鵝細小病毒感染的診斷與防治

政書濤

中圖分類號：S858.33 文獻標識碼：C 文章編號：1673-1085（2015）06-0031-02

鵝細小病毒感染（Goose parvovirus infection）又稱小鵝瘟、鵝腸炎、鵝傳染性心肌炎，是雛鵝和番鴨的一種急性、亞急性或慢性的高度接觸傳染性疾病，以滲出性腸炎為主要病理特征。

1956年中國的江蘇省揚州地區首次發生類似疾病，隨后此病在江蘇、廣西、廣東、浙江、安徽、山東等省區發生和流行，遍及全國各養鵝地區。匈牙利的Derzsy于1966年分離到病毒，Schettler于1971年證實該病是由細小病毒引起。1978年將該病稱鵝細小病毒感染。

1 病原學

該病毒為細小病毒科的一個獨立的細小病毒，近期的分子生物學研究表明，鵝細小病毒與人的依賴病毒屬關系更密切，與雞或哺乳動物的細小病毒無抗原相關性。鵝細小病毒屬于細小病毒科細小病毒屬成員，其生物學特性類似番鴨細小病毒，在電鏡下呈晶格排列，完整的病毒粒子直徑為20～24nm， 圓形或六角形，衣殼由32個殼粒組成，無囊膜， 20面體對稱的單股線性DNA病毒，大小為5～6kb。與一些哺乳動物的細小病毒不同，迄今尚未發現本病毒有凝集紅細胞的性能。研究表明，該病毒能凝集黃牛的精子。鵝細小病毒不與本屬其它病毒呈交叉血清學反應，而且國內外所有GPV 分離株僅有一個血清型。鵝細小病毒對理化因素的滅活作用有很強的抵抗力，對乙醚、氯仿、胰酶的處理有抵抗力，對紫外線敏感，65℃加熱處理30min滴度不受影響。病毒在pH3.0溶液中，37℃條件下作用1h仍穩定。鵝細小病毒初代分離，只能應用鵝胚和番鴨胚或者利用原代胚細胞培養物進行分離，分離的病毒可以在鵝胚成纖維細胞系上培養。該病毒是自主性細小病毒，無需輔助病毒便可自行復制，復制過程在細胞核內完成，并形成大型包涵體。

2 流行病學

自然病例僅見鵝、番鴨和一些雜交品種，對其它禽類和哺乳動物無侵染性。該病毒主要侵害3～20日齡的雛鵝，不同日齡、不同地區、不同免疫情況鵝群發病率與死亡率均不一致，雛鵝的易感性隨著年齡的增長而減弱。本病有嚴格的年齡相關性，1周齡以內的雛鵝死亡率可達100%，而4～5周齡感染造成的損失很小，1月齡以上很少發病。但近年來有發病日齡推遲的報道，雖然較大的鵝感染后不表現臨床癥狀，但有免疫學反應。本病的傳染源主要是病雛鵝及帶毒鵝，主要通過消化道傳染，感染鵝糞便可排出大量的病毒，與病鵝直接接觸或間接接觸病鵝排泄物污染的飼料、飲水、用具是該病傳播的主要途徑。易感雛鵝最嚴重的暴發是由垂直感染引起的。成年鵝呈亞臨床或潛伏感染，這些鵝作為病毒攜帶者，通過卵將病毒傳給孵坊中的易感雛鵝。該病毒尚未證實有生物傳播媒介。易感雛鵝的潛伏期與年齡有關，1日齡雛鵝實驗感染后3～5d表現臨床癥狀，2～3周齡鵝感染的潛伏期為5～10d。

3 臨床癥狀和病理變化

臨床表現隨感染鵝的日齡不同而不同。1周齡以內雛鵝發病快，2～5d內出現厭食、衰竭和死亡。日齡較大或有一定母源抗體的雛鵝病程則較長，且表現出特征性的臨床癥狀。根據病程可分為最急性、急性、亞急性三種類型。最急性：3～5日齡發病者常為此型，常在1d內，甚至不出現任何前驅癥狀，突然死亡，死亡雛鵝喙端、爪尖發紺，易感雛發病率可達100%，病死率高達95%以上，病程只有0.5～1d；急性型：5～15日齡所發生的大多數病例常為急性型。病鵝全身委頓，食欲減少或廢絕。飲水增加，出現嚴重下痢，排出灰白色或黃綠色混有氣泡或假膜的稀糞。鼻腔有分泌物流出，時時搖頭，呼吸用力，喙端變暗。行走困難，常離群獨處，嗜睡拒食。臨死前出現兩腿麻痹或抽搐等神經癥狀，病程1～2d；亞急性或者慢性：常見于15日齡以上的雛鵝，病鵝精神委頓，消瘦，行動遲緩，站立不穩。排稀糞并雜有大量氣泡和未消化的飼料及纖維素碎片，肛門周圍絨毛污穢嚴重。少食或拒食，鼻孔周圍沾污大量分泌物和飼料碎片，病程為3～7d。少數幸存者在一段時間內生長不良。

