馬雪倩,俞佳斌,馬芳
(1.四川大學(xué)華西第二醫(yī)院出生缺陷與相關(guān)婦兒疾病及西部婦幼研究院四川大學(xué)-香港中文大學(xué)生殖醫(yī)學(xué)聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,成都 610000;2.四川大學(xué)華西第二醫(yī)院婦產(chǎn)科,成都 610041;3.東南大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,南京 210009;4.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬婦產(chǎn)科醫(yī)院,杭州 31006)
女性垂體促性腺激素糖基化修飾的含量及作用機(jī)制研究進(jìn)展
馬雪倩1,4,俞佳斌3,馬芳1,2*
(1.四川大學(xué)華西第二醫(yī)院出生缺陷與相關(guān)婦兒疾病及西部婦幼研究院四川大學(xué)-香港中文大學(xué)生殖醫(yī)學(xué)聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,成都 610000;2.四川大學(xué)華西第二醫(yī)院婦產(chǎn)科,成都 610041;3.東南大學(xué)臨床醫(yī)學(xué)院,南京 210009;4.浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬婦產(chǎn)科醫(yī)院,杭州 31006)
卵泡刺激素(FSH)和黃體生成素(LH)在正常女性生理周期中的含量變化呈現(xiàn)一定的波動(dòng)性,并且其肽鏈末端糖基(唾液酸以及磺化乙酰半乳糖胺)的含量也相對(duì)出現(xiàn)一些變化。現(xiàn)已明確,這兩種激素上的唾液酸和磺化乙酰半乳糖胺均是在蛋白合成之后,由半乳糖轉(zhuǎn)移酶和乙酰半乳糖胺轉(zhuǎn)移酶在FSH及LH 的肽鏈末端通過(guò)天門(mén)冬氨酸殘基誘導(dǎo)形成。由于這兩種酶對(duì)FSH及LH 的相對(duì)活性不同,使得FSH的性質(zhì)主要受唾液酸影響,而LH則主要受磺化乙酰半乳糖胺影響。這兩種糖基也通過(guò)不同的機(jī)制影響著女性垂體促性腺激素的半衰期、酸堿性、穩(wěn)定性等性質(zhì),并通過(guò)下游的信號(hào)通路對(duì)后面的性激素合成等帶來(lái)改變。
卵泡刺激素; 黃體生成素; 唾液酸; 磺化乙酰半乳糖胺
(JReprodMed2017,26(2):183-187)
卵泡刺激素(FSH)和黃體生成素(LH)是女性重要的促性腺激素,它們除了具有調(diào)節(jié)女性生理周期、誘導(dǎo)排卵等作用以外,也是目前臨床上用于促排卵及疾病治療等操作的關(guān)鍵藥物[1-2]。雖然近年這兩種藥物提取與制造工藝不斷改進(jìn),但是其臨床效果卻往往隨著劑量、類(lèi)型的不同有著較大的差異。目前最新研究認(rèn)為,這種效果上的差異很可能來(lái)源于其糖基化(主要是唾液酸化和磺化)的類(lèi)型與數(shù)目的不同[3]。一直以來(lái)關(guān)于這兩種激素糖基化的含量改變、功能原理的文獻(xiàn)并不多,以致于學(xué)術(shù)界對(duì)這個(gè)問(wèn)題并沒(méi)有充分地認(rèn)識(shí)及解決。本文將總結(jié)近年來(lái)關(guān)于女性垂體促性腺激素糖基化的相關(guān)文章,對(duì)其規(guī)律、特點(diǎn)、功能及相關(guān)假說(shuō)進(jìn)行概述,期望能夠給相關(guān)的研究及應(yīng)用提供總結(jié)式參考,并對(duì)如何提高臨床上排卵成功率等問(wèn)題帶來(lái)一些建議或思考。
