m/z79.0的碎片離子,符合文獻[20]報道的沒食子酸的裂解峰,因此化合物可能是沒食子酸;化合物5的準分子離子峰[M-H]-m/z是317,故分子量是318。且有碎片離子m/z137.0,與文獻[21]報道的楊梅素一致,由此可以初步假設該化合物是楊梅素;化合物6的準分子離子峰[M-H]-為m/z301,故分子量為302,符合槲皮素的分子量。且產生的二級質譜圖中有m/z255.0,與文獻[22]報道的槲皮素裂解特征一致,因此初步推斷該化合物為槲皮素;化合物7的準分子離子峰[M-H]-m/z是 163,說明該化合物的分子量為164,與4-香豆酸的分子量相同。MS2有m/z93碎片,與文獻[23]報道的4-香豆酸一致。由此可初推測該化合物是4-香豆酸;化合物8的準分子離子峰[M-H]-m/z是283,故分子量為284,與大黃酸的分子量一致。且有碎片離子m/z為211.3,與文獻[24]報道的大黃酸較一致。所以該化合物可能是大黃酸;化合物9的準分子離子峰[M-H]-m/z是137,故分子量為138,且有碎片離子92.2,符合文獻[25]報道的4-羥基苯甲酸標準品的裂解峰。故可以推斷該化合物是4-羥基苯甲酸;化合物10的準分子離子峰[M-H]-m/z為165,故分子量為166。且有m/z121.0的碎片,與文獻[26]報道的鄰苯二甲酸一致,可推測該化合物為鄰苯二甲酸。具體見表1。

圖3 不同濃度板栗殼乙酸乙酯提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制作用

Figure 3 Inhibitory activity ofα-glucosidase by ethyl acetate extracts of Chestnut shell at different concentrations

圖4 不同濃度板栗殼乙酸乙酯提取物對α-葡萄糖苷酶的抑制率

Figure 4 The inhibition rate ofα-glucosidase by ethyl acetate extracts of chestnut shell at different concentrations

圖5 板栗殼樣品UPLC圖Figure 5 UPLC chromatogram of chestnut shell

3 結論

本試驗系統地研究了板栗殼中乙酸乙酯提取物的體外抗氧化活性和α-葡萄糖苷酶抑制活性,結果表明板栗殼乙酸乙酯提取物具有較強的抗氧化活性和顯著的α-葡萄糖苷酶抑制活性。進一步推測了這些活性成分主要為脂溶性黃酮類化合物,為板栗殼作為天然產物的開發與利用提供了理論和試驗依據。板栗殼提取物具有較強的天然產物活性,有著廣闊的發展和應用前景。近年來,板栗殼中有效成分的提取工藝已成為研究熱點,但是對于板栗殼中成分的研究和純化以及體內試驗等還有待于進一步研究,這也將成為相關研究領域的研究熱點。

表1 板栗殼乙酸乙酯提取物中化合物結構推斷Table 1 Constructions in Ethyl acetate extracts of chestnut shell

[1] 周丹, 洪珊茹, 趙巧嬌, 等. 板栗栗蓉的制作研究[J]. 食品科技, 2014, 39(3): 61-64.

[2] YAO Zeng-yu, QI Jian-hua, WANG Li-hua. Equilibrium, kinetic and thermodynamic studies on the biosorption of Cu(II) onto chestnut shell[J]. Journal of Hazardous Materials, 2010, 174(1/3): 137-143.

[3] DONG Ya-chen, DAI Yi-ning, XU Teng-yang, et al. Biodegradation of chestnut shell and lignin-modifying enzymes production by the white-rot fungi Dichomitus squalens, Phlebia radiata[J]. Bioprocess and Biosystems Engineering, 2014, 37(5): 755-764.

[4] PIRRA A, LUCAS M S, PERES J A. Aerobic Biological Treatment of Chestnut Processing Wastewater[J]. Water, Air, & Soil Pollution, 2012, 223(7): 3 721-3 728.

[5] 趙德義, 高文海, 花成文, 等. 板栗殼化學成分的初步研究[J]. 陜西林業科技, 2003(2): 1-3.