最急性病例可見整個腸道急性卡他性炎癥，小腸粘膜尤其前段粘膜腫脹充血，粘膜覆蓋有大量濃厚淡黃色粘液，其它器官病變不明顯；急性型表現全身敗血癥變化，全身脫水，皮下顯著充血，心尖周圍有特征性心肌蒼白，肝臟、脾臟和胰腺腫大、充血；亞急性或慢性病例出現典型的漿液-纖維素性肝周炎、心包炎，腹腔有大量淡黃色積液，還可伴發肺水腫、肝萎縮或卡他性腸炎。

組織學病變主要是心肌細胞嚴重變性、條紋消失和脂肪浸潤，并有Cowdrey A型核內包涵體。肝細胞變性，伴有空泡化和脂肪浸潤。胰腺腺泡細胞皺縮壞死，并有脂肪浸潤。

對于鵝細小病毒的感染機理沒有詳細的研究。水平傳播，主要的是攝入被病毒污染的飼料和飲水。病毒首先在腸壁復制，然后進入血液，最后到達肝臟、心臟。

4 診斷

根據流行病學、臨床癥狀及典型的病理變化進行分析，即可作出初步診斷。確診須依賴于病原分離鑒定、血清學檢測。可利用鵝胚或番鴨胚從多種病料組織中分離病毒。免疫熒光、瓊擴試驗、免疫電鏡、ELISA等方法檢測病毒抗原或抗體。針對病毒VP1保守區建立的PCR技術亦可用于病料組織中的鵝細小病毒核酸檢測。布日額等首次應用GPV的VP3基因重組原核表達產物建立檢測GPV抗體的間接ELISA及Dot-ELISA方法。周春宇等制備了兔抗GPV多克隆抗體， 以人工感染GPV的四川白鵝無母源抗體雛鵝為材料， 建立了檢測鵝細小病毒的間接免疫酶組織化學法。鄒叔和等報道了ABC-ELISA 法具有較高的特異性和敏感性， 可用于小鵝瘟病毒的定性和定量分析。余兵等利用地高辛標記核酸探針，建立了檢測病料中GPV核酸的斑點雜交法。付薇等采用SYBR GreenⅠ熒光染料建立了小鵝瘟病毒熒光定量PCR檢測方法。

注意與鴨病毒性腸炎、鵝出血性腎炎、腸炎、鴨疫里默氏桿菌病相區別。

5 預防與治療

在沒有發病的地區和鵝場，必須嚴密防止病原體的傳入。盡量自繁自養，不要購進疫區禽場的種蛋和鵝苗，購買時應了解母鵝是否接種過小鵝瘟疫苗。新購入的鵝苗必須隔離觀察，證實無病后才可以混群，或者購買時注射小鵝瘟抗血清。購入的種蛋應熏蒸消毒，孵出的雛鵝也應集中飼養，不可立即分散。

種鵝開產前可以用弱毒疫苗免疫接種1～2次，半年后再免疫一次。使用滅活疫苗亦可產生高水平的免疫力，在適當的時候進行種鵝母源抗體檢測，發現母源抗體水平參差不齊的時候，及時采取措施。在雛鵝飼料或飲水中，加適量葡萄糖、維生素B、維生素C，可增強雛鵝的抗病力。病死的雛鵝應焚燒深埋，對病毒污染的場地進行徹底消毒。

疫情發生之后，應立即采取隔離消毒的綜合措施，立即停止入孵，進行全面的清潔和消毒，已入孵的種蛋出殼后逐只接種小鵝瘟血清。鵝舍應徹底清掃、消毒。發病的小鵝群應盡早注射鵝血清或蛋黃抗體，并配合使用抗菌藥物防止繼發感染。已感染過該病的雛鵝不宜留作種用。endprint