FSH和LH均由垂體的嗜堿性細(xì)胞合成和分泌。FSH分子量約33 000,LH約30 000,均是異二聚體,由α和β兩個(gè)亞基組成。兩者的α亞基相似,由同一個(gè)基因所編碼,92個(gè)氨基酸構(gòu)成,其作用主要是決定和維持多肽鏈的生物活性;而β亞基則略有不同,這也是造成兩者功能性質(zhì)上差異的原因之一[4]。
在女性體內(nèi),F(xiàn)SH及LH由垂體進(jìn)行脈沖式發(fā)放進(jìn)入血液循環(huán)到達(dá)卵巢,通過(guò)與成熟卵泡的相互作用從而達(dá)到調(diào)節(jié)女性生理周期、誘導(dǎo)排卵、調(diào)節(jié)性激素以及調(diào)節(jié)妊娠等作用[5]。此外,F(xiàn)SH也一直是臨床上體外受精(IVF)中用于促排卵的主要藥物[6]。歷史上先后用過(guò)多種來(lái)源的FSH,從孕馬尿、孕婦尿到提取的尿源性FSH、實(shí)驗(yàn)室純化以及重組合成的FSH進(jìn)行治療[7]。近年的研究發(fā)現(xiàn),絕經(jīng)婦女尿中提取的垂體促性腺激素與體外重組的垂體促性腺激素,以及正常年輕女性垂體促性腺激素相比,其肽鏈末端特定位置的糖基化有一定的差異[8-9]。提示不同的糖基化修飾會(huì)在一定程度上影響FSH及LH的性質(zhì)與功能。研究表明,在正常的FSH及LH 分子上,其β亞基含有2個(gè)N連接的糖基化位點(diǎn)以及4個(gè)O連接的糖基化位點(diǎn),糖基化數(shù)量或位置的差異往往會(huì)對(duì)其性質(zhì)造成影響[10]。通過(guò)電泳等方式,確定這兩種激素末端的糖基主要有唾液酸(sialic acids)及磺化的乙酰半乳糖胺(sulfonated N-acetylgalactosamine,sulfonated GalNAc)。這兩種陰離子糖基對(duì)FSH和LH的半衰期、穩(wěn)定性、酸堿性及功能有重要影響[11-12]。
研究人員通過(guò)大量實(shí)驗(yàn),研究處于月經(jīng)周期的不同時(shí)段的正常女性、絕經(jīng)后婦女、多囊卵巢綜合征(PCOS)患者血液里FSH、LH糖基的含量,以及肽鏈末端磺化乙酰半乳糖胺和唾液酸個(gè)數(shù)的波動(dòng)狀況。
1.正常月經(jīng)周期:現(xiàn)已明確,血清中FSH及LH的濃度在上一周期結(jié)束的時(shí)候,均達(dá)到整個(gè)周期的最低點(diǎn)。此后均以不同的速率及波動(dòng)幅度上升,大約在月經(jīng)中期,即排卵前后,分別達(dá)到峰值,之后再緩慢下降。而這兩種激素上唾液酸和乙酰半乳糖胺的含量變化則相對(duì)復(fù)雜。
Wide等[13]研究表明在正常月經(jīng)周期中FSH上唾液酸糖基的表達(dá)成明顯的M形,其在月經(jīng)中期以及周期首尾最低,而在三個(gè)低谷之間,也就是在排卵期前后含量最高;另一方面,磺化乙酰半乳糖胺在LH上明顯表達(dá)為V形,在月經(jīng)中期達(dá)最低點(diǎn),其前后表現(xiàn)為迅速下降或上升。提示FSH及LH上的唾液酸糖基及乙酰半乳糖胺基團(tuán)的含量波動(dòng)可能與排卵的發(fā)生有關(guān)聯(lián)。其作為影響這兩種促性腺激素與靶細(xì)胞受體相互作用的重要糖基,可協(xié)助誘導(dǎo)在靶細(xì)胞內(nèi)產(chǎn)生cAMP(環(huán)化一磷酸鳥(niǎo)苷)或IP(磷酸肌醇)作為第二信使向下游進(jìn)行信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),從而影響卵泡的發(fā)育和調(diào)節(jié)類(lèi)固醇激素的產(chǎn)生。
