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雞肉干中金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺殘留量的測定

2016-09-01 09:55:05王智瑋
廣州化工 2016年9期

王智瑋

(上海天祥質量技術服務有限公司,上?!?00233)

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雞肉干中金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺殘留量的測定

王智瑋

(上海天祥質量技術服務有限公司,上海200233)

采用固相萃取柱對樣品中的金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺進行濃縮與凈化,建立了一種靈敏測定雞肉干中金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺殘留量的超高效液相色譜-質譜串聯儀法。試驗結果表明,采用MCX固相萃取柱進行富集與凈化,金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺在1~20 μg/L濃度范圍內與其響應值呈良好的線性關系,檢出限均為0.5 μg/kg。該方法分析速度快,靈敏度高,重復性好,適用于動物源食品中金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺殘留量的測定。

金剛乙胺;3,5-二甲基金剛胺;美金剛;超高液相色譜-串聯質譜法

金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺,屬于金剛烷胺類,3,5-二甲基金剛胺又稱美金剛。金剛烷胺類屬于三環胺類抗病毒藥物,在人類上有廣泛應用。據其藥理作用,國內現在主要將金剛烷胺類藥物用于雞、豬流感的預防和早期治療,及豬傳染性胃腸炎的防治。但是,將人用抗病毒藥物用于畜禽,不僅容易導致動物性食品中藥物殘留、動物中毒、動物機體產生免疫抑制和耐藥性等問題,還可導致病毒發生變異, 影響動物疫病控制及人用抗病毒藥物的有效性[1-3]。我國于2005 年 12 月發布《關于清查金剛烷胺等抗病毒藥物的緊急通知》,禁止金剛烷胺等抗病毒藥作為獸用藥,但由于其價格低廉、效果良好,仍有不法分子大量使用金剛烷胺類藥物用于動物疾病的預防和治療。濫用金剛烷胺類藥物會導致動物中毒,使病毒產生不同程度的耐藥性,并誘發病毒產生變異,嚴重影響了國家動物疫病防控工作[4]。我國對于動物源性食品中金剛烷胺殘留含量的相關研究報道較少,少數的報道主要集中在液相色譜法[5]、氣相色譜法[6-10]和液相色譜-串聯質譜法[11-15],也未曾制定或立項過國家標準。因此,研究建立動物源食品中金剛烷胺類的殘留檢測方法具有重要意義。

1 實 驗

1.1儀器與試劑

AB 4500超高效液相色譜-質譜聯用儀;XS105分析天平,METLER;XW-80A渦旋混合器,上海精科;SF-DL-4M冷凍離心機,上海菲恰爾分析儀器有限公司;SK3300HP超聲波清洗器,KUDOS;N-EVAP111氮吹儀,ASSOCIATES;57265固相萃取裝置,SUPELCO。

甲醇、異丙醇和甲酸為色譜純,鹽酸、正己烷、三氯乙酸、氨水和乙酸銨為分析純,實驗用水為去離子水。鹽酸金剛乙胺、3,5-二甲基金剛胺和鹽酸金剛烷胺-D15,購自德國Dr. Ehrenstorfer公司。

1.2標準溶液配制

1.2.1標準儲備液

準確稱量1.0 mg金剛烷胺-d15標準品至5 mL容量瓶中,用甲醇溶解并定容,混勻,濃度為200 μg/mL。-18 ℃保存12個月。

分別準確稱量金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺標準品至50 mL 容量瓶中,用甲醇溶解并定容,混勻,濃度均為200 μg/mL。-18 ℃保存12個月。

1.2.2標準中間液

精確吸取金剛烷胺-d15儲備液0.25 mL至50 mL的容量瓶中,用甲醇定容,混勻,濃度為1.0 μg/mL。-18 ℃保存6個月。

精確吸取標準儲備液0.25 mL至50 mL的容量瓶中,用甲醇定容,混勻,金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺濃度均為1.0 μg/mL。-18 ℃保存6個月。

1.2.3標準工作液的配制

從標準中間液中分別吸取0.01 mL、0.02 mL、0.05 mL、0.1 mL、0.2 mL至10 mL容量瓶中,再從金剛烷胺-d15標準中間液中分別吸取0.25 mL至10 mL容量瓶中,用水定容,混勻,金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺濃度為1.0 ng/mL、2.0 ng/mL、5.0 ng/mL、10.0 ng/mL、20.0 ng/mL,內標金剛烷胺-d15濃度為25.0 ng/mL。標準工作液現配現用。

1.3樣品制備

準確稱取2 g(精確到0.01 g)試樣至50 mL塑料離心管中,加入內標(金剛烷胺-D15,濃度為1.0 μg/mL)0.025 mL,再加入10 mL甲醇:1%三氯乙酸(1:1),渦旋振蕩1 min,超聲30 min,4000 r/min冷凍離心15 min。上清液轉移至另一50 mL 離心管中,加入5 mL正己烷輕微振搖3 min,4000 r/min冷凍離心5 min,除去上層正己烷層,取下層液待凈化。取下層液轉移至已活化(用3 mL甲醇,3 mL水活化)MCX固相萃取柱中,依次用3 mL 0.1 mol/L鹽酸溶液、3 mL甲醇淋洗,棄去全部流出液,在負壓下干燥5 min,然后用5 mL氨水-甲醇-異丙醇(5+80+15)洗脫。收集洗脫液于45 ℃ 氮吹至干,精密加入1 mL水至殘渣中,渦旋振蕩溶解殘渣,如渾濁,以13000 r/min離心10 min,取上清液供LC-MS/MS測定。

