雷公藤多甙對A375黑色素瘤生長、侵襲和血管生成的影響及其機制

徐紅濤，韓中保,張慧麗，馬林偉

(鹽城衛生職業技術學院臨床醫學教研室，江蘇鹽城 224005)

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雷公藤多甙對A375黑色素瘤生長、侵襲和血管生成的影響及其機制

徐紅濤，韓中保,張慧麗，馬林偉

(鹽城衛生職業技術學院臨床醫學教研室，江蘇鹽城 224005)

目的探討雷公藤多甙對黑色素瘤生長、侵襲和血管生成的影響及其作用機制。方法采用藥物總評分(MTS)法考察雷公藤多甙對人黑色素瘤A375細胞增殖的影響；利用裸鼠皮下移植瘤模型考察雷公藤多甙對體內黑色素瘤生長的影響；Transwell實驗考察雷公藤多甙對人黑色素瘤A375細胞侵襲的影響；小管形成實驗檢測雷公藤多甙對人黑色素瘤血管生成的影響；酶聯免疫吸附試驗(ELISA)檢測雷公藤多甙對A375細胞分泌因子的影響，如血管內皮生長因子(VEGF)、堿性纖維母細胞生長因子(bFGF)、轉化生長因子-β(TGF-β)及白細胞介素-8(IL-8)等。結果雷公藤多甙處理A375細胞后，腫瘤細胞的體外增殖及體內生長較對照組明顯受到抑制；腫瘤細胞的侵襲能力較對照組明顯減弱；雷公藤多甙能通過下調VEGF、bFGF及IL-8蛋白從而抑制腫瘤細胞誘導的血管生成；但對TGF-β蛋白的表達沒有明顯影響。結論雷公藤多甙具有抗黑色素瘤生長及侵襲的能力，其機制可能與抑制黑色素瘤的血管生成有關。

雷公藤多甙；黑色素瘤；生長；侵襲；血管生成；分子機制

雷公藤多甙是由衛矛科植物雷公藤根(去皮)經粉碎、提取，精制而成[1]。研究發現雷公藤多甙具有多種藥理學功能，如抗類風濕性關節炎[2]、調節機體免疫功能[3]，治療婦科疾病[4]，糖尿病[5]及哮喘[6]等。近年來，諸多研究表明雷公藤多甙具有較為廣泛的抗腫瘤作用[7-8]。本研究以A375黑色素瘤細胞為研究對象，考察雷公藤多甙對黑色素瘤生長、侵襲及血管生成的影響，并探討其可能的作用機制，為雷公藤多甙的臨床應用提供相關實驗依據。

1　材料與方法

1.1材料人源性黑色素瘤細胞系A375和原代人臍靜脈內皮細胞HUVEC購自中國科學院上海細胞生物學研究所；BALB/c裸鼠(雄性，6～8周齡，18～20 g)，SPF級，購自北京維通利華實驗動物技術有限公司，生產許可證號：SCXK(京)2012-0001。雷公藤多甙片購自湖南省醫藥公司，用DMSO(購自Sigma公司)溶解，并用0.22 μm微孔濾膜過濾除菌后置-20 ℃冰箱中備用。臨用前使用DMEM(購自凱基公司)培養基進行稀釋，整個體系中DMSO終濃度控制在5‰以內。10%胎牛血清及0.25%胰蛋白酶購自Gibco公司。BCA蛋白定量試劑盒購自美國Pierce公司。Ⅰ型鼠尾膠原蛋白購自天津衛凱生物有限公司，包裝規格：10 mg。MatrigelTM基底膜基質購自美國BD公司，包裝規格：5 mL。含Transwell小室的24孔板購自美國Corning公司。8 μm聚碳酸酯膜購自美國Corning公司。相關酶聯免疫吸附試驗(ELISA)試劑盒購自eBioscience公司。

1.2方法

1.2.1采用藥物總評分(MTS)法檢測雷公藤多甙對A375黑色素瘤細胞增殖的影響A375細胞用含10%胎牛血清的DMEM培養基于37 ℃、5% CO2培養箱中培養。取對數生長期的細胞，用胰酶消化后離心計數，用DMEM完全培養基調整細胞濃度為5×105/mL，接種于96孔板，每孔200 μL細胞懸液，常規培養至細胞增長至80%左右時，分別加入0、0.625、1.25、2.50、5.00、10.00、20.00 μg/mL的雷公藤多甙和對照溶劑組(DMSO)孵育24 h，之后每孔加入MTS試劑20 μL，繼續培養3 h。培養結束后，在490 nm波長下測定光密度值(OD值)。細胞增殖抑制率(%)=(1-實驗組OD值/陰性對照組OD值) ×100%。每個濃度設置6個復孔，實驗重復3次。

