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神經(jīng)干細(xì)胞移植減少腦出血大鼠神經(jīng)功能的凋亡

2016-05-09 12:03:22祁紹艷劉曉靜劉小軍
關(guān)鍵詞:模型

祁紹艷 祁 景 劉曉靜 劉小軍

鄭州大學(xué)第二附屬醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科 鄭州 450014

神經(jīng)干細(xì)胞移植減少腦出血大鼠神經(jīng)功能的凋亡

祁紹艷 祁 景 劉曉靜 劉小軍

鄭州大學(xué)第二附屬醫(yī)院重癥醫(yī)學(xué)科 鄭州 450014

目的 探討神經(jīng)干細(xì)胞移植對(duì)腦出血大鼠神經(jīng)功能的影響。方法 采用立體定位儀制作腦出血大鼠模型,隨機(jī)將大鼠分為sham組、ICH組及NSCs組,通過(guò)mNSS評(píng)分定量評(píng)價(jià)細(xì)胞移植后,觀察腦出血大鼠在第1、3、7、14、28天的神經(jīng)功能的行為學(xué)的動(dòng)態(tài)變化;進(jìn)行Caspase-3的免疫組織化學(xué)及灰度分析,觀察其表達(dá)情況。結(jié)果 NSCs組mNSS評(píng)分在14、28 d均較ICH組明顯改善(P<0.05)。NSCs組大鼠腦血腫周圍組織的Caspase-3的表達(dá)水平較ICH組明顯降低(P<0.05)。結(jié)論 NSCs移植能有效改善腦出血大鼠的神經(jīng)功能評(píng)分,其機(jī)制可能是通過(guò)調(diào)節(jié)Caspase-3的表達(dá)減少細(xì)胞凋亡。

NSCs;腦出血;凋亡

腦出血(intracerebral hemorrhage,ICH)是一種高的病死率及高致殘率的嚴(yán)重威脅人類健康的重大疾病,目前尚無(wú)有效的辦法治療腦出血引起的嚴(yán)重神經(jīng)功能障礙,干細(xì)胞移植治療是目前腦出血研究的主要方向之一,但干細(xì)胞移植治療腦出血的機(jī)制仍不明確[1]。本文對(duì)NSCs移植治療腦出血在細(xì)胞凋亡方面的機(jī)制進(jìn)行探討。

1 材料和方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料 動(dòng)物:SD大鼠的飼養(yǎng)及相關(guān)實(shí)驗(yàn)程序均經(jīng)過(guò)鄭州大學(xué)倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。選取SPF級(jí)雄性SD大鼠30只(250~300 g)均來(lái)自河南省實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供;細(xì)胞:NSCs為本實(shí)驗(yàn)室自已保存。

1.2 主要試劑和儀器 DMEM、DMEM/F12、胰蛋白酶、青霉素-鏈霉素溶液(Pen-Strep solution),抗體Caspase-3(美國(guó)invitrogen公司);DMSO、Polyrene(sigma公司);胎牛血清(hyclone公司);Ⅶ型膠原酶(sigma公司),鼠腦立體定位儀(日本Narishige SN-3公司),DAB試劑盒(北京中杉金橋生物技術(shù)公司);倒置顯微鏡(德國(guó)LEICA公司)。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的分組及動(dòng)物模型的制作:隨機(jī)選取雄性SD大鼠30只分為sham組(立體定位儀定位穿刺但不打入Ⅶ型膠原酶)10只,ICH模型組(立體定位儀定位穿刺并打入Ⅶ型膠原酶)10只,NSCs干預(yù)組(模型鑒定成功后24 h內(nèi)采用立體定位儀定位穿刺立體定位注射NSCs)10只,模型制作方法:將大鼠俯臥位固定在大鼠腦立體定位儀上,參照George Paxinos大鼠腦立體定位圖譜[2],取大鼠左側(cè)紋狀體為定位點(diǎn),選取前囟后0.2 mm,左側(cè)旁開3 mm,垂直進(jìn)針6 mm。以10 μL微量進(jìn)樣器緩慢注入0.5 U(2 μL)Ⅶ型膠原酶溶液,留針10 min,之后緩慢退針。針退出后,清潔創(chuàng)面,縫合頭皮。術(shù)后24 h進(jìn)行mNSS評(píng)分,納入8~12分的大鼠。

1.3.2 NSCs細(xì)胞的培養(yǎng):將復(fù)蘇的NSCs(本實(shí)驗(yàn)室保存)傳代直至達(dá)到移植細(xì)胞數(shù)(1×106L-1)。

1.3.3 大鼠的神經(jīng)功能評(píng)分:采用mNSS(modified neurological severity scores)評(píng)分評(píng)價(jià)大鼠神經(jīng)功能缺損和恢復(fù)情況[3],各組大鼠分別在術(shù)后1、3、7、14、28 d進(jìn)行評(píng)分。

1.3.4 組織的取材、切片及染色:造模后28 d分別提取各組大鼠的腦組織標(biāo)本,采取多聚甲醛灌注固定法固定大鼠腦組織,進(jìn)行梯度蔗糖脫水以后進(jìn)行冰凍冠狀切片(厚12 mm);各組切片分別進(jìn)行Caspase-3的免疫組織化學(xué)染色。

