可食性植物源抗氧化肽的研究進展

闞旭輝，郭紅英,2，譚興和,2，李清明,2

（1.湖南農業大學食品科學與技術學院，湖南 長沙 410128；2.食品科學與生物技術湖南省重點實驗室，湖南 長沙 410128）

可食性植物源抗氧化肽的研究進展

闞旭輝1，郭紅英1,2，譚興和1,2，李清明1,2

（1.湖南農業大學食品科學與技術學院，湖南 長沙 410128；2.食品科學與生物技術湖南省重點實驗室，湖南 長沙 410128）

抗氧化肽是一種安全可靠的抗氧化劑，可在食品工業中廣泛應用。可食性植物源抗氧化肽因具有較高的開發價值和應用前景，近年成為該研究領域的熱點。綜述了可食性植物源抗氧化肽的制備方法、活性評價方法、問題與展望，以期為更好的開發利用植物源抗氧化肽提供參考。

植物源；抗氧化肽；制備；評價方法

抗氧化肽是一類生物體內源性的或由生物體蛋白質水解后生成的，具有清除自由基、抑制脂質過氧化作用的活性寡肽或多肽。構成肽的氨基酸種類、數量及氨基酸的排列順序決定著肽的抗氧化能力［1］。抗氧化肽不僅在油溶體系中有良好的增效作用，而且在水溶體系、乳化體系及干燥體系中也有較高的抗氧化活性，因而在人類健康、食品加工、醫藥等領域應用前景廣闊［2］。在抗氧化肽的研究領域中，可食性植物源抗氧化肽由于來源廣泛、安全可靠，受到國內外學者的廣泛關注。筆者從可食性植物源抗氧化肽的制備方法、抗氧化活性的評價及應用等方面進行綜述，以期為充分開發利用植物源抗氧化肽提供參考。

1 植物源抗氧化肽的制備

目前，可食性植物源抗氧化肽的獲得途徑主要有3種：第一種是利用分離提取技術從可食性植物中直接提取內源性抗氧化肽；第二種方法是通過蛋白酶酶解、發酵降解或酸解法可食性植物源中的蛋白質制備抗氧化肽；第三種方法是利用現代技術手段如重組DNA技術、酶法、化學法等針對已知的可食性植物源抗氧化肽進行合成。

1.1 直接提取法

直接提取法就是應用一些分離技術和手段，將所需的目標肽從原料中分離出來并對其進行分析和利用。許多可食性植物源中存在天然的抗氧化肽，如大豆、玉米胚、小麥胚、山黧豆、水果、海藻、山藥、紫薯等均檢測到谷胱甘肽（Glutathione，GSH）［3-5］。GSH是植物中最豐富的一種內源性抗氧化肽，對氧化應激和免疫功能均具有調節作用。GSH作為一種抗氧化劑，在強化食品風味的同時亦對人體有較顯著的保健作用，它在食品加工業中的應用前景明顯優于其他防腐劑或抗氧化劑。李麗［3］采用超聲復合酶法從數種紫薯中提取GSH，得到了較好的提取效果；徐麗萍等［4］以玉米胚為原料，采用水提法對玉米胚中還原型谷胱甘肽的提取工藝進行了系統的研究，通過條件優化，可使還原型谷胱甘肽的提取率達到0.145%。

植物中內源性的抗氧化肽含量很低，若將其從植物中分離出來并獲得較高純度的產物，必須要經過多次提純和濃縮，操作復雜且成本較高，對資源的浪費也較嚴重。另外，在分離提取的過程中由于用到大量化學試劑，將對環境造成污染，或導致所提取的抗氧化肽中溶殘超標而帶來毒性等問題，因此該法主要用于實驗室進行一些功能性短肽的活性產生機理和結構鑒定等方面的研究。

