黃曲霉毒素和赭曲霉毒素的毒性作用及其診斷、檢測和控制

李新一（摘譯）

（全國畜牧總站中國飼料工業協會，北京朝陽100125）

?

黃曲霉毒素和赭曲霉毒素的毒性作用及其診斷、檢測和控制

李新一（摘譯）

（全國畜牧總站中國飼料工業協會，北京朝陽100125）

霉菌毒素是真菌的次級代謝產物，其種類較多，其中最主要的是黃曲霉毒素和赭曲霉毒素。赭曲霉毒素主要損傷腎組織故被稱為腎毒素，而黃曲霉毒素則對肝臟毒害作用最大。本文主要介紹了黃曲霉毒素和赭曲霉毒素的毒性作用及其診斷、檢測和控制。

霉菌毒素中毒；黃曲霉毒素；赭曲霉毒素；檢測

1　霉菌毒素的毒性作用

霉菌毒素以多種形式存在，但其中最主要的是黃曲霉毒素和赭曲霉毒素（Perrone等，2007）。飼料中存在一種以上的真菌污染物時，污染物間的協同效應會增加毒素毒性（Huff等，1983）。

1.1黃曲霉毒素及其毒性作用黃曲霉毒素由黃曲霉菌屬真菌產生（Gugnani，2000）。多種產毒素真菌可以產生黃曲霉毒素，但主要是黃曲霉和寄生曲霉，當其遇到適宜的環境，就能在飼料中產生黃曲霉毒素（Dutta和Das，2001）。

黃曲霉毒素對家禽有不良影響，會導致免疫功能下降甚至死亡。飼喂被黃曲霉毒素污染的飼料后，肉雞出現厭食、精神萎靡、飼料轉化率低、體重下降、生長速度下降等現象，并能造成免疫抑制，對微生物和環境的刺激更加敏感。

黃曲霉毒素引起肝臟腫大、黃肝、膽管體積增大（Ortatali和Oguz，2001），還能損傷腎臟和脾臟組織（Bilgic和Yesildere，1992）。相關試驗證實黃曲霉毒素能嚴重擾亂免疫系統，如對巨噬細胞功能的分析試驗和綿羊紅血球細胞的抗體反應試驗（Khan，2010）。飼喂被黃曲霉毒素污染的飼料的禽類更易患病（Oguz等，2003）。

黃曲霉毒素會引起脂肪的改變，肝實質內出現小空泡（空泡變性），肝門管區肝管增生，還能影響產生淋巴細胞的法氏囊。據報道，黃曲霉毒素可以導致腎臟的腎小管變性（Ortatali等，2005）。Kumar和Balachandran（2009）描述了感染黃曲霉毒素B1后的臨床和組織病理學癥狀。宏觀上，可以觀察到肝臟腫大，肝臟上有黃點或者微泛黃的點，膽囊腫大，腎臟腫大，變白色，有零星的淤血點。通過顯微鏡可以觀察到空泡變性，脂肪改變，肝細胞退化。隨著疾病的發展，脂肪沉積轉換為脂肪囊腫，不同的淋巴細胞如異嗜細胞和單核細胞出現浸潤現象，肝管出現充血和畸形增生。

1.2赭曲霉毒素及其毒性作用赭曲霉毒素可由7種曲霉屬真菌和6種青霉菌產生，在這13種真菌中，赭曲霉是主要的產赭曲霉毒素菌種。赭曲霉毒素有多種，通常指赭曲霉毒素A、B、C，但是其中最主要的是赭曲霉毒素A。赭曲霉毒素A（OTA）在谷物、動物飼料、肉和人體組織中均有分布。

赭曲霉毒素對腎臟的毒害作用大于肝臟，對肉雞的腎臟有潛在的嚴重毒害作用。赭曲霉毒素A具有致畸、致突變和免疫毒害作用（O'Brien和Dietrich，2005），可以導致生長速度減緩（Verma等，2004）、采食量減少（Elaroussi等，2006）、體增重差（Kumar等，2003）。雞群精神萎靡，出現稀松的水樣糞便（Hassan，2010）。OTA可引起機體嚴重的免疫抑制（Politis等，2005），這可以通過綿羊血紅細胞的抗體反應和碳廓清試驗驗證（Hassan，2010），同時導致雞群死亡率增加（Elaurossi等，2006）。OTA可以與血液中白蛋白成分結合，在膽汁和腎臟中進行毒素循環，因此OTA可以長期殘留在體內（Marquardt和Frohlich，1992）。