1.2.2A375裸鼠皮下移植瘤模型的建立及檢測雷公藤多甙對腫瘤體內生長的影響(1) 將購買的BALB/c裸鼠適應性飼養1周。然后根據體質量分成2組，選擇其中一組作為對照組(只接種腫瘤細胞，不接受任何藥物處理)；(2)常規培養A375黑色素瘤細胞，實驗前4～5 d，按1∶8比例將細胞傳代于75 cm2細胞培養瓶中，以免細胞生長過度而出現不完全融合。每個培養瓶大約含(0.8～1.0)×107個細胞，取對數生長期的細胞，棄去培養液，用PBS沖洗2遍。加入1 mL 0.25%胰酶-0.02%乙二胺四乙酸(EDTA)，37 ℃消化1 min后，輕敲培養瓶使細胞脫落，加血清終止消化。轉移至10 mL離心管中，1 000 r/min，常溫離心3 min，棄上清液。加PBS吹打獲得單細胞懸液。通過細胞計數將懸液濃度調節至1×107/mL，放置冰上備用；(3)用濃度為75%的乙醇消毒皮膚后，用1 mL注射器吸取0.2 mL(2×106個細胞)A375細胞懸液接種至裸鼠右后肢的背部皮下，每注射2只裸鼠，充分混勻細胞懸液后，繼續接種，接種完繼續飼養，每天觀察小鼠腫瘤的形成情況，接種7 d后，選擇造模成功的24只裸鼠，測定平均瘤體體積和體質量進行分組，分為模型組、雷公藤多甙低劑量組(10 mg/kg)、雷公藤多甙高劑量組(40 mg/kg)，每組5只，給藥21 d(藥物用食用油溶解，灌胃給藥；模型組給予不含藥的食用油)。每隔3天測量每只裸鼠的體質量和瘤體體積；(4) 給藥21 d后將各組裸鼠頸椎脫臼處死，剪開皮膚后，小心地剝離整個瘤塊，稱質量、拍照后，用4%多聚甲醛固定備用。

1.2.3Transwell實驗檢測雷公藤多甙對A375黑色素瘤細胞侵襲的影響24孔板的Transwell小室(含8 μm聚碳酸酯膜)上室膜表面均勻鋪被含去生長因子MatrigelTM的DMEM培養基稀釋液(1∶4,v/v)，于37 ℃、5% CO2培養箱放置30 min使之凝固，備用。取含對數生長期的人黑色素瘤細胞株A375細胞懸液100 μL接種于上室，并加入相應濃度的雷公藤多甙(0～2.5 μg/mL)，低血清培養(0.5%,v/v)，下室加入含20% FBS的DMEM培養基600 μL。每組均設3個復孔，作用24 h。24 h后取出小室，用棉拭子拭去上室中未遷移的細胞，用4%多聚甲醛固定10 min，PBS洗滌后用0.1%結晶紫染色30 min，PBS漂洗3次后置于載玻片上，在200倍鏡下隨機選5個視野計數，將小室置于400 μL/孔的甲醇中將結晶紫溶解，取200 μL溶解液置于96孔板中，于370 nm波長處檢測OD值，計算相對遷移率。

1.2.4小管形成實驗檢測雷公藤多甙對A375黑色素瘤血管生成的影響(1) 將96孔板和無菌移液槍頭置于-20 ℃冰箱中預冷過夜；將保存于-20 ℃冰箱中的MatrigelTM基底膜基質置于4 ℃冰箱中，緩慢解凍過夜待用;(2) 將預冷的96孔板置于冰板上，每孔加入100 μL MatrigelTM基底膜基質。將其先置于4 ℃ 10 min，再置于37 ℃、5% CO2/95%空氣的細胞培養箱中30 min;(3) 取指數生長期的HUVEC細胞(100 mm培養皿)，棄培養液。加10 mL PBS洗滌1次，棄去PBS后，加入4 mL 0.25%胰蛋白酶-0.02%EDTA，37 ℃消化2 min后，向其中加入5 mL完全培養基中和反應，吹打后將細胞轉入15 mL離心管中，1 000 r/min離心3 min。配制細胞懸液，用適量的基礎培養基調整細胞濃度為1.5×105/mL。96孔板的每孔緩慢加入100 μL細胞混懸液;(4) 除空白對照組(Control)，每孔加入等體積的A375細胞培養上清液0.2 mL進行培養。與此同時，不同濃度的雷公藤多甙(0～2.5 μg/mL)作用24 h后，分別于顯微鏡下觀察管腔形成情況并進行拍照記錄。運用Image J軟件分析管腔生成的長度。