[6] 鄭佳欣, 李怡婧, 汪晨陽, 等. 板栗殼鞣質提取及其對DPPH自由基清除活性的研究[J]. 食品工業科技, 2016, 37(3): 211-215.

[7] NOH J R, KIM Y H, GANG G T, et al. Hepatoprotective effects of chestnut (Castanea crenata) inner shell extract against chronic ethanol-induced oxidative stress in C57BL/6 mice[J]. Food & Chemical Toxicology An International Journal Published for the British Industrial Biological Research Association, 2011, 49(7): 1 537-1 543.

[9] 李莉, 顧欣, 崔潔, 等. 板栗殼棕色素抗氧化性研究與紅外光譜分析[J]. 食品與發酵工業, 2011, 37(3): 41-45.

[10] 王慧. 板栗殼色素提取工藝研究[J]. 食品研究與開發, 2014, 35(2): 47-50.

[12] YOU Ting-ting, ZHOU Su-kun, WEN Jia-long, et al. Chemical composition, properties, and antimicrobial activity of the water-soluble pigments from Castanea mollissima shells[J]. Journal of Agricultural & Food Chemistry, 2014, 62(8): 1 936-1 944.

[13] 劉莉, 唐新玥, 張欣珂, 等. 板栗殼中多酚的提取純化及其抑制α-葡萄糖苷酶活性的研究[J]. 食品工業科技, 2015, 36(6): 265-268.

[14] LUO Jian-guang, LI Lu, KONG Ling-yi. Preparative separation of phenylpropenoid glycerides from the bulbs of Lilium lancifolium, by high-speed counter-current chromatography and evaluation of their antioxidant activities[J]. Food Chemistry, 2012, 131(3): 1 056-1 062.

[15] CHAPDELAINE P, TREMBLAY R R, DUBé J Y. P-Nitrophenol-alpha-D-glucopyranoside as substrate for measurement of maltase activity in human semen[J]. Clinical Chemistry, 1978, 24(2): 208-211.

[16] 焦中高, 劉杰超, 周紅平, 等. 棗果中酚類物質的高效液相色譜分析[J]. 食品與發酵工業, 2008, 34(3): 133-136.

[17] 錢瑾, 黎明, 吳嘉瑞, 等. 消渴丸中藥成分對α-葡萄糖苷酶抑制作用的研究[J]. 中國實驗方劑學雜志, 2012, 18(7): 173-176.

[18] 單鳴秋, 錢雯, 高靜, 等. UPLC—MS分析側柏葉中黃酮類化合物[J]. 中國中藥雜志, 2011, 36(12): 1 626-1 629.

[19] 李亭亭, 徐新房, 王子健, 等. 牽牛子生品、炒品酚酸類成分的HPLC—MS分析[J]. 中醫藥學報, 2016, 44(1): 11-14.

[20] 梁艷, 于世鋒, 陳衛軍, 等. 山奈酚的電噴霧質譜裂解途徑[J]. 應用化學, 2009, 26(10): 1 250-1 252.

[21] 朱慧明. 基于液質聯用技術的芪藶強心膠囊中多組分分析與藥代動力學研究[D]. 石家莊: 河北醫科大學, 2014: 126-128.

[22] 師仁麗, 翟龍飛, 于文龍, 等. 利用DAD—HPLC和LC—MS法檢測金絲小棗中黃酮類化合物[J]. 食品科學, 2016, 37(16): 123-127.

[23] 李宇航, 戴海學, 汪明明, 等. 槲皮素的電噴霧離子阱質譜分析[J]. 質譜學報, 2009, 30(6): 374-378.

[24] 朱瑞芝, 王凱, 吳新華, 等. 超高效液相色譜—質譜法同時快速測定煙葉中的幾種芳香酸和酚酸[J]. 分析試驗室, 2009, 28(10): 108-112.

[25] 羅益遠, 劉娟秀, 劉廷, 等. UPLC—MS/MS法同時測定何首烏中二苯乙烯、蒽醌、黃酮及酚酸類成分[J]. 質譜學報, 2016, 37(4): 327-335.

[26] 方玲玲, 肖作兵, 牛云蔚, 等. 超高效液相色譜串聯質譜法測定櫻桃酒中的5種酚酸[J]. 食品與發酵工業, 2011, 37(6): 172-176.