2.絕經(jīng)后:實(shí)驗(yàn)人員對(duì)絕經(jīng)后婦女血清中FSH、LH進(jìn)行了測(cè)定[14]。結(jié)果表明,絕經(jīng)后女性FSH及LH的酸性較其他階段女性的明顯增強(qiáng),兩種分子上的唾液酸含量均在絕經(jīng)后達(dá)到最高,而乙酰半乳糖胺含量則相對(duì)濾泡期和黃體期明顯降低,僅相當(dāng)于月經(jīng)中期的含量。在這個(gè)時(shí)期,F(xiàn)SH的穩(wěn)定性也顯著上升,提示唾液酸糖基數(shù)的增加或乙酰半乳糖胺的減少對(duì)于激素本身的半衰期、酸堿性等帶來(lái)影響。而在人工促排卵、體外受精的操作過(guò)程中,曾經(jīng)使用絕經(jīng)婦女的尿液中提取出的FSH,但其效果與后來(lái)體外重組得到的FSH相比略有差異,除了提取工藝造成的濃度、純度差異以外,目前認(rèn)為其上這兩種糖基的含量及分布差異是更重要的原因[8]。
3.PCOS患者:PCOS患者血清中典型的促性腺激素變化是FSH低下伴隨LH升高,LH甚至高于濾泡期。但LH分子上的乙酰半乳糖胺明顯下降,而唾液酸含量則有所上升,高于濾泡期和黃體期[15],這個(gè)現(xiàn)象與絕經(jīng)后婦女表現(xiàn)出一定的相似性。此外,發(fā)現(xiàn)PCOS患者血清中FSH的唾液酸成分增多并伴隨乙酰半乳糖胺的減少,甚至出現(xiàn)了相當(dāng)比例(92%)的不含后者的FSH分子[14]。
將PCOS患者按照體重指數(shù)(BMI)的不同分為肥胖與非肥胖,發(fā)現(xiàn)這兩類(lèi)患者FSH及LH上乙酰半乳糖胺的含量變化與BMI呈現(xiàn)一定的相關(guān)性,肥胖患者FSH和LH分子上乙酰半乳糖胺的含量總體而言高于非肥胖患者[14]。提示對(duì)于PCOS患者,盡管臨床癥狀主要由下丘腦-垂體-卵巢軸的激素紊亂造成,但唾液酸的增多以及乙酰半乳糖胺的減少同樣與患者的卵泡發(fā)育異常及排卵障礙的發(fā)生有關(guān),并會(huì)通過(guò)一定的機(jī)制影響癥狀的表現(xiàn)強(qiáng)度[16]。
研究表明FSH和LH的亞基的N端附近均含有數(shù)目不等的由天門(mén)冬酰胺(Asn)連接的單糖,這其中包括著唾液酸以及磺化乙酰半乳糖胺[17]。在磺化的單糖附近往往會(huì)有SO4-4GalNAcβ1,4GlcNAcβ1,2Manα這樣的序列誘導(dǎo)形成單或雙磺化結(jié)構(gòu),用以誘導(dǎo)形成磺化糖基[13]。而相比之下,唾液酸單糖結(jié)構(gòu)的附近序列則表現(xiàn)出很強(qiáng)的結(jié)構(gòu)差異性。
FSH和LH在垂體嗜堿性細(xì)胞中完成蛋白前體的合成與初步修飾之后,會(huì)在N端的乙酰葡糖胺(N-acetylglucosamine,GlcNAc)的引導(dǎo)下進(jìn)入中間高爾基網(wǎng),在高爾基網(wǎng)反面將不同的糖基催化連接到特定的Asn上,共同作為之后糖基化的底物。此處有兩種糖基化的關(guān)鍵酶,分別是半乳糖轉(zhuǎn)移酶(β1-4galactosyltransferase)催化形成唾液酸基團(tuán),以及乙酰半乳糖胺轉(zhuǎn)移酶(β1-4GalNAc-transferase)催化生成磺化乙酰半乳糖胺基團(tuán)[18]。在肽鏈的N端具體形成哪一種糖基則取決于兩種酶的相對(duì)活性。乙酰半乳糖胺轉(zhuǎn)移酶可以識(shí)別LH分子β亞基上的脯氨酸-亮氨酸-精氨酸(Pro-Leu-Arg)三肽結(jié)構(gòu),后者可以誘導(dǎo)增強(qiáng)該酶的活性,從而生成更多的磺化乙酰半乳糖胺[19-20]。而這種三肽序列并沒(méi)有表達(dá)在FSH的β亞基上,此外,F(xiàn)SH的α亞基上這一序列也因?yàn)橐恍┰虮谎谏w住,使其無(wú)法誘導(dǎo)乙酰半乳糖胺轉(zhuǎn)移酶的活性。因此在FSH上半乳糖轉(zhuǎn)移酶的作用更加明顯,使得FSH上唾液酸化相對(duì)更強(qiáng)[21]。也因此認(rèn)為唾液酸對(duì)FSH的性質(zhì)和功能的影響更強(qiáng),而磺化乙酰半乳糖胺對(duì)LH的影響則較為顯著。
