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筋骨草總黃酮對腎小球系膜細胞增殖的影響

2016-12-06 02:42:21南麗紅黃枚賴文芳賈銣鄭燕芳楊瀾謝晴晴彭衛(wèi)華
福建中醫(yī)藥 2016年4期
關鍵詞:黃酮血清

南麗紅,黃枚,賴文芳,賈銣,鄭燕芳,楊瀾,謝晴晴,彭衛(wèi)華

(1.福建中醫(yī)藥大學藥學院,福建福州350122;2.南京軍區(qū)福州總醫(yī)院,福建福州350025)

筋骨草總黃酮對腎小球系膜細胞增殖的影響

南麗紅1,黃枚1,賴文芳1,賈銣1,鄭燕芳1,楊瀾1,謝晴晴1,彭衛(wèi)華2

(1.福建中醫(yī)藥大學藥學院,福建福州350122;2.南京軍區(qū)福州總醫(yī)院,福建福州350025)

目的觀察筋骨草總黃酮對大鼠腎小球系膜細胞增殖的影響。方法LPS誘導大鼠腎小球系膜細胞增殖,筋骨草總黃酮含藥血清干預24、48 h后,用MTT法檢測腎小球系膜細胞增殖情況,硝酸還原酶法、Elisa法分別檢測培養(yǎng)液上清中NO、iNOS、MCP-1的含量。結果LPS能明顯誘導腎小球系膜細胞增殖,培養(yǎng)液上清中NO、iNOS、MCP-1的含量明顯高于正常對照組(P<0.05或0.01)。10%、5%筋骨草總黃酮含藥血清干預后OD值及培養(yǎng)液上清中NO、iNOS、MCP-1的含量均明顯減少(P<0.05或0.01)。結論筋骨草總黃酮能抑制LPS誘導的腎小球系膜細胞異常增殖和炎癥介質(zhì)NO、iNOS、MCP-1的釋放。

腎小球系膜細胞;增殖;一氧化氮;一氧化氮合酶;單核細胞趨化蛋白-1;筋骨草總黃酮

腎小球系膜細胞(glomerularmesangialcell,GMC)是腎小球中功能最活躍的固有細胞,GMC異常增生以及由此而導致細胞外基質(zhì)(extracelluarmatrix,ECM)的過量生成和聚積,是許多腎小球疾病常見的病理改變,并可最終引起腎小球硬化,是使腎小球疾病發(fā)展至終末期腎病的中心環(huán)節(jié)之一[1],因此抑制GMC增生是治療增生性腎臟病、防止病變惡化的關鍵環(huán)節(jié)。單核細胞趨化蛋白-1(monocyte chemotactic protein-1,MCP-1)與一氧化氮(nitric oxide,NO)是GMC激活后產(chǎn)生的2種炎癥介質(zhì),一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)是NO合成反應的限速酶。其中誘導型NOS(inducible NOS,iNOS)在多種因素刺激下表達增加,導致NO過量生成,從而對系膜細胞產(chǎn)生病理性損傷。筋骨草(Ajuga decumbens Thunb)具有清熱抗炎、抑制I型變態(tài)反應等作用,其有效成分為黃酮類化合物[2]。課題組前期研究[3-5]發(fā)現(xiàn)筋骨草總黃酮(total flavonoids of Ajuga,TFA)能明顯抑制系膜增生性腎小球腎炎模型大鼠GMC增殖、減少細胞外基質(zhì)積聚,具有促進腎小球病理改變恢復的作用,其作用與抗脂質(zhì)過氧化損傷和抑制核轉錄因子-κB等表達有關。但TFA對GMC分泌NO、MCP-1的影響,目前未見相關報道。故我們通過LPS誘導體外大鼠GMC增殖模型,觀察TFA含藥血清對GMC增殖及分泌NO、iNOS、MCP-1的影響,為TFA在慢性腎臟疾病治療中的應用提供實驗依據(jù)。

1實驗材料

1.1 實驗動物和大鼠GMC清潔級SD雄性大鼠,體質(zhì)量(200±20)g,上海斯萊克實驗動物有限責任公司提供,合格證號:0054797。大鼠HBZY-1腎小球系膜細胞株(無錫博慧斯生物醫(yī)藥科技有限公司)。

1.2 藥物及試劑TFA(福建中醫(yī)藥大學藥物制劑實驗室);PRMI 1640培養(yǎng)液(美國Hyclone公司);胎牛血清(FBS,美國Hyclone公司);胰蛋白酶(美國Hyclone公司);MTT(美國Amresco公司);脂多糖(LPS,美國Biosharp公司);DMSO(美國Amresco公司);大鼠MCP-1 Elisa試劑盒(上海西唐生物科技有限公司);NO、iNOS試劑盒(南京建成生物工程研究所)。