1.2.5ELISA檢測雷公藤多甙對A375黑色素瘤相關分泌因子的影響(1)配液：在PBS中加入0.05%吐溫-20，0.10% BSA配制成稀釋液；在PBS中加入1%BSA配制成封閉液；在PBS中加入0.05%吐溫-20配制成洗滌液；將100 μg/mL的捕獲抗體原液用稀釋液稀釋100倍至1 μg/mL配制成包被液。(2)板的制備：在96孔板中加入配制好的包被抗體溶液，每孔100 μL，用膜密封，4 ℃過夜；倒出每孔液體，每孔加入200 μL洗滌緩沖液清洗，吸水紙上拍干，后續洗滌液同此，重復4次；每孔加入300 μL封閉液，在室溫下孵育1 h；重復第2步中的清洗步驟。(3)檢測程序：將所有試劑放至室溫；稀釋標準品，每孔加入100 μL的樣品或標準品，混合1 min，輕輕拍打板框，覆蓋膠條，室溫孵育2 h；重復洗滌；每孔加入100 μL檢測抗體，蓋上膠條，室溫孵育2 h；重復洗滌；每孔加入100 μL的鏈霉親和素-HRP(原液按稀釋倍數稀釋)，密封蓋板，在室溫下孵育30 min，避免放置在直射光下；重復洗滌；每孔加入100 μL底物，在室溫下孵育20～30 min。避免放置在直射光下；每孔加入50 μL終止液，輕輕搖晃板，確保充分混合；15 min后，設定酶標儀450 nm處和570 nm處，檢測每孔的OD值。

2　結　　果

2.1雷公藤多甙對A375細胞的增殖具有抑制作用體外不同濃度的雷公藤多甙處理A375細胞24 h，結果表明雷公藤多甙在5.00 μg/mL時對A375細胞的增殖出現抑制，10.00、20.00 μg/mL濃度時可以明顯抑制腫瘤細胞的增殖，并且呈現一定的量-效關系，見圖1。

*：P<0.05,**：P<0.01,與DMSO組比較。

圖1雷公藤多甙對A375黑色素瘤細胞增殖的影響

2.2雷公藤多甙能夠抑制A375黑色素瘤的體內生長裸鼠體內移植瘤實驗結果發現，與模型組相比，雷公藤多甙能夠顯著抑制A375黑色素瘤的體內生長，且具有一定的劑量依賴性，見圖2。

圖2　雷公藤多甙對裸鼠A375黑色素瘤皮下移植瘤體內生長的影響

*：P<0.05,**：P<0.001,與DMSO組比較。

圖3雷公藤多甙對A375黑色素瘤細胞遷移的影響(×200)

2.3雷公藤多甙能抑制A375黑色素瘤細胞的侵襲侵襲實驗中，選取對腫瘤細胞增殖無明顯抑制作用的濃度：0.625、1.25 μg/mL和2.5 μg/mL處理A375細胞24 h，結果表明雷公藤多甙在0.625 μg/mL時對A375細胞的侵襲出現抑制，1.25 μg/mL和2.5 μg/mL濃度可以顯著抑制腫瘤細胞的侵襲，并且具有一定的劑量依賴性，見圖3。

2.4雷公藤多甙能抑制腫瘤細胞誘導的小管形成小管形成實驗中，選取0、0.625、1.25、2.5 μg/mL雷公藤多甙及DMSO處理A375細胞24 h，結果表明，培養腫瘤細胞的上清液可以明顯的刺激小管形成。雷公藤多甙在0.625 μg/mL時對A375黑色素瘤細胞誘導的小管形成具有抑制作用，1.25 μg/mL和2.5 μg/mL濃度可以顯著抑制腫瘤細胞誘導的小管形成，并且具有一定的劑量依賴性，見圖4。