唾液酸與磺化乙酰半乳糖胺連接在這兩種促性腺激素的肽鏈N端,通過(guò)不同的機(jī)制來(lái)影響后者的理化性質(zhì)和功能,如半衰期、穩(wěn)定性、受體結(jié)合特性、下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)以及促分泌作用等,并參與其在卵巢中的各種功能[22]。
唾液酸分子存在于FSH兩種亞基上,可以隱藏分子上的抗原性位點(diǎn),而后者能夠誘導(dǎo)激活部分分解代謝的受體,從而避免FSH被巨噬細(xì)胞或肝細(xì)胞上的Gal識(shí)別受體所識(shí)別結(jié)合而被降解掉,延長(zhǎng)分子的半衰期,增加穩(wěn)定性[23]。現(xiàn)已通過(guò)嚙齒類(lèi)動(dòng)物證明,存在于LH分子表面上的磺化乙酰半乳糖胺,同樣可以被肝細(xì)胞表面特異性受體識(shí)別結(jié)合,使得LH分子被肝細(xì)胞代謝清除[24],破壞LH的穩(wěn)定性與縮短半衰期。此外,糖基化的存在會(huì)影響FSH與LH的酸堿性。前已述及,絕經(jīng)婦女及PCOS患者血中FSH及LH的酸性均較育齡期正常女性的高[14],這與兩種蛋白表面酸性的唾液酸單糖分子含量上升,乙酰半乳糖胺下降有關(guān)。
另一方面,由于糖基化的存在,使得這兩種激素的α與β 亞基分別有了不同的特性。α亞基以及兩種亞基上的糖基化修飾顯著影響激素與受體結(jié)合的親和性與反應(yīng)活性,去糖基化的α、β亞基生物活性會(huì)被明顯抑制,甚至出現(xiàn)拮抗效應(yīng)[25]。Martin等[26]已通過(guò)定點(diǎn)突變及轉(zhuǎn)染等方式對(duì)由Asn介導(dǎo)的糖基化位點(diǎn)的相關(guān)特性進(jìn)行探究,結(jié)果表明αAsn78上糖基化活性較低,數(shù)量較少,其產(chǎn)生的作用相對(duì)不明顯。Davis 等[27]研究表明,αAsn52位是重要的唾液酸化位點(diǎn),在此位點(diǎn)上不同形式和數(shù)目的唾液酸化會(huì)給FSH的結(jié)構(gòu)帶來(lái)較大的改變。Baenziger[21]的研究也表明,αAsn52位上的糖基可協(xié)助刺激下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)產(chǎn)生cAMP或IP信使分子,從而進(jìn)一步影響固醇的合成。
對(duì)于β亞基,Keutmann等[28]實(shí)驗(yàn)證明,β亞基在高濃度作用時(shí)即可與卵泡顆粒細(xì)胞上的受體結(jié)合并通過(guò)下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)刺激后續(xù)的固醇類(lèi)激素產(chǎn)生。說(shuō)明在與受體結(jié)合時(shí),主要由β亞基的肽鏈結(jié)構(gòu)決定與受體結(jié)合的特異性。Nguyen等[29]證實(shí)βAsn13及βAsn30糖基非常豐富,并且相比之下,前者在促進(jìn)性激素分泌上的作用更明顯。此外,有研究認(rèn)為在低濃度糖基化時(shí)促進(jìn)生成cAMP分子,在高濃度時(shí)則偏向于通過(guò)IP信號(hào)通路影響下游的信息傳遞[30]。
