黃 榮,覃貽琳,聶小琴*,董發(fā)勤,劉明學(xué),楊 剛,馬佳林,龔俊源,黃文波,陳 博
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大腸桿菌與水體中U(Ⅵ)的作用行為和產(chǎn)物研究
黃 榮1,1,聶小琴1*,2,劉明學(xué)3,楊 剛3,馬佳林1,龔俊源1,1,陳 博1
(1.西南科技大學(xué),,四川 綿陽 621010;2.西南科技大學(xué),固體廢物處理與資源化教育部重點實驗室,四川 綿陽 621010;3.西南科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院,四川 綿陽 621010)
通過批次吸附實驗及介觀和譜學(xué)等表征方法,研究了大腸桿菌()粉末對水體中U(Ⅵ)的富集行為和吸附模型,并對其作用產(chǎn)物進行了詳細分析.結(jié)果表明:大腸桿菌對初始濃度為50mg/L U(Ⅵ)溶液(pH=5)的吸附容量可達到mg/g.Langmuir等溫模型和準二級動力學(xué)方程能較好的描述其吸附過程. FTIR、SEM-EDS、XRD分析結(jié)果表明:在與水體中U(VI)作用后,大腸桿菌表面檢測出UO22+的紅外特征峰(876.16cm-1)和U的能譜吸收峰(結(jié)合能=).UO22+主要與菌體表面的烷基、氨基、羧基、分子間氫鍵發(fā)生作用,重點與PO2-、P(OH)2、PO43-以及PO3-等含P基團進行絡(luò)合配位,最終產(chǎn)物以CaU(PO4)2、Ca(UO2)2(PO4)2?H2O、NaUO2(PO3)3等鈾的磷酸鹽形式存在.
大腸桿菌;U(Ⅵ);熱力學(xué);動力學(xué);FTIR;含P基團進行絡(luò)合配位;SEM-EDS;XRD
在核工業(yè)的發(fā)展過程中,鈾起到至關(guān)重要的作用,但在鈾礦開采和鈾礦加工階段產(chǎn)生了大量的[1].在含鈾廢水中,U(Ⅳ)容易形成穩(wěn)定的絡(luò)合物而被沉淀,U(Ⅵ)通常以鈾酰離子(UO22+)的形式存在,易遷移擴散[2],進入食物鏈后,將對人類健康和環(huán)境造成危害[3-5].利用微生物處理低濃度含鈾廢水具有效率高、成本低、耗能少的優(yōu)點.近年來,很多學(xué)者對此展開研究[6].目前研究發(fā)現(xiàn)微生物對U(Ⅵ)的富集機理主要包括生物表面吸附、體內(nèi)富集、氧化還原及生成無機微沉淀等[7-8,11-14,16-21],但國內(nèi)就微生物與水體中U(Ⅵ)作用產(chǎn)物的研究報道很少.譚文發(fā)等[8]指出關(guān)于微生物與U(Ⅵ)溶液作用后的產(chǎn)物及減重方式有待進一步深入研究.
本文以大腸桿菌粉末作為研究對象,開展了菌體與U(Ⅵ)的宏觀批次吸附實驗,并利用FTIR、SEM-EDS、XRD等分析方法,研究了大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附性能、吸附模型以及作用產(chǎn)物和減重效果.旨在為微生物處理低濃度含鈾廢水提供理論參考和數(shù)據(jù)支撐.
1.1.1 測試儀器 各測試儀器名稱、型號、生產(chǎn)廠家如表1所示.

表1 實驗儀器Table 1 Laboratory apparatus
1.1.2 菌株和培養(yǎng)基 大腸桿菌()由西南科技大學(xué)生命科學(xué)與工程學(xué)院實驗中心提供.菌種解凍后,接種到液體培養(yǎng)基中,在30℃、150r/min的恒溫培養(yǎng)箱中振蕩培養(yǎng)12h,得到活化菌體,通過平板劃線法得到單個長勢好的菌落,挑選茁壯的菌落接種到新的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng),重復(fù)此步驟3次.將純化后的菌體接入到液體培養(yǎng)基中振蕩(150r/min、30℃)培養(yǎng)24h.離心(6000r/min,10min)取沉淀的菌體,用去離子水清洗3遍,烘干(60℃),研磨(過100目篩)待用.