*：P<0.01，與DMSO組比較；**：P<0.01,與0 μg/mL組比較 。

圖4雷公藤多甙對腫瘤細胞誘導的小管形成的影響

2.5雷公藤多甙能夠抑制A375黑色素瘤細胞血管生成相關因子的分泌采用ELISA法對A375黑色素瘤細胞培養上清液進行檢測，考察雷公藤多甙對腫瘤細胞血管生成相關因子分泌的影響。結果表明雷公藤多甙能顯著抑制腫瘤血管生成相關因子的分泌，見圖5。

*：P<0.05,**：P<0.01,與DMSO組比較。

圖5雷公藤多甙對A375黑色素瘤細胞血管生成相關因子分泌的影響

3　討　　論

近年來黑色素瘤的發病率逐年升高，給人類的健康帶來巨大威脅[9]。目前，黑色素瘤的治療主要以手術切除病灶為主，輔以放療及化療[10]。該種方法對于未發生轉移的黑色素瘤治療效果較為理想，但對于已經發生轉移的黑色素瘤效果較差。因此找尋能夠有效治療黑色素瘤的藥物顯得尤為迫切。近年來，中藥在腫瘤的治療中受到了越來越多的重視，且大量臨床前研究顯示，多種中藥具有廣泛的抗腫瘤作用，如丹參[11-13]、川芎[14]等。

雷公藤多甙是從中藥雷公藤根中提取而來，大量研究表明，雷公藤多甙對多種腫瘤細胞具有較為廣泛的抗腫瘤作用，其主要通過抑制腫瘤細胞生長[15]及誘導腫瘤細胞凋亡[7]發揮作用。目前，尚無雷公藤多甙治療黑色素瘤的相關研究報道，考慮到雷公藤多甙廣泛的抗腫瘤作用，那么其對近些年來發病率逐漸升高的黑色素瘤有無治療作用成為了研究的興趣點所在。

本研究從體內、外考察了雷公藤多甙對A375黑色素瘤的影響，發現雷公藤多甙既能在體外抑制腫瘤細胞的增殖，同時對體內腫瘤的生長也具有抑制作用。同時，筆者也考察了雷公藤多甙對黑色素瘤細胞的體外遷移的影響，發現雷公藤多甙能夠抑制腫瘤細胞的體外遷移。考慮到腫瘤細胞的生長及轉移均依賴于腫瘤的血管生成[16]，因此筆者又考察了雷公藤多甙對腫瘤血管生成的影響，結果發現雷公藤多甙能顯著抑制腫瘤細胞誘導的血管生成。在腫瘤的血管生成過程中，多種因子參與其中，包括VEGF、bFGF、TGF-β及IL-8等，因此筆者又考察了雷公藤多甙對參與調控血管生成過程的這些因子的表達有何影響。結果發現，雷公藤多甙能夠顯著抑制VEGF、bFGF及IL-8的蛋白表達，但卻對TGF-β蛋白的表達沒有明顯影響，這表明雷公藤多甙對于黑色素瘤血管生成的調控不依賴于TGF-β。

綜上所述，本文從體外腫瘤細胞增殖、遷移、體內腫瘤生長及腫瘤血管生成角度考察了雷公藤多甙對A375黑色素瘤的影響，研究結果顯示，雷公藤多甙具有用于臨床治療黑色素瘤的潛能，這為雷公藤多甙后續的深入研究及藥物開發提供了一定的實驗依據。

[1]Song Q,Lu JZ,Li J.Effect of tripterygium glycosides on serum interleukin-1beta,interleukin-2,tumor necrosis factor alpha,and interferon-gamma levels in patients with Behcet′s disease[J].Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi,2010,30(6):598-600.

[2]Bao J,Dai SM.A Chinese herb Tripterygium wilfordii Hook F in the treatment of rheumatoid arthritis:mechanism,efficacy,and safety[J].Rheumatol Int,2011,31(9):1123-1129.

[3]Li T,Xie J,Li Y,et al.Tripterygium wilfordii Hook F extract in cART-treated HIV patients with poor immune response:a pilot study to assess its immunomodulatory effects and safety[J].HIV Clin Trials,2015,16(2):49-56.

[4]黃蘊．雷公藤多甙治療子宮內膜異位癥50例[J]．南通醫學院學報，1995，15(1)：70-71．

[5]吳藝捷，王煜非，楊虎天，等．雷公藤多甙用于1型糖尿病患者的免疫干預治療[J]．中華內分泌代謝雜志，2006，22(4)：342-346．

[6] Wang XH,Zhang ZY.Effect of tripterygium polyglucoside on T-lymphocyte subsets and serum interleukin-5 level in asthma patients[J].Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi,2001,21(1):25- 27.

