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超高效液相色譜法測定黃顙魚肌肉中葉黃素含量

2016-02-07 13:59:56王艷戴琴莊曉洪
水產學雜志 2016年6期
關鍵詞:檢測

王艷,戴琴,莊曉洪

(1.成都市農業質量監測中心,成都 610045;2.成都市食品藥品檢驗研究院,成都 610045)

超高效液相色譜法測定黃顙魚肌肉中葉黃素含量

王艷1,戴琴2,莊曉洪2

(1.成都市農業質量監測中心,成都 610045;2.成都市食品藥品檢驗研究院,成都 610045)

本文建立檢測黃顙魚Pelteobagrus fulvidraco肌肉中葉黃素含量的反相超高效液相色譜分析方法。樣品經95%乙醇提取,ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(2.1mm×100mm,1.7μm)分離,以89%甲醇-1%乙腈-10%水為流動相等度洗脫,二極管陣列檢測器檢測,檢測波長446nm,外標法定量。結果顯示:葉黃素在0.04~0.8μg· mL-1范圍內線性良好,此方法檢出時限0.03mg·kg-1。添加量在0.5mg·kg-1、1.0mg·kg-1、5.0mg·kg-1時,葉黃素的回收率為82.0%~84.2%,相對標準偏差在10%范圍內。結果表明:該方法可用于黃顙魚中葉黃素成分的定性和定量檢測。

葉黃素;黃顙魚;超高效液相色譜法

葉黃素是一種無維生素A活性的含氧類胡蘿卜素,廣泛存在于蔬菜、花卉、水果及某些藻類中。葉黃素具有抗氧化、抗衰老、抗癌等多種重要的生理活性[1],同時具有色澤鮮艷、無毒害、安全性高、著色能力強等特點[2],已廣泛應用于食品、飼料、水產養殖等行業。葉黃素可賦予魚類的肌肉、皮膚以卵黃色、橙色和紅色,在水產養殖中已較多地使用了葉黃素類著色劑,改善養殖魚類體色,提高其商品價值[3-5]。黃顙魚Pelteobagrus fulvidraco又名黃辣丁,廣泛分布于我國各大江河水系,屬肉嫩味美、營養豐富的優質淡水經濟魚類,備受消費者青睞。

目前,檢測葉黃素含量的方法有分光光度法[6-8]、薄層色譜法[9]、高效液相色譜法[10-12]、質譜法[13]等,多見于測定食品、飼料、植物體、奶粉、保健品及血清中葉黃素的含量,極少用于水產動物肌肉中葉黃素含量的測定。分光光度法測試的葉黃素含量是以總類胡蘿卜素計,適合測試含量高的葉黃素浸膏和葉黃素粉末等原料中的葉黃素含量。正相液相色譜法以正相硅膠柱分離,非極性流動相體系洗脫,提取溶劑毒性大,操作較繁瑣。質譜法雖選擇性強、檢測靈敏度高,但設備昂貴,檢測成本高。

本研究采用95%乙醇高效快速提取黃顙魚肌肉和皮中的葉黃素,利用超高效液相色譜檢測快速的特點,建立了黃顙魚肌肉和皮中葉黃素檢測的反相超高效液相色譜新方法,此法能夠滿足實際檢測需求。

1 材料與方法

1.1 材料

儀器:ACQUITY TM超高效液相色譜儀,附二極管陣列檢測器(美國Waters公司);T25數顯高速組織勻漿機(德國IKA公司);超純水凈化儀(美國Millipore公司)。

試劑:葉黃素標準品(20mg,純度≥95.0%,Sigma公司);乙腈、甲醇和丙酮(HPLC級,德國Merk公司);95%乙醇(分析純)。

1.2 方法

1.2.1 標準品及溶液制備

準確稱取葉黃素標準品5.0mg,置于50mL棕色容量瓶中,少量丙酮溶解后用甲醇定容至刻度,-20℃冰箱中避光保存。臨用前,用甲醇逐級稀釋成0.04μg·mL-1、0.08μg·mL-1、0.2μg·mL-1、0.4μg·mL-1、0.8μg·mL-1質量濃度的標準系列溶液。

1.2.2 超高效液相色譜條件

色譜柱:ACQUITY UPLC BEH C18(2.1mm× 100mm,1.7μm,Waters公司);流動相:89%甲醇-1%乙腈-10%水;流速:0.5mL·min-1;進樣量:4.0μL;檢測波長:446nm;柱溫30℃。

