金慧鳴,郭紅英,譚興和*,劉夢浩,王 鋒,蔡 文,張 喻,鄧潔紅(湖南農業大學食品科技學院,食品科學與生物技術湖南省重點實驗室,湖南 長沙 410128)
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大孔吸附樹脂-聚酰胺聯用純化茅巖莓總黃酮工藝優化
金慧鳴,郭紅英,譚興和*,劉夢浩,王 鋒,蔡 文,張 喻,鄧潔紅
(湖南農業大學食品科技學院,食品科學與生物技術湖南省重點實驗室,湖南 長沙410128)
摘 要:為純化茅巖莓總黃酮,先用HPD-100型大孔吸附樹脂(macroporous adsorption resin,MAR)層析柱進行初步純化,再用聚酰胺(polyamide,PA)層析柱進行第2次純化,得到的HPD-100型MAR最適宜吸附工藝參數為上樣液總黃酮質量濃度6 mg/mL、上樣流速1 mL/min、上樣液體積130 mL,在此條件下吸附率為97.14%;最適宜解吸工藝參數為洗脫液乙醇體積分數70%、洗脫流速1 mL/min、洗脫液體積40 mL,在此條件下解吸率為94.10%。經HPD-100型MAR純化后的總黃酮純度從55.00%提高到了72.25%。PA的最適宜吸附工藝參數為上樣液總黃酮質量濃度6 mg/mL、上樣流速2 mL/min,在此條件下吸附率為99.57%;最適宜解吸工藝參數為洗脫液乙醇體積分數70%、洗脫流速1 mL/min、洗脫液體積55 mL,在此條件下解吸率為76.50%。經PA純化后總黃酮純度從72.25%提高到了80.75%。該方法為茅巖莓黃酮的純化提供了一種更高效的方法,具有良好的應用前景。
關鍵詞:茅巖莓;總黃酮;大孔吸附樹脂;聚酰胺;純化
引文格式:
金慧鳴, 郭紅英, 譚興和, 等. 大孔吸附樹脂-聚酰胺聯用純化茅巖莓總黃酮[J]. 食品科學, 2016, 37(12): 13-18.
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茅巖莓,學名顯齒蛇葡萄(Ampelopsis grossedentata),系葡萄科蛇葡萄屬的一種野生藤本植物,其干燥的葉片黃酮類化合物含量極高,最高可達干質量的45%左右,具有抗氧化、抑菌、降血糖、降血脂、保肝護肝的功效[1-4]。其中,總黃酮中含量最高的是二氫楊梅素,最新研究證明其具有抑制乳腺癌細胞和前列腺癌細胞增殖的作用[5-7]。隨著人們對黃酮保健作用認識的加強,茅巖莓黃酮的利用越來越得到重視。
近年來,大孔吸附樹脂(macroporous adsorption resin,MAR)被廣泛用于化學和醫藥行業中,尤其是植物粗提物中生物活性物質的提取純化分離,它具有操作成本低、溶劑耗費少、工作強度小、容易再生等優點[8-11]。聚酰胺(polyamide,PA)是一種以酰胺鍵聚合形成的高分子化合物,主要通過氫鍵之間相互作用的親和力進行吸附[12-13],其對黃酮化合物有很強的吸附性能,且分離和脫色效果好,可以彌補MAR的一些不足。本研究試圖通過MAR與PA聯用,確定純化茅巖莓總黃酮的工藝參數,旨在為茅巖莓總黃酮的純化提供一種更高效的方法。
1.1材料與試劑
干茅巖莓葉(用中藥粉碎機將其粉碎,過120 目篩,裝入密封袋備用)張家界茅巖莓公司;二氫楊梅素標準品(色譜級,純度≥99%)成都曼思特生物科技有限公司;HPD-100型MAR鄭州勤實科技有限公司;PA粉(80~100 目)、無水乙醇(分析純)、三氯化鋁(分析純)國藥集團化學試劑有限公司;氫氧化鈉(分析純)天津市風船化學試劑科技有限公司;鹽酸(分析純)衡陽市凱倍化工試劑有限公司。