臨床上，OTA引起腎臟堵塞和腫大，肝臟增生，淋巴器官如脾臟和法氏囊萎縮（Kumar等，2004），但是對心臟沒有損害（Kumar等，2004）。赭曲霉毒素A會導致肝實質中的單核細胞浸潤，外層的肝臟增厚（Elaroussi等，2008）。肝門管區出現堵塞和間隙內出現堵塞和膨大。若是連續接觸赭曲霉毒素，在中毒后期會出現肝索個別肝細胞壞死，空泡變性（Kumar等，2004）。OTA引起肝管通道變性的同時也會導致其上皮組織細胞的增殖。據報道，單個細胞變性和DNA加合物生成（高達30個單獨的加合物）是由于氧化應激作用導致的（Solcan等，2008）。在腎臟，OTA引起腎小管上皮細胞壞死，腎小球滲透以及腎小球體積擴張（Abidin，2010）。在黏液囊中，OTA會引起淋巴結萎縮和骨髓淋巴細胞團的減少，皮質和髓質的淋巴結也出現空泡變性（Kumar等，2004）。在胸腺中，OTA導致胸腺實質中淋巴細胞團的減少以及胸腺局部出現密斑（Kumar等，2004）。

2　霉菌毒素中毒診斷及檢測

一般來說，可以通過觀察特定器官的臨床病變確診霉菌毒素中毒癥。如果出現肝臟腫大，變脆且變性區蒼白通常就可以確認為霉菌毒素中毒。此外腎臟腫大，表面凸出和充血也可以認為是霉菌毒素中毒的癥狀。為了測定霉菌毒素水平，屠宰試驗中需要保存所有的胴體進行尸體剖檢以及收集飼料樣品。

測定霉菌毒素可以采用生物檢測方法和化學檢測方法。如測定已知霉菌毒素的水平，最適合采用化學測定法，因為更加快速，可重復性好，檢測限低。常用的兩種測定法是：（1）色譜分析方法，包括開放式、柱狀、薄層、高性能液體和氣體液相色譜法；（2）免疫化學方法，包括放射免疫分析法（RIA）和酶聯免疫吸附試驗。

2.1赭曲霉素Biro等（2002）闡述了使用高效液相色譜法（HPLC）和酶聯免疫吸附法（ELISA）測定組織中赭曲霉毒素A水平的方法。Frye和Chu（1977）利用放射性技術檢測發現產蛋雞飼喂真菌毒素污染的飼料后其蛋中含有OTA殘留。Prior等（1980）在公雞和母雞體組織檢測到OTA殘留。隨后Sizoo和Egmond（2005）提出采用高效液相色譜檢測組織和蛋中提取的OTA的分析方法。

2.2黃曲霉毒素Fermandez等（1994）將薄層液相色譜技術應用于肉雞組織黃曲霉毒素B1（AFB1）的檢測。Hussain（2010）采用高效液相色譜法測定口服AFB1后的雞組織中AFB1含量。Khan（2010）也使用了同樣的方法測定黃曲霉毒素。Omurtag等（2002）、Micco等（1988）使用高效液相色譜法測定黃曲霉毒素的檢測水平比薄層色譜法測定高出1 μg/kg。

3　霉菌毒素中毒的預防

3.1霉菌毒素的去除如飼料中霉菌毒素含量水平高，應優先選擇對其中的毒素進行解毒或去除，但是這種方法很難去除飼料中受污染的部分。有人建議通過氨化作用凈化谷物，但目前還沒有方法來解除飼料中的霉菌毒素。相關報道分別介紹了化學、生物、物理法去除飼料中霉菌毒素的方法（Lopez-Garcia和Park，1998）。已有研究從細菌的純菌株提取并鑒定了去環氧化酶（Binder等，2000）。

3.2霉菌毒素結合劑的使用毒素結合劑可以通過結合毒素防止毒素的不良作用，阻止消化道吸收毒素。毒素結合劑的預防作用遠大于治療效果。

許多結合劑都是有效的，如活性炭、不能消化的復雜碳水化合物（如纖維素、甘露聚糖、肽聚糖）、高分子合成聚合物（如聚乙烯吡咯烷酮、消膽胺），以及鋁硅酸鹽（如膨潤土、粘土、沸石、蒙脫石和硅酸鹽）（Avantaggiato等，2005）。