培養(yǎng)基成分:牛肉膏3g,蛋白胨10g,NaCl 5g,蒸餾水1000mL,pH:7.0~7.2.
1.1.3 鈾溶液 稱取2.1092g UO2(NO3)2×6H2O,少量水溶解后,加入10mL硝酸,移入1000mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,搖勻,得到1g/L的鈾溶液.通過稀釋得到實驗所需濃度的鈾溶液.0.1mol/L、1mol/L HCl,和0.1mol/L、1mol/L Na2CO3調(diào)節(jié)U(Ⅵ)溶液pH值.
1.2.1 吸附實驗 移取20mL一定濃度的U(Ⅵ)溶液,0.006g預(yù)備好的大腸桿菌于50mL錐形瓶中(每組設(shè)置3個平行樣),置于搖床內(nèi)恒溫振蕩(150r/min)吸附一定時間,離心(6000r/min、10min),取10ml上清液,通過偶氮胂Ⅲ分光光度法測定上清液中殘余U(Ⅵ)濃度.利用式(1)、式(2)計算菌體對U(Ⅵ)的吸附率(%)和吸附量(mg/g).
式中:0為初始U(Ⅵ)濃度,mg/L;e為時刻剩余U(Ⅵ)濃度,mg/L;為溶液體積,L;為大腸桿菌干重,g.
1.2.2 機理分析 將吸附前和吸附作用1h后的大腸桿菌在60℃下烘至恒重,與KBr混合研磨壓片,在4000~400cm-1范圍內(nèi)測定其紅外光譜.
大腸桿菌與150mg/L U(Ⅵ)溶液作用一定時間后,離心收集菌體于烘箱中烘干至恒重.將菌體研磨分散于導(dǎo)電膠上,噴金處理后,對菌體表面進行.
與U(Ⅵ)溶液中作用后的大腸桿菌炭化(加熱攪拌至無煙狀態(tài)),馬弗爐中灼燒(800℃,4h).經(jīng)XRD(=1.5406?、=40kV、=40mA、2=0o~80o、步長為0.03342o)分析產(chǎn)物的物相,并通過式(3)計算灰化前后菌體的減重比(WDR).
式中:b為吸附后菌體質(zhì)量,干重,g;a為灰化后灰分質(zhì)量,g.
圖1為大腸桿菌在不同pH值條件下對U(Ⅵ)的吸附結(jié)果:溶液pH值在3~5時,菌體對U(Ⅵ)的吸附能力隨pH值的升高而增強.當(dāng)溶液pH值大于5時,菌體對溶液中U(Ⅵ)的吸附能力降低.
圖1 溶液pH值對大腸桿菌吸附U(Ⅵ)的影響
Fig.1 Effect of pH on adsorption of U(Ⅵ) byE.coli0(U)=50mg/L,=1h,=30℃,=0.006g,=20mL
利用Visual MINTEQ3.0模擬計算在不同pH值條件下,U(Ⅵ)初始濃度為50mg/L的溶液中的U(Ⅵ)離子的形態(tài)分布比例,結(jié)果如圖2所示:溶液pH值在3~4時,Ⅵ)的形態(tài)主要為UO22+(86.57%~99.26%).pH值在4~5時,U(Ⅵ)的形態(tài)主要為UO22+、(UO2)2(OH)22+、UO2OH+、(UO2)3(OH)5+.當(dāng)pH值在5~6時,U(Ⅵ)主要以(UO2)4(OH)7+、(UO2)3(OH)5+(57.28%~72.13%) 存在.