1.2儀器與設備
FW177中草藥粉碎機天津市泰斯特儀器有限公司;KQ-250DE超聲波清洗器昆山市超聲儀器有限公司;RE-2000B旋轉蒸發器、SHZ-D(Ⅲ)循環水式真空泵鞏義市予華儀器有限公司;FD-1B真空冷凍干燥機北京博醫康實驗儀器有限公司;SKY-200B氣浴搖床上海蘇坤實業有限公司;UV-2450紫外-可見分光光度儀、ATX224電子分析天平日本島津公司;DENVER電子天平北京賽多利斯儀器有限公司;100、1 000、5 000 μL移液槍艾本德(中國)有限公司。
1.3方法
1.3.1茅巖莓黃酮含量的測定
采用紫外分光光度法[14]并做適當改進。精密稱取1.8 mg二氫楊梅素標準品于10 mL容量瓶里,用95%乙醇溶液定容;再從中準確吸取0、0.4、0.8、1.2、1.6、2.0、2.4 mL于25 mL容量瓶中,分別加入3 mL質量分數5%的AlCl3溶液,用95%乙醇溶液定容到刻度,搖勻,配制成質量濃度分別為0、0.002 88、0.005 76、0.008 64、0.011 52、0.014 40、0.017 28 mg/mL的二氫楊梅素標準溶液,在室溫放置40 min,于紫外分光光度計296 nm波長處測定吸光度。以二氫楊梅素質量濃度C為橫坐標、吸光度A為縱坐標繪制茅巖莓總黃酮標準曲線,并通過線性回歸得到回歸方程:A=48.090 3C-0.000 8,R2=0.999 8。
1.3.2MAR的預處理
按照文獻[15]進行預處理,處理完后置于蒸餾水中備用。
1.3.3PA的預處理
按照文獻[16]進行預處理,處理完后置于蒸餾水中備用。
1.3.4MAR上樣液的制備
上樣液制備流程:茅巖莓粉→加入乙醇溶液→超聲波輔助乙醇法提取→過濾→旋轉蒸發成浸膏狀→冷凍干燥→加蒸餾水配制成不同質量濃度總黃酮溶液(超聲波助溶)→備用。
提取條件為:乙醇體積分數67%、超聲波處理溫度58 ℃、超聲波處理時間28 min、液料比22.5∶1(mL/g)[17]。
1.3.5MAR動態吸附與解吸工藝參數的確定
取2 0 m L已處理好的M A R濕法裝入層析柱(Φ18 mm×300 mm)中,再將茅巖莓總黃酮溶液上柱,待總黃酮溶液通過樹脂柱后,用大約4~5 BV (1 BV=20 mL)蒸餾水沖洗樹脂柱,最后用乙醇溶液進行洗脫。通過測定吸附液和洗脫液中總黃酮質量濃度并計算吸附率和解吸率,考察上樣液總黃酮質量濃度、上樣流速、上樣液體積以及洗脫液體積分數、洗脫流速、洗脫液體積對MAR性能的影響,確定最適宜工藝參數。
1.3.6PA動態吸附與解吸工藝參數的確定
取經MAR最適宜工藝參數吸附和洗脫處理的總黃酮溶液,測得洗脫液中總黃酮的質量,通過旋轉蒸發儀去除有機溶劑,再加入水溶液配制成不同總黃酮質量濃度的溶液作為上樣液,備用。量取20 mL已處理好的PA濕法裝入層析柱(Φ18 mm×300 mm)中,將上樣液通過PA柱進行吸附,考察上樣液總黃酮質量濃度和上樣流速對PA性能的影響,再用4~5 BV蒸餾水沖洗,然后分別用體積分數為30%、50%、70%、90%的乙醇溶液以1 mL/min進行洗脫,每流出5 mL流出液收集并測定總黃酮質量濃度,并以洗脫液體積為橫坐標、流出液中總黃酮質量濃度為縱坐標繪制動態洗脫曲線,從而確定最適宜的洗脫液體積和乙醇體積分數。最后考察不同洗脫流速對PA性能的影響。
1.3.7吸附率和解吸率的計算
通過測定上樣液、吸附液和洗脫液中總黃酮的質量濃度來計算吸附率和解吸率,如式(1)、(2)所示:


式中:C0為上樣液總黃酮質量濃度/(mg/mL);C1為吸附液總黃酮質量濃度/(mg/mL);C2為洗脫液總黃酮質量濃度/(mg/mL);V1為上樣液體積/mL;V2為洗脫液體積/mL。
1.3.8總黃酮純度的測定
分別將MAR和PA的洗脫液置于旋轉蒸發儀中濃縮成浸膏狀,再冷凍干燥成粉末。準確稱取適量總黃酮粉,用95%乙醇溶液溶解,用1.3.1節方法測定溶液中總黃酮質量濃度,從而計算樣品中黃酮純度,如式(3)所示:

式中:C為溶液中總黃酮質量濃度/(mg/mL);V為溶解總黃酮粉所用的乙醇溶液體積/mL;m為稱取的總黃酮粉質量/g。
2.1MAR動態吸附與解吸工藝參數的確定
2.1.1上樣液總黃酮質量濃度對吸附效果的影響
一是著力加強供應環節管理。建立科學有效的比價采購機制,力求質優價廉;建立農資品質監控體系,對采購農用物資的名稱、產地、商標、數量等進行驗證,并委托相關部門檢驗合格后,方可大面積使用;加強采購合同管理和大隊庫存農資的管理。
分別取50 mL總黃酮質量濃度為2、4、6、8 mg/mL的上樣液,以上樣流速1 mL/min通過已處理好的MAR,收集吸附后的流出液,測定其總黃酮質量濃度并計算吸附率。

圖1 上樣液總黃酮質量濃度對吸附效果的影響Fig. 1 Effect of total flavonoids concentration in sample on the adsorption efficiency
由圖1可知,上樣液總黃酮質量濃度較小時吸附率也較低,2~6 mg/mL范圍內,吸附率隨著質量濃度的增加而增加,上樣液總黃酮質量濃度為6 mg/mL時,吸附率達到最大,繼而又隨著質量濃度的增加而降低。這是由于上樣液總黃酮質量濃度越高,單位表面積內的總黃酮與MAR接觸量越多,吸附量也就越多大[18]。但如果上樣質量濃度太大,可能不僅使總黃酮在樹脂中擴散能力下降,而且與總黃酮競爭吸附的雜質量也隨之增大[19],MAR更容易達到飽和,使得總黃酮得不到充分吸附,易造成能源浪費。所以,最適宜的上樣液總黃酮質量濃度為6 mg/mL。
2.1.2上樣流速對吸附效果的影響
取50 mL總黃酮質量濃度為6 mg/mL的上樣液分別以上樣流速0.5、1.0、1.5、2.0 mL/min通過已處理好的MAR柱,收集吸附后的流出液,測定其總黃酮質量濃度并計算吸附率。

圖2 上樣流速對吸附效果的影響Fig. 2 Effect of sample flow rate on the adsorption efficiency
由圖2可知,吸附率隨著上樣流速的增加而逐漸下降,但下降趨勢較緩慢。因為上樣液流速過快,目標物來不及被樹脂充分吸附就會開始泄漏;而上樣流速過慢,目標物與樹脂接觸越充分,從而提高MAR的吸附量,但會降低吸附效率[19-20],因此在不影響吸附效率的情況下選擇合適的上樣流速非常重要。綜合考慮吸附效果與工作效率兩個因素,選擇1 mL/min為最適宜的上樣流速。
2.1.3上樣液體積對吸附效果的影響
取150 mL總黃酮質量濃度為6 mg/mL的上樣液分別以上樣流速1 mL/min通過 已處理好的MAR柱,以5 mL為一個體積單位收集流出液,測定其總黃酮質量濃度,并以上樣液體積為橫坐標、流出液總黃酮質量濃度為縱坐標繪制動態吸附曲線,考察上樣液體積對吸附效果的影響。

圖3 動態吸附曲線Fig. 3 Dynamic adsorption curve
從圖3可以看出,上樣液體積0~125 mL時,流出液總黃酮質量濃度很低,且基本處于穩定平緩的趨勢;當上樣液體積繼續增加到130 mL時,質量濃度開始明顯上升;當上樣液體積達到135 mL時,流出液總黃酮質量濃度為0.911 mg/mL,已經超過上樣液總黃酮質量濃度的1/10,故視130 mL為泄漏點[16]。因此,確定上樣液體積為130 mL,經計算吸附率達97.14%。
取130 mL總黃酮質量濃度為6 mg/mL的上樣液以上樣流速1 mL/min通過已處理好的MAR柱,再用4~5 BV蒸餾水以1 mL/min的流速沖洗MAR柱使流出液為無色透明。分別用50 mL體積分數為30%、50%、70%、90%的乙醇溶液作為洗脫液在1 mL/min的流速條件下進行洗脫,收集洗脫液,測定其總黃酮質量濃度并計算解吸率。

