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加速溶劑萃取/超高壓液相色譜-質譜聯用對土壤中甲胺磷的測定研究

2016-11-08 11:15:54張鳴珊李騰崖何書海
分析測試學報 2016年9期

張鳴珊,李騰崖,何書海,梁 焱

(海南省環境科學研究院 海南省環境監測中心站,海南 海口 571158)

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加速溶劑萃取/超高壓液相色譜-質譜聯用對土壤中甲胺磷的測定研究

張鳴珊*,李騰崖,何書海,梁焱

(海南省環境科學研究院海南省環境監測中心站,海南海口571158)

建立了加速溶劑萃取/超高壓液相色譜-質譜聯用測定土壤中甲胺磷的方法。確定最佳萃取條件為:萃取溶劑為乙腈,萃取溫度80 ℃,靜態萃取時間10 min,循環2次。萃取液經旋轉蒸發儀濃縮后,進超高壓液相色譜-質譜分析,外標法定量,質譜定性。結果表明,甲胺磷的線性范圍為3.15~1 050 μg/L,相關系數為0.999 1。低、中、高3個加標水平下甲胺磷的平均回收率為72%~82%,相對標準偏差為5.8%~8.6%,檢出限為0.05 μg/kg。該方法具有良好的分離效果、較寬的線性范圍和較高的靈敏度,可用于實際樣品檢測。

加速溶劑萃取;超高壓液相色譜-質譜;甲胺磷;土壤

甲胺磷(Methamidophos)是一種內吸性很強、兼有觸殺和胃毒作用的高效有機磷殺蟲劑,殺蟲范圍廣,曾是我國生產和用量最大的農藥。由于其強毒性、污染性,我國于2008年1月停止甲胺磷等5種高毒農藥的生產、流通、使用。但作為替代物之一的乙酰甲胺磷在農業上廣泛使用。由于乙酰甲胺磷在降解過程中可代謝出甲胺磷,同時乙酰甲胺磷為甲胺磷的衍生物,其制劑中含有少量的甲胺磷[1],因此仍需測定甲胺磷在土壤中的殘留量。文獻中關于甲胺磷的檢測通常采用二氯甲烷提取[1-4],氣相色譜法[3-9]或氣相色譜-質譜法[1,10-13]測定,且大部分以茶葉[8,10]、蔬果[1,6-7,9,11-13]作為研究基質,少見土壤樣品中甲胺磷測定的研究。國標GB/T5009.103-2003[14]測定蔬菜等基質中甲胺磷的檢出限為7.79×10-12g;NY/T761-2008[15]測定蔬菜和水果中甲胺磷的檢出限為0.01 mg/kg;其它文獻中,蔬果、谷物類中甲胺磷的檢出限在1~50 μg/kg,土壤中甲胺磷為0.05~10.0 μg/kg[2-3,16-17]。當甲胺磷在二氯甲烷中濃度小于2.1 mg/L時易發生降解,且甲胺磷的分子量小加熱易分解[18],對襯管的潔凈程度非常敏感。為此本文以乙腈作為提取劑,采用加速溶劑萃取/超高壓液相色譜-質譜技術進行分析,該方法可減少溶劑用量,提高萃取效率,無需加熱,不會使甲胺磷分解,且排除了襯管的吸附干擾,降低了檢出限,使得定性定量更加準確,滿足了實際應用的需求。

1 實驗部分

1.1儀器與試劑

超高壓液相色譜(美國Waters公司)-API3200型質譜儀(美國AB Sciex公司); Dionex ASE350型快速溶劑萃取儀(美國賽默飛公司);Hei-VAP Precision型旋轉蒸發儀(德國Heidolph公司);JJ500型電子天平(常熟市雙杰測試儀器廠)。

丙酮、正己烷、乙酸乙酯(色譜純,美國天地公司);乙腈(色譜純,美國西格瑪公司);甲酸(色譜純,含量99%);無水硫酸鈉(分析純):600 ℃加熱4 h。實驗用水為三重過濾去離子水。

甲胺磷農藥標準儲備液:1.05 mg/mL,國家標準物質研究中心。土壤樣品:采自海南多個市縣基本農田、菜地,采樣后立即分析。

1.2實驗方法

1.2.1加速溶劑萃取法稱取10.0 g新鮮土壤樣品,與適量無水硫酸鈉混勻后裝入34 mL萃取池中。乙腈為萃取溶劑,萃取溫度80 ℃,壓力11.72 MPa(1 700 psi),加熱10 min,靜態萃取10 min,循環2次,用池體積30%的乙腈沖洗萃取池,并用氮氣吹掃100 s。萃取完畢后,萃取液經無水硫酸鈉干燥旋轉蒸發濃縮,乙腈定容至1 mL,過0.25 μm濾膜,進UPLC分析。