1.3 儀器HERAcell 150型CO2培養(yǎng)箱(德國Heraeus公司);ELX800型全自動酶標儀(美國BioTek公司);TDL-5-A離心機(上海安亭科學儀器廠);IX70倒置相差顯微鏡(日本Olympus公司);BS210S分析電子天平(北京賽多利斯天平有限公司);Costar TM 96孔、24孔培養(yǎng)板(美國Corning公司)。

2實驗方法

2.1 實驗血清的制備SD大鼠隨機分為空白血清組、TFA血清組。TFA血清組按前期動物實驗的有效劑量2.16 g/kg,根據(jù)中藥藥理研究方法學,TFA溶液分2次給予灌胃,連續(xù)給藥3 d,最后1 d 2次給藥的間隔時間為2 h。于末次給藥1 h后,腹主動脈取血,室溫條件下靜置4 h,3 000 r/min離心15 min,無菌條件下分離血清,置56℃恒溫水浴箱中30 min作滅活處理,過濾除菌后,于-20℃冰箱

保存?zhèn)溆谩?瞻籽褰M大鼠灌服等體積蒸餾水,與TFA血清組同時采血,提取血清方法同前。

2.2 細胞株的處理購買的大鼠HBZY-1腎小球系膜細胞株是以25 cm2/50 mL培養(yǎng)瓶運送,瓶內(nèi)裝滿10%FBS的PRMI 1640培養(yǎng)液。收到細胞株,倒置相差顯微鏡下觀察GMC貼壁生長良好,體積較大,呈梭形、三角形或不規(guī)則星形。將培養(yǎng)瓶置于CO2培養(yǎng)箱中靜置24 h后,吸棄大部分培養(yǎng)液,繼續(xù)置CO2培養(yǎng)箱中至細胞達70%~80%融合時進行傳代,傳代后的GMC常規(guī)培養(yǎng)。

2.3 分組與含藥血清干預取對數(shù)生長期的大鼠GMC用0.25%胰酶消化后,用10%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)液制成濃度為3×104個/mL的細胞懸液,接種于96孔培養(yǎng)板中,每孔加細胞懸液100μL。CO2培養(yǎng)箱中孵育24 h,細胞完全貼壁之后,棄上清液,用1%FBS的PRMI 1640培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)24 h,使GMC同步生長于G0期。將96孔培養(yǎng)板中的大鼠GMC分為5組:①正常對照組:加入10%正常大鼠血清;②LPS組:加入LPS和10%正常大鼠血清;③10%TFA含藥血清組:加入LPS和10% TFA含藥血清;④5%TFA含藥血清組:加入LPS和5%TFA含藥血清;⑤2.5%TFA含藥血清組:加入LPS和2.5%TFA含藥血清。加入LPS的終濃度均為10μg/mL,血清終濃度不足10%的加入正常大鼠血清補齊。每組設6個復孔,每孔培養(yǎng)液200 μL,CO2培養(yǎng)箱中孵育24、48 h后,用MTT法檢測各組大鼠GMC增殖情況。

2.4 細胞增殖檢測含藥血清干預24、48 h后,于每孔中加入5 mg/mL MTT溶液20μL,置CO2培養(yǎng)箱中繼續(xù)孵育4 h后終止培養(yǎng),小心吸棄孔內(nèi)培養(yǎng)上清液。每孔加入150μL DMSO,震蕩10 min,使結晶充分溶解。選擇490 nm波長,在酶標儀上測定各孔的光吸收值(OD值)。

2.5 NO、iNOS、MCP-1含量檢測取對數(shù)生長期的大鼠GMC以1×105個/mL接種于24孔板中,1 mL/孔,培養(yǎng)24 h待細胞貼壁,用1%FBS的PRMI 1640培養(yǎng)液使GMC同步生長于G0后。分組及藥物干預同2.3項,繼續(xù)培養(yǎng)24、48h后,收集細胞培養(yǎng)液,離心,取上清液按試劑盒說明書,用硝酸還原酶法檢測培養(yǎng)液上清中NO、iNOS含量,Elisa法檢測培養(yǎng)液上清中MCP-1含量。

2.6 統(tǒng)計學處理用SPSS 15.0統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計處理,數(shù)據(jù)屬正態(tài)分布用x±s表示,多組間均數(shù)比較用單因素方差分析。

3實驗結果

3.1 TFA含藥血清組對大鼠GMC增殖影響見表1。

表1 TFA含藥血清組對大鼠GMC增殖影響(x±s)