1.2.3 樣品處理

黃顙魚去頭、骨、內臟后取肌肉與皮組織絞碎、混勻作為試樣。稱取試樣4.00g于50mL聚丙烯離心管中,加入 10 mL 95%乙醇,避光勻漿1min,4500r·min-1離心3min,上清液轉移至25mL棕色容量瓶中。另取1個50mL離心管,加入10mL 95%乙醇,洗滌均質器刀頭,用玻璃棒搗碎離心管中的沉淀,加入上述洗滌均質器刀頭溶液。渦旋混合器上避光振蕩5min,4500r·min-1離心3min,上清液合并至同一容量瓶中,用95%乙醇定容至25mL。取清液過0.22μm的有機濾膜即可上機。

2 結果與分析

2.1 提取溶劑的選擇

根據葉黃素不溶于水,易溶于油脂和脂肪性溶劑的特性,分別選取95%乙醇、丙酮-95%乙醇(50∶50,v/v)作為提取溶劑,對同一樣品進行含量及回收實驗,其中95%乙醇作為提取溶劑時,測定樣品含量為1.64mg·kg-1,回收率為82.8%;丙酮-95%乙醇(50∶50,v/v)作為提取溶劑時,測定樣品含量為1.73mg·kg-1,回收率為85.2%。測定結果表明:兩種提取劑對同一樣品的提取及回收率無明顯差異。因此,選用對人體健康危害和環境污染更小的95%乙醇作為提取黃顙魚中葉黃素的溶劑。

2.2 色譜柱的選擇

分別選用三種規格色譜柱進行考察:Waters ACQUITY UPLC BEH C18(2.1mm×100mm,1.7μm)、Kromasil 100-5 C18(4.6mm×250mm,5μm)和Agilent ZORBAX C8(4.6mm×250mm,5μm)。實驗發現Waters ACQUITY UPLC BEH C18柱的分析時間短、峰型效果好,具有更好的靈敏度,可與雜質峰有效分離。因此本文采用Waters ACQUITY UPLC BEH C18作為分離柱。

2.3 線性關系

配制質量濃度 0.04μg·mL-1、0.08μg·mL-1、0.2μg·mL-1、0.4μg·mL-1、0.8μg·mL-1的標準系列溶液,測定色譜峰面積,以質量濃度為橫坐標(x),峰面積為縱坐標(y),得線性回歸方程y=1968839x-760,r=0.9996,表明在0.04~0.8μg·mL-1范圍內,葉黃素濃度與峰面積線性關系良好。根據信噪比S/N=3,得出檢出限為0.03mg·kg-1。葉黃素標準曲線見圖1,色譜圖見圖2。

圖1 葉黃素標準曲線Fig.1 Standard curve of lutein

圖2 色譜圖(0.52mg·kg-1)Fig.2 Chromatogram(0.52mg·kg-1)

2.4 加標回收率試驗

稱取已知葉黃素含量的黃顙魚試樣、按照0.5mg·kg-1、1.0mg·kg-1、5.0mg·kg-1添加水平進行加標回收試驗,同一添加水平重復測定6次,回收率在82.0%~84.2%范圍內,各添加水平回收率的相對標準偏差RSD<10%,滿足檢測要求,結果見表1。

表1 回收率Tab.1 Recoveries of the samples(n=6)

2.5 方法精密度

按照本文所述色譜條件,對試樣溶液重復進樣6次,其峰面積RSD為0.8%,表明該方法精密度良好。

2.6 樣品測定

利用本文建立的方法分析了實驗提供的22批次黃顙魚樣本,各批次樣本中黃顙魚體質量均在50~100g之間,根據魚體色澤的差異,將樣本分為灰色與黃色兩組,結果各批次黃顙魚均有葉黃素成分檢出,測定結果見表2,樣品色譜圖見圖2。

表2表明,各批次黃顙魚中葉黃素含量水平不等,體色偏黃的黃顙魚葉黃素含量水平明顯高于體色偏灰色的樣本。絕大多數水產動物自身不能合成葉黃素,其所需的葉黃素必須來源于食物或飼料,采食后吸收的色素轉移到動物組織中,或轉化為動物體色素表現出不同的色澤。由于葉黃素是一種廣泛存在于蔬菜、花卉、水果及某些藻類生物中的天然物質,這就是為何所有的黃顙魚均檢出葉黃素的原因。但黃顙魚養殖過程中,因養殖模式、環境不同,對天然餌料生物和人工飼料的依賴程度不同,也會使黃顙魚體色和皮膚、肌肉組織葉黃素含量出現差異。