1.2 蛋白質降解法1.2.1 蛋白酶酶解法 蛋白酶酶解法的重要工藝參數包括酶的種類、酶解時間、加酶量、溫度、pH值等。目前，用于制備植物源抗氧化肽的生物酶制劑主要有堿性蛋白酶、中性蛋白酶、木瓜蛋白酶、胰蛋白酶、復合蛋白酶系等。蛋白酶酶解法具有條件溫和、降解位點特異、快捷、可控、重復性高等優點，是目前抗氧化肽制備領域的研究熱點，但仍然有很多問題亟需解決，如商業蛋白酶的價格較高、酶解過程中抗氧化鈦的活力下降、酶回收困難等。

（1）堿性蛋白酶酶解法。

堿性蛋白酶主要來源于芽孢桿菌屬中的枯草芽孢桿菌。研究發現，與其他蛋白酶相比，堿性蛋白酶可催化生成更多分子量較小、耐消化性較強、抗氧化活性較高的抗氧化肽。因此，在植物源抗氧化肽的制備中應用十分廣泛。Diao等［5］利用堿性蛋白酶酶解小麥胚芽粕制備抗氧化肽，確定最優試驗條件為：加酶量0.8%（w/w），料水比1∶12.3，酶解時間2.1 h。此條件下得到的DPPH自由基清除率為49.78%，水解液中肽含量1.9%（w/w）。冷帥辰等［6］采用堿性蛋白酶水解長白山松子制備抗氧化肽，結果顯示當松子抗氧化肽濃度為4 mg/mL時對ABTS自由基的清除率和Fe2+螯合率達到100%，16 mg/mL時對DPPH自由基清除率達到80.95%，24 mg/m L時對羥基自由基清除率達到100%。徐亞元等［7］選用堿性蛋白酶制備脫脂米糠抗氧化肽，其優化的最佳試驗條件是：溫度50℃、加酶量1. 8%、底物濃度5%、pH值9. 0、酶解時間276 m in；結果顯示脫脂米糠抗氧化肽對ABTS自由基清除率可達71. 85%。Bamdad等［8］用堿性蛋白酶水解大麥醇溶蛋白，結果顯示水解產物濃度為0.5 mg/mL時，對DPPH自由基清除率為48%～58%。Jin等［9］利用堿性蛋白酶水解玉米蛋白質，得到的玉米抗氧化肽對·OH、DPPH·、ABTS+·均具有較強的清除能力。

（2）中性蛋白酶酶解法

中性蛋白酶是在枯草芽孢桿菌的發酵液中提取得到的一種內切酶，可廣泛用于水解蛋白質。李宏睿等［10］使用中性蛋白酶水解白糯米，得到優化工藝參數為：底物濃度2 %，酶添加量24 000 U/g，酶解溫度55 ℃，pH值為8，作用時間0.5 h；在該條件下羥自由基清除率平均值可達56.05 %。Xu 等［11］發現大豆粕可被中性蛋白酶有效水解生成抗氧化肽，且具有抗氧化活性的大豆肽大多有7個氨基酸。李琴等［12］系統研究了中性蛋白酶酶解綠豆制備抗氧化肽的工藝，得到了活性較強的抗氧化肽，其抗氧化能力低于VC高于BHT抗氧化劑。

（3）木瓜蛋白酶酶解法

木瓜蛋白酶又稱木瓜酶，是一類琉基蛋白酶，具有特異性低、酶活高、熱穩定性好等特點。徐艷等［13］利用木瓜蛋白酶水解猴頭菌液體發酵菌絲蛋白，確定制備猴頭菌抗氧化肽的最佳工藝條件為：加酶量80 U/m L，酶解時間1 h，溫度50 ℃，pH值為6.0，在此條件下猴頭菌絲多肽的還原力最強，多肽含量最高。Rao等［14］通過木瓜蛋白酶水解煙葉蛋白，發現相對分子質量為5 kDa的蛋白質水解物抗氧化活性最強，并認為其抗氧化活性與His、Met、Cys和Try的含量有關。Wang等［15］用木瓜蛋白酶水解麥麩蛋白，獲得的水解產物具有較強的DPPH清除能力，在pH值為7時其抗氧化性幾乎與VE相同，并確定86.5%活性肽分子量分布集中在4.2 kDa。