值得一提的是,F(xiàn)SH是國(guó)內(nèi)外輔助生殖技術(shù)中用于促排卵的關(guān)鍵藥物,然而目前各大輔助生殖中心對(duì)于FSH類(lèi)型與來(lái)源的選擇不盡相同。現(xiàn)在最常見(jiàn)的有由絕經(jīng)婦女的尿中所提取純化出的高純度尿源性FSH(uFSH)以及利用重組技術(shù)合成的重組人FSH(rhFSH),前者含有比例較高的酸性FSH亞型,相比之下后者的酸性則較低,穩(wěn)定性較差[31]。有報(bào)道認(rèn)為,酸性較高的uFSH在促排卵的生物活性低于rhFSH,后者的臨床有效率及妊娠率高于前者[32]。葉虹[33]研究提示,uFSH與rhFSH的主要差異即來(lái)源于其上糖基化的不同。而鑒于LH在輔助生殖技術(shù)中的直接應(yīng)用較少,通常是利用HCG代替或利用其它藥物避免LH峰的發(fā)生,故對(duì)LH的糖基化差異在輔助生殖中的研究較少。
綜上所述,目前僅有少部分研究將目光聚集在垂體促性腺激素的糖基化上,包括糖基化的數(shù)目和影響后期與卵泡相互作用的分子機(jī)制。通過(guò)對(duì)相同的FSH、LH肽鏈上進(jìn)行不同的糖基化,有望在一定程度上調(diào)節(jié)其性質(zhì)并作為用相關(guān)疾病藥物治療,如臨床上促排卵、PCOS治療等的新的改進(jìn)入手點(diǎn)。遺憾的是,到目前為止還沒(méi)有將這個(gè)問(wèn)題完全解釋清楚。本文通過(guò)總結(jié)近年來(lái)關(guān)于FSH和LH糖基化的相關(guān)文獻(xiàn),盡量將目前的研究成果進(jìn)行完善和梳理。希望本文能從一個(gè)新的方向上對(duì)相關(guān)臨床用藥和實(shí)驗(yàn)室研究帶來(lái)啟發(fā)與思考,并對(duì)女性促性腺激素作為藥物對(duì)疾病治療的發(fā)展做出貢獻(xiàn)。
[1] Arce JC,Andersen AN,F(xiàn)ernández-Sánchez M,et al.Ovarian response to recombinant human follicle-stimulating hormone: a randomized,antimüllerianhormone-stratified,dose-response trial in women undergoing in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection[J].Fertil Steril,2014,102:1633-1640.
[2] Azizi-Moghadam A.Metabolism of energy substrates of in vitro and in vivo derived embryos from ewes synchronized and super ovulated with norgestomet and porcine follicle stimulating hormone[J].J Anim Sci Biotechnol,2013,4:58-64.
[3] Patil M.Gonadotrophins: The future[J].J Hum Reprod Sci,2014,7:236-248.
[4] Check JH.Premature ovarian insufficiency-fertility challenge[J].Minerva Ginecol,2014,66:133-153.
[5] Hua R,Ma L,Li H.Clinical effects of a natural extract of urinary human menopausal gonadotrophin in normogonadotropic infertile patients[J].Int J Reprod Med,2013,2013:135258.doi: 10.1155/2013/135258.