1.4儀器條件

1.4.1液相條件

色譜柱:C18柱(100 mm×2.1 mm,1.8 μm)或相當者;

流動相:A相5 mmol/L乙酸銨水溶液(含0.1%甲酸),B相甲醇。

流速:0.3 mL/min;

進樣量:5 μL;

柱溫:30 ℃。

表1 流動相梯度條件Table 1 The elution conditions of mobile phase

1.4.2質譜條件

離子源:電噴霧ESI離子源;

掃描方式:正離子掃描;

檢測方式: MRM;

電噴霧電壓:5500 V ;

霧化氣壓力:50 psi;

氣簾氣壓力:35 psi;

輔助氣壓力:50 psi;

碰撞氣壓力:9 psi;

離子源溫度:500 ℃;

碰撞室入口電壓:10 V;

碰撞室出口電壓:6 V。

監測離子對情況見表2。

表2 金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺及金剛烷胺-d15的離子對Table 2 The MS parameters for detecting rimantadine and memantine

2 結果與討論

2.1線性關系及檢出限

表3 測試結果Table 3 Testing results of calibration curve

圖1 金剛乙胺標準曲線Fig.1 The standard curve of rimantadine

圖2 3,5-二甲基金剛胺標準曲線Fig.2 The standard curve of memantine

準確移取金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺儲備液適量,用水稀釋成一系列的標準工作液,其濃度分別為0.5、1.0、2.0、5.0、10、20 μg/L。以標準溶液中被測組分峰面積為縱坐標,以濃度為橫坐標,繪制標準曲線。平行測定10次空白試劑加標(1.0 ng/mL)的標準偏差為Sb,檢出限CL=3Sb,得出該方法的檢出限為0.5 μg/kg。

線性方程為:

金剛乙胺:y=0.03498x+0.00537 (r=0.99974)

3,5-二甲基金剛胺:y=0.02640x+-0.00168(r=0.99985)

2.2回收率

本方法選擇雞肉干作為加標基質。分別選取0.5 μg/kg、2.5 μg/kg、10 μg/kg進行加標回收實驗,每個水平重復測定7次,加標情況見表4、表5,回收率見表6、表7。

表4 雞肉干中金剛乙胺的加標情況Table 4 Measured values of Rimantadine in chicken dry

表5 雞肉干中3,5二甲基金剛胺的加標情況Table 5 Measured value of Memantine in chicken dry

表6 雞肉干中金剛乙胺加標回收Table 6 The recovery rate of Rimantadine in chicken dry

表7 雞肉干中3,5-二甲基金剛胺加標回收Table 7 The recovery rate of Memantine in chicken dry

表8 基質加標一覽表Table 8 The recovery rate list

2.3實驗譜圖

2.3.1標準物質色譜圖(0.5 ng/mL)

圖3 0.5 ng/mL標準物質色譜圖Fig.3 The UPLC-MS/MS of rimantadine and memantine (0.5 ng/mL)

金剛乙胺和3,5二甲基金剛胺為同分異構體,4.85 min為金剛乙胺,5.02 min為3,5-二甲基金剛胺。

2.3.2空白基質色譜圖(雞肉干)

圖4 空白基質色譜圖(雞肉干)Fig.4 The UPLC-MS/MS of blank sample(chicken dry)

2.3.3空白樣品(雞肉干)加標色譜圖(加標濃度0.5 μg/kg)

圖5 空白樣品加標色譜圖Fig.5 The UPLC-MS/MS of rimantadine and memantine in samples after adding standard concentration

2.4精密度分析

同回收率部分選擇雞肉干作為加標基質。進行三個水平加標回收實驗,每個水平重復測定7次,基質添加回收的變異系數(CV)與GB/T 27404-2008要求的變異系數(CV)范圍比較見表9和表10。

表9 基質添加回收的變異系數與GB/T 27404-2008要求的 變異系數范圍比較(金剛乙胺)Table 9 The comparison of coefficient of variation (rimantadine)

表10 基質添加回收的變異系數與GB/T 27404-2008要求的 變異系數范圍比較(3,5-二甲基金剛胺)Table 10 The comparison of coefficient of variation (memantine)

3 結 論

本實驗采用弱酸性溶液提取,固相萃取法進行凈化與富集,運用UHPLC-MS/MS技術對金剛乙胺和3,5-二甲基金剛胺進行測定。固相萃取法能夠更有效的分離分析物與雜質,回收率以及富集倍數高,有毒溶劑用量少,通過簡單的操作就能達到無相分離,提升了前處理操作安全性,節省了前處理時間,提高了實驗效率。本法的檢出限、回收率、精密度能夠滿足實驗要求。相較傳統的化學方法而言,本方法快速、高效、重現性好,可以應用于常規分析檢測。

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Determination of Rimantadine and Memantine Residues in Chicken Dry by UHPLC-MS/MS

WANG Zhi-wei

(Shanghai Intertek Testing Services Co., Ltd., Shanghai 200233, China)

A simple, fast, accurate method for determination of rimantadine and memantine in chicken dry was developed by ultra high performance liquid chromatography-tandem quadrupole mass spectrometry (UPLC-MS/MS). The sample was concentrated by solid phase extraction column. The linear range of the method was from 1 μg/L to 20 μg/L with a good correlation coefficient, and the detection limit was 0.5 μg/kg. The proposed method exhibited high sensitivity and good reproducibility for determining rimantadine and memantine.

rimantadine;3,5-dimethyl amantadine; memantine; UHPLC-MSMS

王智瑋(1990-),檢測工程師,主要從事食品檢測。

TS207.3

A

1001-9677(2016)09-0120-04

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