（4）胰蛋白酶酶解法

胰蛋白酶主要來源于豬、牛、羊等動物胰臟，可選擇性水解蛋白質中由賴氨酸或精氨酸的羧基所構成的肽鏈。王蓓等［16］以馬鈴薯渣為原料，從若干種酶中篩選出胰蛋白酶為最優水解酶，并確定最佳水解條件為：底物質量濃度40 g/L，加酶量7%，pH值為8.0，溫度50℃，酶解時間90 min；該條件下馬鈴薯抗氧化肽對DPPH自由基的清除率為72.0%。Agrawal等［17］利用胰蛋白酶水解珍珠粟蛋白，通過凝膠過濾色譜分離出的珍珠粟抗氧化肽對DPPH自由基清除率為67.66%，對ABTS自由基清除率為78.81%，Fe2+的螯合率為51.20%，并確定抗氧化肽序列為SDRDLLGPNNQYLPK。

（5）復合蛋白酶系酶解法

蛋白酶是根據特定的作用位點對蛋白質進行水解，因此單酶對蛋白質的水解作用范圍較小，采用雙酶或兩種以上的蛋白酶復合水解往往會取得更好效果。張秋萍等［18］利用中性蛋白酶和胰蛋白酶分步酶解豌豆蛋白，得到了活性較高的豌豆抗氧化肽，當濃度為0.2 mg/m L時，對DPPH自由基的清除率達到62.03%。劉紅梅等［19］將堿性蛋白酶和中性蛋白酶以2∶l的比例混合水解花生粕，在最優水解條件下花生肽收率為65.80%；當花生抗氧化肽質量濃度為0.55 mg/m L時，對DPPH自由基清除率為25.77%，分別比堿性蛋白酶和中性蛋白酶單酶水解提高了7.66%和22.53%。張麗霞等［20］用1∶1的堿性蛋白酶和胰蛋白酶降解麥胚，其產物對DPPH自由基的清除率達到50.16%，明顯高于單酶酶解的效果。

1.2.2 發酵法 生物酶制劑法制備抗氧化肽雖然安全性高，但其水解過程通常伴隨著一些苦味肽的產生，帶來一些不好的感官體驗。發酵是用于生產及保存食品的一種傳統方法，不僅可以增加食品的營養保健價值，還會在一定程度上延長食品的保質期。由于發酵過程中微生物產生的端肽酶對小肽末端具有修飾作用，因此可避免苦澀味的產生并賦予食品天然的發酵香味，可廣泛用于食品行業。秦衛東等［21］系統研究了黑曲霉發酵豆粕的工藝，并從發酵液中提取到了活性較高的抗氧化肽。王殿友［22］利用好食脈孢菌對脫脂葵花籽粕固態發酵制備抗氧化肽，確定最佳培養基為：脫脂葵花籽粕2 g，麩皮2.5 g，料水比1∶2.5，pH值為7.5，MgSO4添加量0. 02 g；最佳發酵條件為： 接種量1.0×106個/g，發酵時間5 d，溫度30℃。在此條件下，發酵產物蛋白質溶出率為27.2%，抗氧化活性為186.37 U/mL。Ren等［23］利用黑曲霉發酵大豆得到腐乳，測得發酵產物對自由基清除能力達到50%。胡夢園等［24］利用枯草芽孢桿菌對大豆進行發酵，當接種量為4.0%、發酵溫度為32℃、發酵時間為96 h時，豆粕抗氧化肽的轉化率達到40.1%。