[6] Aizen J,Kobayashi M,Selicharova I,et al.Steroidogenic response of carp ovaries to piscine FSH and LH depends on the reproductive phase[J].Gen Comp Endocrinol,2012,178:28-36.
[7] Devroey P,Van Steirteghem A,Mannaerts B,et al.First singleton term birth after ovarian superovulation with rhFSH[J].Lancet,1992,340:1108-1109.
[8] Liu X,Hao C,Wang J.Efficacy of highly purified urinary FSH versus recombinant FSH in Chinese women over 37 years undergoing assisted reproductive techniques[J].Int J Fertil Steril,2015,8:385-392.
[9] Vuong TN,Phung HT,Ho MT.Recombinant follicle-stimulating hormone and recombinant luteinizing hormone versus recombinant follicle-stimulating hormone alone during GnRH antagonist ovarian stimulation in patients aged≥35 years: a randomized controlled trial[J].Hum Reprod,2015,30:1188-1195.
[10] Renwick AGC,Mizuochi T,Kochibe N,et al.The asparagine-linked sugar chains of human follicle-stimulating hormone [J].J Biochem,1987,101:1209-1221.
[11] Wide L,Eriksson K,Sluss PM,et al.Serum half-life of pituitary gonadotropins is decreased by sulfonation and increased by sialylation in women[J].J Clin Endocrinol Metab,2009,94:958-964.
[12] Wide L,Eriksson K,Sluss PM,et al.The common genetic variant of luteinizing hormone has a longer serum half-life than the wild type in heterozygous women[J].J Clin Endocrinol Metab,2010,95:383-389.
[13] Wide L,Eriksson K.Dynamic changes in glycosylation and glycan composition of serum FSH and LH during natural ovarian stimulation[J].J Clin Endocrinol Metab,2013,118:153-164.
[14] Wide L,Eriksson K,Naesseén T,et al.Sulfonation and sialylation of gonadotropins in women during the menstrual cycle,after menopause,and with polycystic ovarian syndrome and in men[J].J Clin Endocrinol Metab,2007,92:4410-4417.
[15] Wide L,Naessén T,Eriksson K.Effects of 17beta-oestradiol and norethisterone acetate on sulfonation and sialylation of gonadotrophins in post-menopausal women[J].Ups J Med Sci,2010,115:97-106.
[16] Barontini M,García-Rudaz MC,Veldhuis JD.Mechanisms of hypothalamic-pituitary-gonadal disruption in polycystic ovarian syndrome[J].Arch Med Res,2001,32:544-552.
[17] Fares F.The role of O-linked and N-linked oligosaccharides on the structure-function of glycoprotein hormones: development of agonists and antagonists[J].Biochim Biophys Acta,2006,1760:560-567.
[18] Suzuki S,F(xiàn)uruhashi M,Suganuma N.Additional N-glycosylation at Asn(13) rescues the human LH beta-subunit from disulfide-linked aggregation[J].Mol Cell Endocrinol,2000,160:157-163.
[19] Dharmesh SM,Baenziger JU.Estrogen modulates expression of the glycosyltranferases that synthesize sulfated oligosaccharides on lutropin[J].Proc Natl Acad Sci USA,1993,90:11127-11131.
[20] Block H,Ley K,Zarbock A.Severe impairment of leukocyte recruitment in ppGalNAcT-1-deficient mice[J].J Immunol,2012,188:5674-5681.
[21] Baenziger JU.Protein-specic glycosyltransferases: how and why they do it![J].FASEB J,1994,8:1019-1025.
[22] Abushoufa RA,Talbot JA,Brownbill K,et al.The development of a sialic acid specific lectin-immunoassay for the measurement of human chorionic gonadotrophin glycoforms in serum and its application in normal and Down's syndrome pregnancies[J].Clin Endocrinol(Oxf),2000,52:499-508.
[23] Varki A,Cummings RD,Esko JD,et al.Biological roles of glycans-essentials of glycobiology[M].3rded.New York:Cold Spring Harbor Laboratory Press,2009:209-212.