當(dāng)pH=3時,溶液中U(Ⅵ)主要以UO22+的形式存在,但大量H+與UO競爭菌體表面活性吸附位點,菌體對U(Ⅵ)的去除率僅為21.97%.隨著溶液pH值升高,溶液中游離H+減少.細胞壁官能團中會有較多H3O+解離下來進入溶液中,菌體表面出現(xiàn)更多能與UO22+發(fā)生絡(luò)合作用的負電荷基團[9],吸附率呈增大趨勢.在pH=5時,菌體對U(Ⅵ)的富集能力最強,吸附率和吸附量分別為77.97%、130.44mg/g.隨著溶液pH值繼續(xù)增大,UO22+的水解加劇,生成離子半徑較大的(UO2)2(OH)22+、(UO2)3(OH)5+、(UO2)4(OH)7+.導(dǎo)致U(Ⅵ)與菌體表面吸附位點結(jié)合的空間位阻增大,當(dāng)溶液pH=6時,菌體對U(Ⅵ)的去除率下降至61.78%.
圖3為大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附效果與時間的關(guān)系:在吸附10min時,吸附率和吸附量分別為74.10%,122.93mg/L.在1~2h時,吸附率變化不明顯,最終吸附率和吸附量分別為78.43%, 130.11mg/g.在前10min,菌體表面存在大量活性吸附位點,在靜電作用或細胞表面官能團的配位作用下[10,14],菌體對溶液中U(Ⅵ)有較高的吸附速率.隨吸附反應(yīng)的進行,菌體上大量吸附位點被占用,溶液中U(Ⅵ)濃度降低,菌體對U(Ⅵ)的吸附速率下降.
圖4為大腸桿菌濃度對吸附效果的影響:菌體對U(Ⅵ)的吸附量隨菌體濃度的增大而降低,0()=0.05g/L時,吸附量等于276.89mg/g. U(Ⅵ)的去除率隨菌體濃度的增大.0()=1g/L時,吸附率為89.37%.在菌體濃度大于0.3g/L時,吸附率增大趨勢變得平緩.吸附位點的利用率明顯降低,但其吸附量維持在132.34mg/g.故本實驗研究選擇菌體濃度為0.3g/L開展后續(xù)實驗.
2.5.1 吸附等溫模型 Langmuir等溫吸附模型表示吸附劑上的吸附位點是均勻分布的且與溶質(zhì)進行單層表面覆蓋吸附;Freundlich等溫吸附方程表示多層吸附.Langmuir和Freundlich線性表達式(4)和式(5):
式中:m表示理論最大吸附量,mg/g;e表示平衡時吸附量,mg/g;e表示溶液中剩余U(Ⅵ)濃度, mg/L;a表示吸附位點與溶質(zhì)結(jié)合穩(wěn)定度.f是Freundlich擬合常數(shù),表示吸附劑的吸附能力.為經(jīng)驗常數(shù),表示U(Ⅵ)濃度對吸附效果的影響.