圖4 洗脫液體積分數對解吸效果的影響Fig. 4 Effect of eluent concentration on the desorption efficiency
考慮茅巖莓黃酮基本用于食品及醫藥領域,因此選擇相對安全性較高的乙醇作為洗脫液。由圖4可知,乙醇體積分數30%~70%,解吸率隨著乙醇體積分數的增大而增大;乙醇體積分數為70%時,解吸率最高;之后再增加乙醇體積分數,解吸率又隨之降低。這是因為乙醇體積分數不同,極性大小也不同,而黃酮與MAR之間存在著一定的范德華力,兩物質的極性越相近則范德華力越大[21]。可能由于70%乙醇溶液與茅巖莓黃酮的極性更為接近,因此最容易被洗脫下來,故選擇70%為最適宜的洗脫液乙醇體積分數。
2.1.5洗脫流速對解吸效果的影響

圖5 洗脫流速對解吸效果的影響Fig. 5 Effect of elution velocity on the desorption efficiency
取130 mL總黃酮質量濃度為6 mg/mL的上樣液,以上樣流速1 mL/min通過已處理好的MAR柱,再用4~5 BV蒸餾水以1 mL/min的流速沖洗MAR柱使流出液為無色透明。用50 mL 70%乙醇溶液作為洗脫劑分別在0.5、1.0、1.5、2.0 mL/min的流速 條件下進行洗脫,收集洗脫液,測定其總黃酮質量濃度并計算解吸率。
由圖5可知,當洗脫流速為0.5~1 mL/min時,解吸率隨著洗脫流速的增加而逐漸增加;流速為1 mL/min時,解吸率達到最高;之后解吸率又隨著流速進一步增加而逐漸降低,這可能是因為流速過快縮短了MAR表面活性部位與總黃酮相互作用的時間[22]。因此,洗脫流速以1 mL/min為宜。
2.1.6洗脫液體積對解吸效果的影響
取130 mL總黃酮質量濃度為6 mg/mL的上樣液,以上樣流速1 mL/min通過已處理好的MAR柱,再用4~5 BV蒸餾水以1 mL/min的流速沖洗MAR柱使流出液為無色透明。用50 mL 70%乙醇溶液作為洗脫劑在1 mL/min的流速條件下進行洗脫,以5 mL為一個體積單位收集流出液,測定其總黃酮質量濃度,并以洗脫液體積為橫坐標、流出液總黃酮質量濃度為縱坐標繪制動態洗脫曲線,考察洗脫液體積對解吸效果的影響。

圖6 動態洗脫曲線Fig. 6 Dynamic desorption curve
由圖6可知,當洗脫液體積為5 mL時,流出液中總黃酮質量濃度相對較小,隨后急劇上升,洗脫液體積為15 mL時,總黃酮質量濃度達到最大值,為65.465 mg/mL;當洗脫液體積達到45 mL時,總黃酮質量濃度只有0.052 mg/mL。因此,選擇40 mL為最適宜的洗脫液體積,此時,解吸率為94.10%。從該洗脫曲線可以看出,40 mL的洗脫液可以把茅巖莓總黃酮基本洗脫完全,且峰形較對稱,無拖尾。
2.2PA動態吸附與解吸工藝參數的確定
2.2.1上樣液總黃酮質量濃度對吸附效果的影響
分別將已去除有機溶劑的MAR解吸液(總黃酮含量為702 mg)加入一定量水溶液配制成總黃酮質量濃度為3、4、5、6 mg/mL的溶液,以上樣流速1 mL/min通過已處理好的PA柱,收集吸附后的流出液,測定其總黃酮質量濃度并計算吸附率。
由圖7可知,上樣液總黃酮質量濃度在3、4、5、6 mg/mL時,吸附率分別為99.57%、99.71%、99.59%、99.87%,差別非常小,均在99%以上。說明在此范圍內,總黃酮質量濃度對吸附效果影響非常小,且吸附效果非常好。因上樣液總黃酮質量已固定,考慮到上樣液總黃酮質量濃度越高,上樣液體積越小,吸附時間則越短,所以選擇6 mg/mL為最適宜的上樣液總黃酮質量濃度,此時,上樣液體積為117 mL。