1.3 合成法

該方法可用于合成特定的蛋白質或多肽，主要包括化學合成、基因重組技術、酶促肽合成等。化學合成法中，由Merrifield創立并發展的固相合成多肽法（SPPS）奠定了多肽合成的基礎。Murray等［25］采用微波輔助固相合成多肽，成功制備了酰基轉運蛋白ACP；石偉等［26］采用固相合成法，成功制得生物活性肽SSDI。化學合成法適于合成中等長度肽鏈的肽，但合成率低、成本高、試劑毒性大；基因重組技術常用于合成肽鏈較長的肽，但技術尚不成熟，且表達產物的分離純化相對困難；目前僅有酶促肽合成應用較為廣泛。

2 抗氧化肽的活性評價

抗氧化肽的活性評價方法主要有3類：一是化學模型體系，即通過測定其對自由基的清除、對過渡金屬離子的鰲和能力、還原力等反映抗氧化活性；二是生物亞細胞或動物組織勻漿體系，即引入ROS誘發體系模擬體內的氧應激損傷，通過測定一些重要的氧化、非氧化指標反映抗氧化肽的功能活性；三是動物實驗法［2］。其中，體外的化學模型體系評價法由于操作簡便、高效低毒、便于重復、實驗周期短，損耗小等特點，經常作為體內實驗的前期研究被廣泛使用，在此將重點闡述體外化學實驗體系。可根據清除自由基反應機制的不同將化學模型體系分為兩類：一類是基于氫原子遷移（HAT）制定的方法，另一類是基于電子遷移（SET）制定的方法［27］。

2.1 基于氫原子轉移法（HAT）

HAT適用于競爭性反應，可以反映抗氧化肽提供氫原子給自由基以猝滅自由基的能力大小。HAT具有反應速度快的特點，但前提需要排除其他還原性物質的干擾。氧自由基吸收能力（ORAC）測定和總自由基清除能力（TRAP）測定是HAT的兩種主要方法，反應原理如式（1）所示［17］：

AH+X·→A·+XH （ 1）

ORAC法最初由Gheiselli和Glazer創建，是一種用以反映抗氧化劑抑制過氧化自由基以及通過提供氫原子阻斷氧化反應能力的方法。該方法常以熒光素（FL）作為熒光探針，通過測定熒光強度衰減曲線下的面積變化，計算出目標樣品的ORAC值。ORAC的優勢在于高度自動化，可以測試樣品對不同自由基的清除能力，檢測結果較為準確，局限性是試驗對溫度和熒光標記物較為敏感。

TRAP常用來測定非酶抗氧化物質的抗氧化活性，其工作原理是通過2，2′-偶氮（2-脒基丙烷）鹽酸（ABAP）產生過氧化物自由基，通過與抗氧化劑反應來評價樣品的抗氧化能力，Trolox 當量（TEAC）常用來表示抗氧化劑的活性大小［1］。

2.2 基于電子遷移法（SET）

SET主要包括以下測定方法：二苯代苦味肼自由基清除能力（DPPH·）法、還原力法、總抗氧化能力（TEAC）法，其工作原理是通過測定抗氧化劑提供給金屬離子、醛酮類化合物、自由基等單電子能力的大小來反映其還原能力。原理如式（2）所示［27］。

X·+AH→X-+AH+· （ 2）

2.2.1 DPPH·的清除能力 DPPH·常用來研究抗氧化肽的構效關系，其原理是：DPPH·的醇溶液呈紫色，且在517 nm處具有強吸收性。當體系中加入抗氧化劑后，其顏色會變淺，吸光值會下降。DPPH·的清除率通常與抗氧化劑濃度成正比，因此也可用IC50，即當DPPH·的清除率達到50%時抗氧化劑的濃度值來評定其抗氧化活性［23］。孫立等［28］將紅花籽抗氧化肽溶液與DPPH·無水乙醇溶液混合，劇烈振蕩后在室溫下放置30 min測定吸光度，發現當紅花籽抗氧化肽質量濃度為3 mg/mL 時，對DPPH·的清除率為57.86%。該方法快速方便，應用廣泛，但反應機制較為復雜，不適于評定空間結構較大的抗氧化劑活性。