2 結(jié)果

2.1 大鼠神經(jīng)功能評(píng)分 注射膠原酶大鼠腦出血后,24 h內(nèi)大鼠迅速出現(xiàn)神經(jīng)功能缺損的表現(xiàn),其癥狀體征在造模術(shù)后1~3 d達(dá)到高峰,隨后隨時(shí)間延長(zhǎng)逐漸恢復(fù)。NSCs組較模型組術(shù)后14、28 d的mNSS評(píng)分均較低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)表1。

表1 各組各時(shí)間點(diǎn)mNSS評(píng)分比較

2.2 免疫組化染色陽(yáng)性細(xì)胞 光學(xué)顯微鏡下觀察為胞漿被染為棕褐色或棕黃色、淡黃色顆粒狀,Caspase-3在NSCs組較假手術(shù)組,與模型組表達(dá)減少 (圖1)。NSCs組與假手術(shù)組的陽(yáng)性細(xì)胞數(shù)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。見(jiàn)圖2。

圖1 Caspase-3免疫組化染色 A:假手術(shù)組;B:模型組;C:NSCs組(400×)

圖2 NSCs組較ICH組Caspase-3的灰度值明顯降低

3 討論

腦出血是一種具有高發(fā)病率、高致死率、高致殘率嚴(yán)重影響患者神經(jīng)功能障礙的疾病。多數(shù)患者預(yù)后均遺留不同程度的神經(jīng)功能障礙[4],目前尚無(wú)針對(duì)腦出血后神經(jīng)功能障礙確切有效的治療手段。干細(xì)胞治療腦出血成為治療腦出血的研究方向,但其治療機(jī)制尚不明確。本實(shí)驗(yàn)采用向大鼠紋狀體立體定位注入膠原酶的方法,制作大鼠腦出血模型,模型成功后出現(xiàn)典型的大鼠神經(jīng)功能缺損的癥狀,可持續(xù)1~3 d,隨后有不同程度的功能恢復(fù),假手術(shù)組無(wú)神經(jīng)功能缺損的癥狀。我們將NSCs移植入ICH大鼠腦內(nèi),觀察其治療效果。NSCs組自第14天起,mNSS評(píng)分優(yōu)于模型組,第14、28天評(píng)分顯著優(yōu)于模型組。行為學(xué)表明NSCs移植具有明確的治療作用。

腦出血引發(fā)機(jī)體的三種明顯的病理變化:神經(jīng)細(xì)胞及膠質(zhì)細(xì)胞的凋亡,血管源性腦水腫,以及血腦屏障破壞。但腦出血出現(xiàn)的病理變化的確切機(jī)制目前還未確定,近來(lái)的研究表明Caspase-3可激活特定的信號(hào)系統(tǒng),產(chǎn)生核皺縮、DNA片段形成等凋亡現(xiàn)象,繼而調(diào)控著細(xì)胞凋亡的發(fā)生和發(fā)展[5]。此外,研究報(bào)道,Caspase-3還可以通過(guò)破壞細(xì)胞抗凋亡因素(如bcl-2)破壞細(xì)胞的結(jié)構(gòu),如結(jié)構(gòu)蛋白actin、fodrin、lamin。通過(guò)本實(shí)驗(yàn)可以觀察到NSCs組的Caspase-3表達(dá)較ICH組明顯減少。Caspase-3的激活在腦出血后神經(jīng)細(xì)胞的凋亡過(guò)程中起著極為重要的調(diào)控作用。NSCs是一種神經(jīng)干細(xì)胞[6],具有可以替代凋亡神經(jīng)細(xì)胞的功能,同時(shí)也可以通過(guò)調(diào)控Caspase-3的表達(dá),從而減少組織細(xì)胞的凋亡,繼而促進(jìn)大鼠神經(jīng)功能的恢復(fù)。本實(shí)驗(yàn)以ICH模型大鼠為研究對(duì)象,采用NSCs移植治療。研究表明,NSCs移植能有效改善ICH模型大鼠的神經(jīng)功能障礙,其作用機(jī)制可能與調(diào)控凋亡有關(guān)。

[1] Han N, Ding SJ, Wu T, et al.Correlation of free radical level and apoptosis after intracerebral hemorrhage in rats[J].Neurosci Bull, 2008,24(12):351-358.

[2] Marchetto MC, Winner B, Gage FH.Pluripotent stem cells in neurodegenerative and neurodevelopmental diseases[J].Human Molecular Genetics, 2010,19(1):71-76.

[3] Jeong SW, Chu K, Jung KH, et al.Human neural stem cell transplantation promotes functional recovery in rats with experimental intracerebral hemorrhage[J].Stroke, 2003,34(9):2258-2263.

[4] Steiner T, B?sel J.Options to restrict hematoma expansion after spontaneous intracerebral hemorrhage[J].Stroke, 2010,41(21):402-409.

[5] Uccelli AF, Laroni BA, Giunti D.Neuroprotective features of mesenchymal stem cells[J].Best Pract Res Clin Haematol, 2011,24(1):59-64.

[6] 祁景,劉小軍,周明鍇.神經(jīng)干細(xì)胞移植減輕ICH 模型大鼠神經(jīng)功能障礙[J].中國(guó)實(shí)用神經(jīng)疾病雜志,2015,18(13):49-50.

(收稿 2015-03-21)

R-332

A

1673-5110(2016)07-0076-02

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