1.2.2振蕩與超聲萃取法稱取10.0 g新鮮土壤樣品,與適量無水硫酸鈉混勻后裝入250 mL三角瓶中,用70 mL乙腈分兩次(40 mL,30 mL各1次)振動或超聲,兩次時間分別為2 h和1 h。將兩次萃取液合并后,無水硫酸鈉干燥旋轉蒸發濃縮,乙腈定容至1 mL,過0.25 μm濾膜,進UPLC分析。

1.3分析條件

1.3.1超高壓液相色譜分離條件 ACQUITY BEH HILIC色譜柱(3.0 mm×100 mm,1.7 μm,美國Waters公司);流動相:A為水(0.1%甲酸),B為乙腈;流速為0.6 mL/min。梯度洗脫:0~2.0 min,40%~20%A,2.0~3.0 min,20%~40%A。進樣量10 μL。

1.3.2質譜條件 采用正離子模式(ESI+)采集質譜數據。毛細管電壓為5.0 kV,脫溶劑溫度為400 ℃,GS1為50 psi,GS2為60 psi,氣簾氣為15 psi,碰撞氣為3 psi。多反應監測(MRM)模式,監測離子對分別為142.2/94.1和142.2/125.1,錐孔電壓分別為17,18 eV,入口電壓均為13 V,出口電壓均為3 V。

2 結果與討論

2.1旋轉蒸發水浴溫度的比較

對比研究真空度為200 mbar,轉速為70 r/min時,低(10.5 μg/L)、中(105 μg/L)、高(210 μg/L) 3個濃度的甲胺磷(40 mL乙腈中)在不同水浴溫度下的回收率。結果顯示,水浴溫度在40~60 ℃之間時甲胺磷的回收率變化不大,但濃縮時間隨溫度升高而明顯減少,在60~80 ℃之間時甲胺磷的回收率和濃縮時間基本無變化,但當溫度高于80 ℃時,濃縮時間變化不大,回收率卻明顯降低。從節能方面考慮,采用真空度200 mbar,轉速70 r/min,水浴溫度60 ℃作為旋轉蒸發條件,此時3個濃度下甲胺磷的平均回收率均可達90%以上。

2.2旋轉蒸發真空度的比較

對比研究了水浴溫度為60 ℃,轉速70 r/min時,不同真空度(150,200,250,300,350 mbar(下甲胺磷的回收率。結果表明,真空度由150 mbar增至200 mbar時,3個濃度(10.5,105,210 μg/L)的甲胺磷回收率明顯增大,且濃縮時間差別不大;真空度繼續增至350 mbar時,3個濃度的甲胺磷回收率變化不大,但濃縮時間明顯增加。因此實驗采用真空度為200 mbar,此時3個濃度甲胺磷的平均回收率均可達90%以上。

2.3不同提取溶劑的影響

選擇正己烷、乙腈、乙酸乙酯、丙酮-正己烷(體積比1∶1)、丙酮-乙腈(體積比1∶1)、乙腈-乙酸乙酯(體積比1∶1)、正己烷-乙腈(體積比1∶1)、乙酸乙酯-丙酮(體積比1∶1) 8種萃取溶劑,在土壤空白樣品中添加低(10.5 μg/L)、中(105 μg/L)、高(210 μg/L) 3個濃度的甲胺磷,按本方法處理后測定。回收率結果顯示,單獨使用乙腈作為提取溶劑時,3個濃度下甲胺磷的平均回收率均可達70%以上。因此,確定萃取溶劑為乙腈。

2.4不同提取溫度的比較

考察了不同提取溫度(40~110 ℃)對甲胺磷回收率的影響。結果顯示,提取溫度從40 ℃增至80 ℃時,隨著溫度的升高,甲胺磷的回收率均明顯增大,但繼續升溫至90 ℃時,甲胺磷的回收率反而降低,當溫度增大到100 ℃及以上時,回收率急劇下降,這可能是因為在高溫時甲胺磷極易分解所致。因此,實驗選擇最佳提取溫度為80 ℃。

2.5不同靜態萃取時間及循環次數的比較

研究了不同靜態萃取時間(5,10,15 min)與循環次數(1,2,3次)的萃取結果。結果表明,靜態萃取10 min比5 min的回收率有顯著改善,但靜態萃取15 min與10 min相比無顯著變化。同時發現循環2次比循環1次的回收率高,但循環3次與循環2次無明顯差異,因此,確定靜態萃取時間為10 min,循環次數為2次。