[7]Yang HS,Kim JY,Lee JH,et al.Celastrol isolated from Tripterygium regelii induces apoptosis through both caspase-dependent and -independent pathways in human breast cancer cells[J].Food Chem Toxicol,2011,49(2):527-532.

[8]Ushiro S,Ono M,Nakayama J,et al.New nortriterpenoid isolated from anti-rheumatoid arthritic plant,Tripterygium wilfordii,modulates tumor growth and neovascularization[J].Int J Cancer,1997,72(4):657-663.

[9]Ascierto ML,Melero I,Ascierto PA.Melanoma:from incurable beast to a curable bet.the success of immunotherapy[J].Front Oncol,2015(5):152.

[10]Kyrgidis A,Valasidis A,Bourlidou E,et al.Better targeting melanoma:options beyond surgery and conventional chemotherapy[J].Recent Pat Endocr Metab Immune Drug Discov,2011,5(2):147-159.

[11] Zhang W,Lu Y.Advances in studies on antitumor activities of compounds in Salvia miltiorrhiza[J].Zhongguo Zhong Yao Za Zhi,2010,35(3):389-392.

[12]Zhou J,Xu XZ,Hu YR,et al.Cryptotanshinone induces inhibition of breast tumor growth by cytotoxic CD4+ T cells through the JAK2/STAT4/perforin pathway[J].Asian Pac J Cancer Prev,2014,15(6):2439-2445.

[13]Liu F,Yu G,Wang G,et al.An NQO1-initiated and p53-independent apoptotic pathway determines the anti-tumor effect of tanshinone ⅡA against non-small cell lung cancer[J].PLoS One,2012,7(7):e42138.

[14]Pan J,Shang JF,Jiang GQ,et al.Ligustrazine induces apoptosis of breast cancer cells in vitro and in vivo[J].J Cancer Res Ther,2015,11(2):454-458.

[15]劉靜，胡維新，葉茂，等．雷公藤多甙對人急性髓性白血病細胞株HL-60的生長抑制及凋亡誘導作用[J]．中南大學學報(醫學版)，2004，29(4)：382-385．

[16]Ebos JM,Lee CR,Cruz-Munoz WA,et al.Accelerated metastasis after short-term treatment with a potent inhibitor of tumor angiogenesis[J].Cancer Cell,2009,15(3):232-239.

Effect of tripterygium on growth,invasion and angiogenesis of A375 melanoma and its action mechanisms

XuHongtao,HanZhongbao,ZhangHuili,MaLinwei

(TeachingandResearchingSectionofClinicalMedicine,YanchengInstituteofHealthVocationalTechnology,Yancheng,Jiangsu224005,China)

ObjectiveTo investigate the effect of tripterygium on the growth,invasion and angiogenesis of melanoma A375 and its action mechanisms.MethodsMTS was used to test the effect of tripterygium on proliferation of A375 melanoma;the nude mouse subcutaneous melanoma xenograft model was used to detect the effect of tripterygium on tumor growth;the Transwell experiment was used to determine the effect of tripterygium on invasion of A375 melanoma;the tubule formation experiment was used to determine the effect of tripterygium on tumor angiogenesis;ELISA was used to detect the influence of tripterygium on A375 cellular secretion factors,such as VEGF,bFGF,TGF-β and IL-8.ResultsThe in vitro proliferation and in vivo growth of A375 melanoma cells after tripterygium treatment were significant inhibited,the invasion ability of A375 melanoma cells was significant weakened compared with the control group;tripterygium could inhibit tumor cell-induced vessel formation by down-regulating the expression of VEGF,bFGF and IL-8 proteins,but it had no influence on expression of TGF-β protein.ConclusionTripterygium has anti-growth and anti-invasion effects on A375 melanoma,its potential mechanisms may associated with the inhibition of tumor angiogenesis of A375 melanoma.

Tripterygium;melanoma;growth;invasion;tumor angiogenesis;molecular mechanism

徐紅濤(1980-)，講師，碩士，主要從事動脈粥樣硬化及血管生成研究。

R758.1

A

1671-8348(2016)20-2752-04

2015-12-15

2016-03-01)

論著·基礎研究doi:10.3969/j.issn.1671-8348.2016.20.005