圖7 上樣液總黃酮質量濃度對吸附效果的影響Fig. 7 Effect of total flavonoids concentration in sample on the adsorption efficiency
2.2.2上樣流速對吸附效果的影響
將已去除有機溶劑的MAR解吸液(總黃酮含量為702 mg),配制成總黃酮質量濃度為6 mg/mL的溶液,分別以上樣流速0.5、1.0、1.5、2.0 mL/min通過已處理好的PA柱,收集吸附后的流出液,測定其總黃酮質量濃度并計算吸附率。

圖8 上樣流速對吸附效果的影響Fig. 8 Effect of sample flow rate on the adsorption efficiency
由圖8可知,上樣流速在0.5~2 mL/min之間時,吸附率分別為99.83%、99.65%、99.58%、99.57%,仍然都在99%以上。因此,為提高效率,選擇2 mL/min為最適宜上樣流速。
2.2.3不同洗脫液體積分數的動態洗脫曲線

圖9 洗脫液體積分數對解吸效果的影響Fig. 9 Effect of eluant concentration on the desorption efficiency
將吸附好的PA用4~5 BV蒸餾水沖洗,再分別用體積分數為30%、50%、70%、90%的乙醇溶液以1 mL/min流速進行洗脫,每流出5 mL流出液收集并測定總黃酮質量濃度,并以洗脫液體積為橫坐標,總黃酮質量濃度為縱坐標繪制動態洗脫曲線,考察洗脫液體積分數和洗脫液體積對解吸效果的影響。
由圖9可知,體積分數為30%的乙醇溶液洗脫下來總黃酮較少,且峰形不集中,拖尾非常嚴重,這種拖尾現象導致了洗脫時間的延長和洗脫液體積的增大,當洗脫液體積達到200 mL時,流出液總黃酮質量濃度仍有0.260 mg/mL,此時解吸率只有55.9%。這可能是因為30%的乙醇溶液洗脫能力較弱,而一些黃酮化合物與PA形成較多氫鍵,結合力大,使得不易被洗脫[23]。50%乙醇溶液動態洗脫曲線峰形相對集中,稍有拖尾,55 mL的洗脫液能基本把黃酮洗脫下來,解吸率為72.88%。用70%乙醇溶液洗脫,洗脫液為20 mL時,流出液總黃酮質量濃度達到最高值,出峰較早,洗脫液為30 mL時,又出現一個峰值。這可能是由于PA的柱層析作用,根據吸附物質與PA結合力不同所以會被分開洗脫下來,不同的峰代表不同物質[24]。此時,洗脫液體積為55 mL,解吸率為77.77%,可能是70%的乙醇溶液能最大程度地降低PA和總黃酮的氫鍵作用。90%乙醇溶液動態洗脫曲線峰形較對稱集中,較70%乙醇溶液洗脫曲線出峰晚,且需65 mL乙醇溶液才能基本洗脫完全,此時解吸率為74.23%。因此,選擇55 mL、70%為最適宜的洗脫液體積和洗脫液體積分數。
2.2.4洗脫流速對解吸效果的影響
將吸附好的PA用4~5 BV蒸餾水沖洗,再用55 mL 70%乙醇溶液分別在0.5、1.0、1.5、2.0 mL/min的流速條件下進行洗脫,收集洗脫液,測定其總黃酮質量濃度并計算解吸 率。