表2 樣品測定結果Tab.2 Concentration of lutein in the muscle of Pelteobagrus fulvidraco

3 討論

近年來隨著水產動物的集約化養殖和人工配合飼料的使用,導致水產動物的色澤變淡,嚴重影響了水產品的質量和商品價值,于是人們開始有意識在飼料中添加著色劑來改變這種狀況。農業部《飼料添加劑品種目錄(2008)》(農業部公告第1126號)規定:水產動物飼料著色劑僅允許添加蝦青素,《飼料添加劑品種目錄(2013)》(農業部公告第2045號)新增加天然葉黃素(源自萬壽菊)可作為飼料添加劑中的著色劑用于水產養殖動物。盡管農業部不斷更新《飼料添加劑品種目錄》,但對各類色素的使用劑量未予明確限定,也沒有水產動物檢測的國家或地方標準,這無疑導致一些著色劑的使用存在較大的安全隱患。本文建立的黃顙魚中葉黃素含量測定的高效液相色譜法前處理簡單,色譜條件易于實現,測試數據重復性好,精密度和準確度均能滿足理化分析要求,適用于黃顙魚中葉黃素含量的日常檢測,同時也為相關水產動物中葉黃素檢測提供了參考。

[1]王琦,許洪高,高彥祥.葉黃素分析方法研究進展[J].中國食品添加劑,2007(6):100-104.

[2]任紅,楊洋,史德芳.葉黃素在功能性食品中的應用進展[J].食品研究與開發,2006(4):144-146.

[3]韓秀萍,張緒元.葉黃素著色研究進展[J].安徽農業科技,2009,37(6):2343-2344.

[4]李輝,黃衛,朱站英.天然葉黃素的著色作用及其在水產動物中的應用[J].飼料廣角,2014(11):39-41.

[5]陳斌,吳天星.類胡蘿卜素改善水產動物體色研究進展[J].中國飼料,2004(15):32-33.

[6]梁敏慧,崔亞娟,何梅,等.葉黃素分析檢測方法研究進展[J].食品工業科技,2015(8):90-94.

[7]AOAC.Official methods ofanalysis[Z].1990:1048-1049.

[8]FAO/WHO press compendium of food additive specifications[C]Food&Agriculture Org,1990,52(9):105-106.

[9]張志強,唐道城,張乃湛,等.薄層掃描法測定萬壽菊中葉黃素的含量[J].化學世界,2009,50(9):536-539.

[10]黃旸木,閆少芳,馬樂,等.高效液相色譜法測定血清葉黃素和玉米黃素[J].北京大學學報:醫學版,2012,44(3):481-484.

[11]高迎春,尹伶靈,陳玲,等.高效液相色譜法測定乳制品中的葉黃素[J].中國乳品工業,2012,40(4):48-50.

[12]黨亞敏,李建平,張明月,等.高效液相色譜法測定保健食品中的葉黃素[J].中國衛生檢驗雜志,2011,21(7): 1650-1651.

[13]程紅艷,陳軍輝,趙恒強,等.反相高效液相色譜-電噴霧質譜法測定滸苔中的葉黃素[J].食品科學,2010,31(18):206-211.

Determination of Lutein in Muscle of Pelteobagrus fulvidraco by Ultra Performance Liquid Chromatography

WANG Yan1,DAI Qin2,ZHUANG Xiao-hong2
(1.Agriculture Quality Supervision and Test Center of Chengdu City,Chengdu 610045,China; 2.Chengdu Institute for Food and Drug Control,Chengdu 610045,China)

A reversed-phase ultra-performance liquid chromatography method was established for the determination of lutein in muscle of Pelteobagrus fulvidraco.The sample was extracted by 95%alcohol.Chromatographic separation was performed at the conditions of ACQUITY UPLC BEH C18column(2.1 mm×100 mm,1.7 μm)and 89%methcol-1%acetonitrile-10%water as the mobile phase with isocratic elution.It was detected on a photodiode array detector at the wavelength of 446 nm and quantified by external standard method.The results showed that the method had a good linear correlation within the range from 0.04 μg·mL-1to 0.8 μg·mL-1,and the detection limit was 0.03 mg·kg-1.The average recoveries of lutein varied from 82.0%to 84.2%spiked at 0.5 mg·kg-1、1.0 mg·kg-1、5.0 mg·kg-1with relative standard deviations less than 10%.This developed method is expeditious and reliable,especially feasible for quantitative and qualitative analysis of lutein in Pelteobagrus fulvidraco.

lutein;Pelteobagrus fulvidraco;ultra-performance liquid chromatography method

S965.199

A

1005-3832(2016)06-0052-04

2016-07-15

王艷(1978-),女,高級農藝師.E-mail:46274001@qq.com

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