2.2.2 還原力法 還原力法反映了抗氧化劑提供氫原子或電子的能力大小，是評價抗氧化活性的重要指標。亞鐵還原法（FRAP）和鐵氰化鉀還原法是測定還原力的主要方法。徐艷［13］等采用還原力法測定了猴頭菌絲多肽的抗氧化活性，發現在最優試驗條件下，肽的還原力可達1.035。

2.2.3 總抗氧化能力（TEAC）法 TEAC法的工作原理：2，2'-聯氨-雙-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸（簡稱ABTS）與活性氧作用生成穩定的陽離子自由基ABTS+·，其水溶液呈藍綠色。當體系中加入抗氧化劑后，由于陽離子自由基被捕獲，體系褪色，在一定波長下混合體系的吸光值下降，且下降程度與抗氧化劑的抗氧化能力成正比。Janet等［29］采用TEAC法和還原力法研究了大豆多肽和扁豆多肽的體外抗氧化活性，發現兩者均具有較高的ABTS+·自由基清除能力和還原力。

2.3 清除羥基自由基（·OH）的能力

對人體損傷較大的自由基主要有超氧陰離子（·O2-）、過氧化氫（H2O2）、羥基自由基（·OH）、單線態氧（1O2）、過氧硝酸鹽等。其中，羥基自由基（·OH）是體內最活潑的活性氧，細胞缺乏相應的防御酶系，對生物體危害極大；此外，與DPPH和ABTS+·自由基相比，·OH具有更強的生物相關性。因此，羥基自由基的活性評定對自由基的研究具有重要意義。目前，主要測定方法有水楊酸法、脫氧核糖法和鄰二氮菲法［30-31］。

2.4 金屬離子螯合能力

過渡金屬是許多自由基產生過程的催化劑。一般來說，生物活性物質的抗氧化能力與金屬離子的螯合作用成正相關，因此可通過分光光度計測定吸光值來間接評定物質的抗氧化活性，目前主要有螯合銅離子法和螯合亞鐵離子法。張東杰［32］發現大豆蛋白酶解物及其主要分離組分均具有一定的銅離子螯合能力，其中由16種氨基酸組成的大豆肽SP4效果最好。

2.5 抗脂質過氧化能力

硫代巴比妥酸（TBAS）法、亞油酸自氧化法（FTC，又稱硫氰酸鐵法）是檢測抗脂質過氧化能力的常用方法。其中，TBAS法的實驗原理是：TBAS和脂質過氧化反應的最終產物丙二醛（MDA）發生反應，生成的粉紅色物質在波長532～535 nm 處有最大吸收峰［33］。因此，抗氧化肽抑制脂質過氧化能力主要體現在其抑制MDA產生的能力上。Zhang等［34］研究發現，酶解水稻胚乳蛋白得到的抗氧化肽不僅可以有效抑制脂質的自氧化，同時還含有明顯的DPPH、超氧化物及羥自由基清除能力。

3 小結與展望

抗氧化肽是近年的研究熱點，可食性植物源抗氧化肽因其優越的抗氧化活性和較高的安全性，在人類健康、食品加工、醫藥等領域具有廣闊的應用前景。目前，盡管國內外學者對于抗氧化肽已經做了很多的研究，越來越多的抗氧化肽序列片段從可食性植物源中分離鑒定出來，但仍然有很多問題亟需解決，一是抗氧化肽的分離制備技術的高成本、低效率等局限性在一定程度上阻礙了抗氧化肽的工業化、商品化進程，因而探索新型高效并能規模化從植物源蛋白中制備抗氧化肽的方法迫在眉睫；二是利用體外活性評價方法篩選出的抗氧化肽其在消化系統的穩定性仍有待提高；三是抗氧化肽的作用機制仍需進一步挖掘和探明。

［1］ Sarmadi B H，Ismail A. Antioxidative peptides from food proteins：A review［J］. Peptides，2010，31（10）：1949-1956.