圖10 洗脫流速對解吸效果的影響Fig. 10 Effect of eluent flow rate on the desorption efficiency
由圖10可知,解吸率在洗脫流速為0.5 mL/min時很低,之后隨著流速的加快解吸率迅速上升;流速為1 mL/min時,解吸率達到最大;流速從1~2 mL/min時,解吸率又隨著流速的加快而降低。因此,選擇1 mL/min為最適宜的洗脫流速,此時,解吸率為76.50%。
2.3總黃酮純度的測定結果
分別準確稱取20 mg純化前、經MAR純化后、經PA純化后的黃酮粉,精密加入5 mL 95%乙醇溶液進行溶解。測定溶液中總黃酮含量分別為2.20、2.89、3.23 mg/mL。再通過1.3.8節的公式計算出純度分別為55.00%、72.25%、80.75%。可見經MAR純化后純度提高了17.25%,純化效果較好。經PA化后的總黃酮雖然純度只提高了8.5%,但黃酮顏色由黃土赭色變成了象牙白,說明PA脫色效果較好。茅巖莓總黃酮用MAR與PA聯用法,純度提高了25.75%,說明此方法有一定的可行性。
本研究確定了MAR對茅巖莓總黃酮進行初步純化的最適宜工藝參數為:上樣液總黃酮質量濃度6 mg/mL、上樣液流速1 mL/min、上樣液體積130 mL;洗脫液乙醇體積分數70%、洗脫流速1 mL/min、洗脫液體積40 mL。在此條件下,茅巖莓總黃酮純度從55.00%提高到了72.25%。確定了PA對茅巖莓總黃酮第2次純化的最適宜工藝參數為:上樣液總黃酮質量濃度6 mg/mL、上樣液流速2 mL/min;洗脫液乙醇體積分數70%、洗脫流速1 mL/min、洗脫液體積55 mL。在此條件下,總黃酮純度提高到了80.75%。用MAR與PA聯用法純化茅巖莓總黃酮,純度提高了25.75%,而MAR法[25]純化茅巖莓總黃酮純度只提高了14.65%。因此MAR-PA聯用法達到了較好的純化目的,并使PA彌補了MAR在純化工藝上的不足,具有良好的應用前景,為實際生產提供了有效依據。
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Purification of Total Flavonoids from Ampelopsis grossedentata by Combined Use of Macroporous Adsorption Resin and Polyamide
JIN Huiming, GUO Hongying, TAN Xinghe*, LIU Menghao, WANG Feng, CAI Wen, ZHANG Yu, DENG Jiehong
(Key L aboratory for Food Science and Bio-Technology of Hunan Province, College of Food Science and Technology, Hunan Agricultural University, Changsha410128, China)
Abstract:Sequential column chromatographies on HPD-100 macroporous adsorption resin (MAR) and polyamide (PA) were used to purify total flavonoids from Ampelopsis grossedentata. The optimum adsorption parameters for HPD-100 MAR were determined as follows: sample concentration, 6 mg/mL; sample flow rate, 1 mL/min; and sample volume, 130 mL. Under these conditions, the percentage adsorption was 97.14%. The optimum desorption parameters were established as follows: eluent concentration, aqueous ethanol (70:30, V/V); eluent volume, 40 mL; and flow rate, 1 mL/min. Under these conditions, the percentage desorption was 94.10%. After the treatment with HPD-100 MAR, the purity of total flavonoids was inc reased from 55.00% to 72.25%. The optimum adsorption parameters for PA were determined as follows: sample concentration, 6 mg/mL; and flow rate, 2 mL/min. Under these conditions, the percentage adsorption was 99.57%. The optimum desorption parameters were determined as follows: 70% ethanol in water (V/V) as the eluent; eluent volume, 55 mL; and flow rate, 1 mL/min. Under these conditions, the percentage desorption was 76.50%. After the treatment with PA, the purity of total flavonoids was further increased to 80.75%. The method presented in this study can provided a promising approach for the efficiency purification of total flavonoids from Ampelopsis grossedentata.
Key words:Ampelopsis grossedentata; total flavonoids; macroporous adsorption resin; polyamide; purification
收稿日期:2015-10-14
基金項目:國家自然科學基金面上項目(31371817);湖南省自然科學基金項目(2015JJ3076)
作者簡介:金慧鳴(1990—),女,碩士研究生,研究方向為農產品加工技術。E-mail:279697317@qq.com
*通信作者:譚興和(1959—),男,教授,博士,研究方向為農產品加工技術。E-mail:xinghetan@163.com
DOI:10.7506/spkx1002-6630-201612003 10.7506/spkx1002-6630-201612003. http://www.spkx.net.cn
中圖分類號:TS201.1
文獻標志碼:A
文章編號:1002-6630(2016)12-0013-06