從圖6和表2可以看出,在298K、303K、308K和313K時,Langmuir和Freundlich吸附模型均具有良好的線性關(guān)系,但擬合參數(shù)2(Langmuir) >2(Freundlich).U(Ⅵ)主要與大腸桿菌表面均勻分布的特定活性位點發(fā)生單層吸附[15].a值在0~0.1內(nèi)、25.02 2.5.2 吸附熱力學(xué)參數(shù) 由公式(6)、(7)計算反應(yīng)的焓變(Δo)、反應(yīng)物和產(chǎn)物之間熵的變化(Δo)、Gibb’s自由能變化(D).若Do>0,則為吸熱反應(yīng),反之為放熱反應(yīng).若Δo>0說明系統(tǒng)混亂度增加.o<0,表明該吸附反應(yīng)能自發(fā)進行,若Do>0,則該吸附反應(yīng)不能自發(fā)進行[11].(=/e,=8.314J/(mol·K). Do=Do-Do(7) 如表3所示:Δo>0、Δo>0、D<0.表明大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附反應(yīng)具有自發(fā)性和吸熱的特點,隨著吸附反應(yīng)的進行系統(tǒng)混亂度增加. 表2 大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附等溫常數(shù)Table 2 Adsorption isotherm constants of uranium biosorption byE.col 根據(jù)公式(8)和公式(9)分別對大腸桿菌吸附U(VI)的過程進行了動力學(xué)擬合[12-13],公式(8)為準一級動力學(xué)方程,公式(9)為準二級動力學(xué)方程,和圖7. ln(e-q)=lne-1(8) 式中:e和q分別表示吸附平衡時的吸附量和時刻的吸附量,mg/g;1(min-1)和2[g/(mg·min)]分別表示準一級和準二級動力學(xué)方程的速率常數(shù). 表4 大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附動力學(xué)參數(shù)Table 4 Kinetic constants of uranium adsorption byE.col 從表4和圖7可以看出,準二級動力學(xué)吸附模型可以更好地描述大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附過程,其線性相關(guān)系數(shù)2=0.9998.準二級動力學(xué)擬合得到的理論最大吸附量131.41mg/g與實驗2.2所得的平衡吸附量129.74mg/g相當(dāng).準二級動力學(xué)模型是假設(shè)在吸附過程中,吸附速率由吸附劑表面未被占有的吸附空位數(shù)目的平方值決定的,且受化學(xué)吸附機理的控制,推測在吸附過程中存在化學(xué)吸附作用. 圖8為大腸桿菌與U(Ⅵ)作用前后的傅利葉紅外光譜圖(4000~400cm-1),對吸附作用前后菌體的紅外特征峰進行分屬[9,14,16]. 3200~ 3800cm-1為締合的—OH振動峰、分子間氫鍵及蛋白質(zhì)中—NH2鍵伸縮振動. 2900~3000cm-1主要來自于細胞壁中蛋白質(zhì)、脂類的—CH3、—CH2和—CH的對稱、反對稱伸縮振動峰.1470~1700cm-1為酰胺基酰胺Ⅰ帶的C=O振動和醛酮COO-的反對稱伸縮振動,酰胺Ⅱ帶的N—H彎曲振動和C—N伸縮振動.1300~ 1470cm-1為—COOH的伸縮振動、—CH3的彎曲振動和—CH2的剪切運動. 1000~1300cm-1為碳水化合物或醇類C—O、C—H的伸縮振動,磷酸基團PO2-、P(OH)2對稱和非對稱.吸附鈾后菌體3289.68cm-1的吸收峰位移到3429.91cm-1,推測—OH、蛋白質(zhì)中-NH2可能參與吸附過程,在吸附過程中分子間作用力發(fā)生了改變.2927.10cm-1吸收峰為細胞蛋白質(zhì)、脂類中烷基伸縮振動,在吸附前后位移不明顯.酰胺基的1652.36cm-1和1541.44cm-1吸收峰位移到1633.67cm-1和1514.19cm-1,表明酰胺基可能與U(Ⅵ)作用.1075.92cm-1的吸收峰位移到1033.72cm-1,暗示細胞表面C—O、C—H可能與U(Ⅵ)作用.菌體1256.83cm-1處吸收峰消失,說明磷酸基團與U(VI)發(fā)生配位作用.在與U(Ⅵ)作用后,菌體表面出現(xiàn)UO22+的特征吸收峰(-1、876.16cm-1).劉明學(xué)[17]等的研究表明,920cm-1和922cm-1分別為水碳鈉鈣鈾礦(Na2Ca(UO2) CO3×6H2O)、鈣鈾云母(Ca[(UO2)(PO4)]×6H2O)的反對稱伸縮振動峰.