［2］ 郭紅英. 麥胚蛋白酶解物的制備及其抗氧化功能研究［D］. 鎮江：江蘇大學，2009.

［3］ 李 麗. 甘薯中還原型谷胱甘肽的提取及熒光檢測［J］. 中國食品添加劑，2015，（7）：162-166.

［4］ 徐麗萍，楊春華，王 鑫. 響應曲面法優化玉米胚中谷胱甘肽提取工藝條件［J］. 中國糧油學報，25（5）：15-18.

［5］ Diao D P，Huang J H，Feng J W，et al. The technology research of anti-oxidation peptide preparation by alkaline protease hydrolyzing Wheat germ meal［J］. Agricultural Science & Technology，2014，15（2）：182-186.

［6］ 冷帥辰，閔偉紅，吳 丹，等. 長白山松子抗氧化肽制備及活性研究［J］.食品研究與開發，2014，35（13）：9-12.

［7］ 徐亞元，周裔彬，萬 苗，等. 脫脂米糠抗氧化肽的制備工藝研究［J］.中國油脂，2014，39（2）：28-32.

［8］ Bamdad F，Wu J P，Chen L Y. Effects of enzymatic hydrolysis on molecular structure and antioxidant activity of barley hordein［J］. Journal of Cereal Science，2011，（54）：20-28.

［9］ Jin D X，Liu X L，Zheng X Q，et al. Preparation of antioxidative corn protein hydrolysates，purification and evaluation of three novel corn antioxidant peptides［J］. Food Chemistry，2016，204：427-436.

［10］ 李宏睿，麥錦莘，徐明生，等. 糯米酶解工藝以及抗氧化活性研究［J］.食品研究與開發，2011，32（7）：15-18.

［11］ Xu L. A study on anti-oxidative activity of soybean peptides with linoleic acid peroxidation systems［J］. Chem Res Chinese，2006，22（2）：205-208.

［12］ 李 琴，張海生，許 珊，等. 綠豆抗氧化活性肽的制備及其抗氧化活性研究［J］. 江西農業大學學報，2013，35（5）：1063-1069.

［13］ 徐 艷，丁 靜，孫桂紅，等. 猴頭菌絲多肽的制備及抗氧化活性研究［J］. 中國釀造，2014，33（6）：91-95.

［14］ Rao G H，Zhao M N，Lin W F，et al.Antioxidant activity of tobacco imaf protein hydrolysates［J］. Food Technol Bioteehnol，2007，45（1）：80-84.

［15］ Wang J，Zhao M，Zhao Q，et al. Antioxidant properties of papain hydrolysates of wheat gluten in different oxidation systems［J］. Food Chemistry，2007，101（4）：1658-1663.

［16］ 王 蓓，馬海樂，喬 瑋. 馬鈴薯渣蛋白抗氧化肽的酶法制備［J］.農業機械學報，2010，41：198-202.

［17］ Agrawal H，Joshi R，Gupta M. Isolation，purification and characterization of antioxidative peptide of pearl millet（Pennisetum glaucum） protein hydrolysate［J］. Food Chemistry，2016，204：365-372.

［18］ 張秋萍，田亞平. 雙酶法酶解豌豆蛋白制備高抗氧化多肽的研究［J］.天然產物研究與開發，2013，25（4）：519-524.

［19］ 劉紅梅，師廣波，李向東，等. 復合酶法水解花生粕制備抗氧化肽的工藝優化［J］. 食品科學技術學報，2014，32（3）：59-64.

［20］ 張麗霞，顧振新，周劍忠，等. 雙酶水解麥胚制備抗氧化肽的工藝優化［J］. 江蘇農業學報，2010，26（3）：601-606.