Study on acivity and structure analysis of ectracts from Chinese chestnut shell by ethyl acetate

SHI Ling-lingWANGJian-zhongLIUYu-junMAChaoLIYi-jingDAIJian-rongCAOYangTENGWan-zhao

(CollegeofBiologicalScienceandBiotechnology,BeijingForestryUniversity,Beijing100083,China)

Investigated and analyzed the activity of ethyl acetate extract of chestnut shell and the components by UPLC—MS/MS. Antioxidant activities were carried out by DPPH radical scavenging assays and ABTS radical scavenging assays. The inhibitory activity of alpha glycosidase enzymes was measured by PNPG method. Qualitative analysis was performed by UPLC—MS/MS for analysis of major active components in ethyl acetate extracts. It determined that ethyl acetate extracts of Chestnut shell possessed remarkable DPPH radical scavenging activity, ABTS radical scavenging activity and high inhibitory activity of alpha glycosidase enzymes owing to the fat-soluble flavonoids are the main active components.

Chestnut shell; ethyl acetate extracts; antioxidant activity; alpha glycosidase enzymes inhibitory activity; UPLC—MS/MS

國家林業公益性行業科研專項(編號:201204401)

史玲玲,女,北京林業大學中級實驗師,在讀博士研究生。

王建中(1951—),男,北京林業大學教授,碩士。 E-mail:w62338221@163.com

2016—12—15

10.13652/j.issn.1003-5788.2017.02.028

主站蜘蛛池模板: 18禁黄无遮挡免费动漫网站| 在线观看91精品国产剧情免费| 免费a在线观看播放| 亚洲成人一区在线| 日韩在线中文| 国产视频大全| 亚洲综合中文字幕国产精品欧美| 青青草91视频| 香蕉伊思人视频| 亚洲第一网站男人都懂| 国产99视频在线| 99ri精品视频在线观看播放| 亚洲成人一区二区| 尤物精品视频一区二区三区| 久久精品无码国产一区二区三区| 亚洲欧美日韩成人高清在线一区| 免费xxxxx在线观看网站| 一级毛片在线直接观看| 国产免费精彩视频| 国产日本欧美在线观看| 亚洲欧美日韩动漫| 国产精鲁鲁网在线视频| 色视频久久| 欧美精品一二三区| 久久久久青草大香线综合精品| 67194成是人免费无码| 99无码熟妇丰满人妻啪啪| 国产精品女人呻吟在线观看| 国产在线精彩视频二区| 2021最新国产精品网站| 啪啪啪亚洲无码| 欧美专区在线观看| 日韩成人午夜| 免费看a级毛片| 99精品国产高清一区二区| 久久99精品国产麻豆宅宅| 午夜福利无码一区二区| 亚洲日韩在线满18点击进入| 欧美在线一二区| 黄色污网站在线观看| 911亚洲精品| 亚洲黄色成人| 国产污视频在线观看| 国产成人AV男人的天堂| 日本不卡免费高清视频| 五月六月伊人狠狠丁香网| 欧美国产日韩在线播放| 视频在线观看一区二区| 四虎影视永久在线精品| 日韩经典精品无码一区二区| 久久人人妻人人爽人人卡片av| 亚洲永久视频| 又猛又黄又爽无遮挡的视频网站| 青青草国产免费国产| 国产真实自在自线免费精品| 日韩精品成人在线| 亚洲人成在线精品| 三上悠亚一区二区| 精品国产Av电影无码久久久| 91成人在线免费视频| 欧美精品伊人久久| 欧美天堂在线| 国产资源站| 亚洲第一黄色网| 爱爱影院18禁免费| 成年女人18毛片毛片免费| 在线观看网站国产| 91啦中文字幕| 日韩久草视频| 国产一区二区在线视频观看| 欧美成人精品在线| 国产后式a一视频| 日韩福利在线观看| 青青网在线国产| 九色综合伊人久久富二代| 色悠久久综合| 欧美日韩激情| 色135综合网| 国产精品手机在线播放| 亚洲一区黄色| 国产亚洲精品在天天在线麻豆 | 国产欧美成人不卡视频|