3.2 TFA含藥血清組對培養(yǎng)液上清中NO、iNOS、MCP-1含量的影響見表2~表3。

表2 TFA含藥血清組對培養(yǎng)液上清中NO、iNOS含量的影響(±s)

表2 TFA含藥血清組對培養(yǎng)液上清中NO、iNOS含量的影響(±s)

注:與正常對照組比較,1)P<0.05,2)P<0.01;與LPS組比較,3)P<0.05。

4討論

4.1 在正常生理情況下,GMC保持極低的增殖活性。在病理狀態(tài)下,多種損傷因子和有害物質(zhì)均可刺激GMC活化,活化的GMC可異常增殖,自分泌炎癥介質(zhì)(如IL-1、TNF-α、NO、MCP-1等),這些合成、釋放的炎癥介質(zhì)與GMC上特異受體結合,又促進GMC增殖和活化,形成了增強GMC活動的自我調(diào)節(jié)環(huán)。如此循環(huán)反復,使GMC持續(xù)受損,ECM聚積,最終導致終末期腎病。

4.2 NO是一個具有廣泛生理活性的小分子,對腎

臟有明顯的雙重作用,在腎臟的生理和病理過程中起重要作用。在生理方面,對于腎血管的穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)、腎小管球間反饋、尿鈉排泄、交感神經(jīng)遞質(zhì)及腎素的釋放和溶質(zhì)及水在腎小管中的交換都發(fā)揮著重要作用[6]。若NO在短期內(nèi)大量合成,則可導致腎組織損傷引發(fā)急性炎癥反應[7]。NO可由NOS催化L-精氨酸與氧分子經(jīng)多步氧化還原反應生成,NOS可分為2大類,一類是構成型NOS,包括內(nèi)皮型NOS和神經(jīng)元型NOS,是許多正常組織中基本存在的一種酶;另一類是iNOS,當細胞受到微生物內(nèi)外毒素、炎癥介質(zhì)等刺激后才被激活表達,從而產(chǎn)生過量的NO,促進GMC增生和細胞外基質(zhì)沉積[8-9]。MCP-1屬于趨化因子CC亞家族的一員,可由腎組織內(nèi)的系膜細胞合成和分泌,參與調(diào)節(jié)單核/巨噬細胞的浸潤,在正常人組織中有少量表達。當GMC組織受損、缺氧、中毒、炎癥等刺激下,MCP-1的表達增強,可趨化和激活單核/巨噬細胞至腎小球系膜區(qū)引起廣泛的炎癥浸潤,促進GMC的活化和增生,使ECM聚集,加速腎小球硬化[10]。

表3 TFA含藥血清對培養(yǎng)液上清中MCP-1含量的影響(±s)

表3 TFA含藥血清對培養(yǎng)液上清中MCP-1含量的影響(±s)

注:與正常對照組比較,1)P<0.05,2)P<0.01;與LPS組比較,3)P<0.05,4)P<0.01。

4.3 根據(jù)藥理學原理,口服藥物必須經(jīng)由胃腸道吸收、體內(nèi)代謝為活性代謝產(chǎn)物后發(fā)揮藥理學作用。而血清藥理學能客觀地模擬了藥物與機體相互作用過程,其血清所含的藥物成分,也是經(jīng)過體內(nèi)一系列生物轉化后,真正發(fā)揮作用的有效成分及藥物作用下機體所產(chǎn)生的內(nèi)生性有效成分,并且血清的理化性質(zhì)與細胞所處的內(nèi)環(huán)境相似[11-12]。因此,若TFA直接用于體外細胞,缺乏TFA在體內(nèi)的代謝過程,并不能真實反映TFA在體內(nèi)的藥理作用。故本實驗中采用了TFA含藥血清,有助于進一步探討TFA對GMC增殖的影響。

4.4 本實驗采用LPS作為刺激因子,作用于體外培養(yǎng)的GMC,結果顯示LPS能誘導GMC異常增殖,并可使NO、iNOS、MCP-1的釋放量明顯增加。TFA含藥血清干預24、48 h后能明顯抑制LPS誘導的GMC增殖,培養(yǎng)液上清中NO、iNOS、MCP-1含量亦明顯減少,提示TFA可明顯抑制LPS誘導的GMC異常增殖,并可明顯減少炎癥介質(zhì)NO、iNOS、MCP-1的釋放,從而有利于減輕GMC的持續(xù)受損,延緩腎小球疾病的慢性進展。

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R285.5

A

1000-338X(2016)04-0034-03

2016-05-22

福建省科學技術廳自然科學基金資助課題(2014J05094)

南麗紅(1974—),女,副教授,主要從事中藥藥理研究。

彭衛(wèi)華(1970—),男,副主任醫(yī)師。E-mail:pwhua7011@ aliyun.com

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