［21］ 秦衛東，陳學紅，馬利華，等. 黑曲霉發酵豆粕制備抗氧化肽研究［J］.食品科學，2010，31（23）：289-293.

［22］ 王殿友，任 健. 好食脈孢菌固態發酵脫脂葵花籽粕制備抗氧化活性肽的研究［J］. 中國油脂，2014，39（10）：39-43.

［23］ Ren H F，Liu H，Hideaki E，et al. Anti-mutagenic and anti-oxidative［24］ 胡夢圓，邢 力. 發酵豆粕生產抗氧化肽的研究［J］. 吉林農業，2013，10：17-18.

activities found in Chinese traditional soybean fermented products furu［J］. Food Chemistry，2006，95（1）：71-76.

［25］ Murray J K，Aral J，Miranda L P. Solid-phase peptide synthesis using microwave irradiation［J］. Methods Mol Biol，2011，716：73-88.

［26］ 石 偉，王 琦，張俊君，等. 生物活性肽SSD固相合成工藝的研究［J］. 現代生物醫學進展，2008，8（3）：462-464.

［27］ GnlciniI. Antioxidant activity of food constituents：an overview［J］. Archives of Toxicology，2012，86（3）：345-391.

［28］ 孫 立，毛曉英，陳計巒，等. 紅花籽抗氧化肽的分離純化及抗氧化活性研究［J］. 農產品加工（學刊），2014，（2）：5-7.

［29］ Janet C C，Alan J H，Cristian J M，et a1. Antioxidant and meta1 chelating activities of peptide fractions from phaseolin and bean protein hydrolysates［J］. Food Chemistry，2012，135（3）：1789-1795.

［30］ Smirnoff N，Cumbes Q J. Hydroxylradical scavenging activity of compatible solutes［J］. Phytochemistry，1989，28（4）：1057-1060.

［31］ Hallwell B，Gutteridge J M C，Aruoma O I. The deoxyribose method：a simple “test-tube” assay for determination of rate constants for reactions of hydroxyl radicals［J］. Anal Biochem，1987，165：215-219.

［32］ 張東杰，馬中蘇. 凝膠過濾色譜分離大豆抗氧化肽活性的研究［J］.中國釀造，2010，（6）：41-44.

［33］ Antoiovich M，Prenzler P D，Patsalides，et al. Methods for testing antioxidant activity［J］. Analyst，2002，l27（1）：183-198.

［34］ Zhang J H，Zhang H，Wang L，et al. Isolation and identification of antioxidant peptide from rice endosperm protein enzymatic hydrolysate by consecutive chromatography and MALDI -TOF/TOF MS /MS［J］. Food Chemistry，2010，119（1）：226-234.

（責任編輯：成 平）

Research Progress on An tioxidant Peptides from Edible Plants Source

KAN Xu-hui1，GUO Hong-ying1，2，TAN Xing-he1，2，LI Qing-m ing1，2
（1. College of Food Science and Technology， Hunan Agricultural University， Changsha 410128， PRC；2. Hunan Provincial Key Laboratory of Food Science and Biotechnology， Changsha 410128， PRC）

The antioxidant peptide is a kind of safe and reliable antioxidant， which can be w idely used in food industry. Antioxidant peptides from edible plants source have high development value and application prospect， which has become a hot spot in the research f eld in recent years. In this paper， the preparation methods， activity evaluation methods， problems and prospects of edible p lant antioxidant peptides were reviewed in order to provide reference for better development and utilization of antioxidant peptides from edible p lants source.

plant source； antioxidant peptide； preparation； evaluation method

TS214.2

A

1006-060X（2016）09-0111-04

10.16498/j.cnki.hnnykx.2016.09.030

2016-07-20

湖南農業大學科學基金項目（11YJ17）

闞旭輝（1995-），男，安徽明光市人，本科生，食品科學與工程專業。

郭紅英