[24] Reddy GR,Xie C,Lindaman LL,et al.GnRH increases c-Fos half-life contributing to higher FSHβ induction[J].Mol Endocrinol,2013,27:253-265.
[25] Rayford PL,Vaitukaitis JL,Ross GT,et al.Use of specific antisera to characterize biologic activity of hCG-beta subunit preparations[J].Endocrinology,1972,91:144-146.
[26] Martin M, Keene JL,Boime I.Site Specificity of the chorionic gonadotropin N-linked oligosaccharides in signal transduction[J].J Biol Chem,1989,264:2409-2414.
[27] Davis JS,Kumar TR,May JV,et al.Naturally occurring follicle-stimulating hormone glycosylation variants[J].J Glycomics Lipidomics,2014,4:e117.
[28] Keutmann HT,Charlesworth MC,Kitzmann K,et al.Primary and secondary structural determinants in the receptor binding sequence beta-(38-57) from human luteinizing hormone[J].Biochemistry,1988,27:8939-8944.
[29] Nguyen VT,Singh V,Butnev VY,et al.Inositol phosphate stimulation by LH requires the entire alpha Asn56 oligosaccharide[J].Mol Cell Endocrinol,2003,199:73-86.
[30] Andersen CY,Ezcurra D.Human steroidogenesis: implications for controlled ovarian stimulation with exogenous gonadotropins[J].Reprod Biol Endocrinol,2014,12:1-11.
[31] Lispi M,Bassett R,Crisci C,et al.Comparative assessment of the consistency and quality of a highly purified FSH extracted from human urine(urofollitropin) and a recombinant human FSH(follitropin α)[J/OL].Reprod Biomed Online,2006,13:179-193.
[32] Andersen CY,Westergaard LG,Van WM.FSH isoform composition of commercial gonadotrophin preparations: a neglected aspect?[J/OL].Reprod Biomed Online,2004,9:231-236.
[33] 葉虹.從募集優(yōu)勢(shì)卵泡開(kāi)始提高胚胎質(zhì)量[J].生殖醫(yī)學(xué)雜志,2013,22:245-247.
[編輯:羅宏志]
Study on development of female pituitary gonadotrophin glycosylation content and its mechanism
MAXue-qian1,4,YUJia-bin3,MAFang1,2*
1.SichuanUniversity-theChineseUniversityofHongKongJointLaboratoryforReproductiveMedicine,KeyLaboratoryofObstetric,GynecologicandPediatricDiseasesandBirthDefectsofMinistryofEducation,WestChinaSecondUniversityHospital,SichuanUniversity,Chengdu610000 2.DepartmentofObstetrics&Gynecology,WestChinaSecondUniversityHospital,SichuanUniversity,Chengdu610041 3.ChinaSoutheastUniversityMedicalCollege,Nanjing210009 4.Women'sHospitalSchoolofMedicineZhejingUniversity,Hangzhou310006
The contents of FSH and LH show a certain degree of volatility in normal menstrual cycle,while the contents of sialic acids and sulfonated N-acetylgalactosamine also show fluctuant changes.Now the scientific research has proved that sialic acids and sulfonated N-acetylgalactosamine are synthesized by β1-4galactosyltransferase and β1-4GalNAc-transferase though aspartic acid induction at the end of peptide chain of FSH and LH after the peptides synthesis of the two hormones.As the relative activity of the two enzymes on FSH and LH is different,the nature of FSH is mainly influenced by sialic acid and LH by the sulfonated acetyl-galactosamine.Therefore the glycosyls influence the properties of hormones such as half-life,stability through different mechanism.They also bring some changes in the synthesis of sex hormone through the downstream signal pathway.
FSH; LH; Sialic acid; Sulfonated N-acetylgalactosamine
10.3969/j.issn.1004-3845.2017.02.017
2016-05-23;
2016-07-11
四川省科技廳項(xiàng)目(2015SZ0173)
馬雪倩,女,陜西西安人,碩士研究生,婦產(chǎn)科生殖醫(yī)學(xué)專(zhuān)業(yè).(*
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