結(jié)合本實驗XRD分析結(jié)果,推測菌體919.80cm-1處的吸收峰為鈣鈾云母晶體. 圖10為大腸桿菌與U(Ⅵ)作用后的X射線衍射結(jié)果,經(jīng)與無機晶體結(jié)構(gòu)數(shù)據(jù)庫(ICSD)的PDF2標準卡片對比,大腸桿菌與U(Ⅵ)作用的主要產(chǎn)物為鈾的磷酸鹽,包括CaU(PO4)2、Ca(UO2)2(PO4)2×H2O、NaUO2(PO3)3.菌體上部分U(Ⅵ)被還原為U(Ⅳ),這與Kazy等[20]報道的綠膿桿菌與U(Ⅵ)作用后生成含鈾磷酸鹽的結(jié)果比較相似.菌體吸附U(Ⅵ)之后,經(jīng)800℃灰化4h,其減重比為7.19.對富集U(Ⅵ)之后的菌體灰化處理,提高了鈾的磷酸鹽[CaU(PO4)2、Ca(UO2)2(PO4)2×H2O、NaUO2(PO3)3]在作用產(chǎn)物中的比例,使富集在菌體上的Ⅵ)轉(zhuǎn)化為更加穩(wěn)定的化合物,有利于對廢液中U(Ⅵ)的富集和回收. 表5 大腸桿菌吸附U(Ⅵ)灰化減重Table 5 The weight reduction about adsorption of U(Ⅵ) byE.coli 3.1 在pH=5、0(U)=50mg/L的溶液中,大腸桿菌粉末可在前10min內(nèi)完成74.10%的吸附率.最大吸附容量為276.89mg/g. 3.2 Langmuir等溫模型和準二級動力學(xué)方程能較好的描述大腸桿菌對U(Ⅵ)的吸附過程,其過程具有吸熱、系統(tǒng)混亂度增加、自發(fā)進行的特點. 3.3 溶液中U(Ⅵ)與大腸桿菌作用過程中,主要與菌體表面的烷基、氨基、羧基等基團作用,重點與含磷的基團(如PO2-、P(OH)2)絡(luò)合配位. 3.4 U(Ⅵ)與大腸桿菌作用,最終生成鈾的磷酸鹽[CaU(PO4)2、Ca(UO2)2(PO4)2×H2O],菌體在灰化后出現(xiàn)新的物相[NaUO2(PO3)3]. 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The maximum biosorption capacity was 276.89mg/g when pH was 5and the initial U(Ⅵ) concentration was 50mg/L. The adsorption process could be well described by Langmuir isothermal model and the pseudo-second order model. FTIR (876.16cm-1, UO22+), SEM-EDS (2.4~4.4keV, U) and XRD results certified that U(Ⅵ) were successfully adsorbed on the cell surface of. UO22+mainly reacted with alkyl, amino, carboxyl and intermolecular hydrogen bond on the surface ofespecially complexing with P containing groups (PO2-, P(OH)2, PO43-and PO3-). After adsorption, U(Ⅵ) were transformed to uranium containing phosphate, such as CaU(PO4)2、Ca(UO2)2(PO4)2×H2O and NaUO2(PO3)3. ;U(Ⅵ);thermodynamics;kinetics;FTIR;the containing P functional groups;SEM-EDS;XRD X522 A 1000-6923(2016)06-1780-08 黃 榮(1994-),男,四川內(nèi)江人,西南科技大學(xué)本科生,主要從事放射性污染生物修復(fù)方面的研究.發(fā)表論文2篇. 2015-12-10 國家重點基礎(chǔ)研究發(fā)展計劃(973)項目(2014CB846003);國家自然科學(xué)基金(41502316,41272371,41472310);核廢物與環(huán)境安全國防重點學(xué)科實驗室預(yù)先研究基金項目(15yyhk11);西南科技大學(xué)博士基金(15zx7109)
2.6 吸附動力學(xué)分析

2.7 紅外光譜分析(FTIR)
2.8 掃描能譜分析(SEM-EDS)
2.9 作用產(chǎn)物(XRD)及減重分析

3 結(jié)論