2.6不同萃取方法的比較

土壤空白樣中添加3個濃度(10.5,105,210 μg/L)的甲胺磷標準品溶液,分別按“1.2”的加速溶劑萃取、振蕩和超聲萃取方法處理后測定回收率。實驗結果顯示,采用加速溶劑萃取法處理的回收率高于振蕩和超聲萃取法。

表1 甲胺磷的基質效應影響Table 1 Matrix effect of methamidophos

圖1 甲胺磷標準品(A)與土壤空白樣品加標(B)的色譜圖Fig.1 Chromatograms of methamidophos standard (A) and spiked blank soil (B)

2.7基質效應

基質效應為基質中干擾組分對分析物質譜響應的影響,通常在土壤等復雜樣品的UPLC-MS分析中表現尤為明顯。本實驗按照加速溶劑萃取方法處理土壤空白樣品多份,在所得提取液中加入甲胺磷,制備3個濃度樣品(響應峰面積A2),同時用乙腈配制3種等濃度的對照液(響應峰面積A1)進行分析。若A2/A1>1,表明存在基質增強效應;A2/A1<1時,則存在基質抑制效應;A2/A1=1時,無基質效應。結果如表1所示,3種濃度樣品的基質效應均接近1,說明本方法去除干擾物質的能力強,萃取液無需凈化,可直接進樣分析。

2.8線性范圍、定量下限、準確度及精密度

空白土壤中添加甲胺磷標準溶液按“1.2.1”方法處理后,以3倍信噪比(S/N=3)計算該方法的檢出限(LOD),以10倍信噪比(S/N=10)計算該方法的定量下限(LOQ)。土壤中甲胺磷的LOD為0.05 μg/kg,LOQ為0.10 μg/kg。以甲胺磷的峰面積(Y)對其質量濃度(X,μg/L)進行線性回歸,線性方程為Y=1.69×103X+6.53×103(r=0.999 1,n=6),線性范圍為3.15~1 050 μg/L。標準樣品及實際樣品加標的色譜圖如圖1。

在土壤樣品中添加低(10.5 μg/L)、中(105 μg/L)、高210 μg/L) 3個濃度的甲胺磷標準溶液,按照本方法進行提取并測定計算回收率。結果顯示3個濃度的平均加標回收率(n=6)分別為72%,82%,79%;相對標準偏差(RSD)分別為8.6%,5.8%,7.2%。

2.9實際樣品的測定

采用本方法分別測定了海南省2014年、2015年16個市縣站100多個土壤樣品中甲胺磷的含量,結果均未檢出甲胺磷,表明海南省所測土壤未受甲胺磷污染。

3 結 論

本文利用加速溶劑萃取儀(ASE)與超高壓液相色譜-質譜聯用儀,建立了ASE/UPLC-MS檢測土壤中甲胺磷的方法,優化了旋轉蒸發和ASE條件。在最佳分析條件下,方法的檢出限為0.05 μg/kg,平均回收率為72%~82%。該方法提取效率較高,樣品前處理簡單,耗時短,可用于大量實際土壤樣品中甲胺磷含量的檢測。

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Detection of Methamidophos in Soil by Accelerated Solvent Extraction/Ultra Performance Liquid Chromatography-Mass Spectrometry

ZHANG Ming-shan*,LI Teng-ya,HE Shu-hai,LIANG Yan

(Hainan Research Academy of Environmental Sciences,Hainan Environmental Monitoring Central,Haikou571158,China)

A method was developed for the determination of methamidophos in soil by accelerated solvent extraction/ultra performance liquid chromatography -mass spectrometry(ASE/UPLC-MS).The experimental conditions were investigated on the basis of the optimization of ASE conditions,and the optimal conditions were obtained as follows:extraction solvent:acetonitrile,extraction temperature:80 ℃,static extraction time:10 min,cycling twice.The extraction elute was evaporated to dryness with rotary evaporator,and analyzed by UPLC-MS.The target compound was qualitatively analyzed by the external standard method,and qualitatively analyzed by MS/MS method.The linear range was 3.15-1 050 μg/kg for methamidophos,with correlation coefficient(r) of 0.999 1.The recoveries of methamidophos at three spiked levels were in the range of 72%-82% with relative standard deviations of 5.8%-8.6%.The detection limit was 0.05 μg/kg.The method showed the advantages of accuracy,good separation effect and sensitivity,and was suitable for routine sample detection.

accelerated solvent extraction(ASE); ultra performance liquid chromatography-mass spectrometry(UPLC-MS); methamidophos; soil

2016-02-24;

2016-04-09

張鳴珊,碩士,工程師,研究方向:環境監測分析,Tel:0898-66758400,E-mail:278984526@qq.com

10.3969/j.issn.1004-4957.2016.09.023

O657.63; S482.33

A

1004-4957(2016)09-1195-04

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