活性炭因為表面積大而有很好的吸附力，對存在于消化系統中的各種毒素都有一定的吸附作用。有關活性炭的試驗研究發現其可以減輕黃曲霉毒素對山羊的危害（Hatch等，1982）。活性炭也可以降低牛奶中黃曲霉毒素的殘留（Galvano等，1996）。活性炭發揮作用的前提是需要較高的質量（Diaz等，2004）。硅酸鹽也是一種較好的霉菌毒素結合劑（Phillips等，1991）。硅酸鹽粘結劑的作用機理是粘土材料中的自由金屬離子螯合黃曲霉毒素的β-羧基基團（Phillips等，1991）。Santin等（2002）研究證明，水合鈉鈣硅酸鋁鹽可以結合毒素以抵消赭曲霉毒素對肉雞的危害。使用細胞壁酵母作為在肉雞飼料中的霉菌毒素吸附劑，可以消除OTA的影響（Santin等，2003）。鈉基膨潤土可以結合肉雞飼料中的黃曲霉毒素，減輕由于黃曲霉毒素中毒產生的癥狀（Kermanshahi等，2009）。

3.3水飛薊素、L-肉堿和維生素的使用水飛薊素、L-肉堿和維生素等產品可以抵抗霉菌毒素危害并且增強雞群的免疫系統。

水飛薊素具有多種功效，包括促進DNA和RNA的合成以及肝組織的修復（Fraschini等，2002）。據報道，水飛薊素可以刺激免疫狀態（Wilasrusmee等，2002），并能抑制由OTA誘導的從被分離的枯否細胞和散在肝臟細胞中腫瘤壞死因子（TNF）-α的釋放（Al-Anati等，2009）。水飛薊素還可以抵消肉雞因AFB1引發的毒副作用（Tedesco等，2004）。

L-肉堿（LC）是一種季銨（微溶于水）化合物，是蛋氨酸和賴氨酸的天然合成物。LC可以在脂質分解過程中產生能量，用來將脂肪酸從細胞質運送到線粒體。LC具有抗氧化特性，可以防止脂肪過氧化（Kopple等，2002）。LC也可以結合AFB1，因此可以限制霉菌毒素與組織蛋白質和DNA的相互作用（Yatim和Sachan，2001）。霉菌毒素的不良作用之一是氧化應激，可以通過在飼料中添加LC降低氧化危害（Citil等，2005）。LC對雞群肝臟紊亂疾病有著有益的影響（Yapar等，2007），對其免疫應答和淋巴器官也有長期持續的影響（Deng等，2006）。LC可以緩解白來航肉仔雞因赭曲霉毒素導致的毒理變化，同時可以增強免疫應答能力（Bhatti，2010），也可能具有改善肉雞代謝紊亂的功能（Buyse等，2001）。

維生素E是一種很好的抗氧化劑，主要用于防止脂類氧化。雞群霉菌毒素中毒后出現免疫抑制，維生素E可以增強雞群的免疫能力。它可以提高雞群的整體生產性能（Hossain等，1998），消除OTA的細胞毒性作用，同時防止毒素-DNA加成物的形成。

4　霉菌毒素中毒的控制措施

霉菌毒素中毒控制措施應在飼料收獲前、收獲中、收獲后三個階段加以實施。生產鏈中可以應用危害分析和關鍵環節控制點系統控制霉菌毒素風險（Bricknell等，2006）。Chulze（2010）從食物鏈的角度闡述了霉菌毒素控制方法。收獲前階段，在作物中使用抗真菌肽來抑制飼料中的黃曲霉毒素污染是最有前景的方法（Rajasekaran等，2009）。

一般有物理法、化學法、生物學法三種主要的方式控制霉菌毒素（Huwig等，2001）。物理方法包括去除谷物中受污染部分和使用紫外線或γ輻射，還包括使用霉菌毒素結合劑（Huwig等，2001）。

化學法包括用臭氧、酸性物質和堿性物質、氨以及抗氧化劑處理飼料。臭氧、氨和有機酸都可以起到有效對抗黃曲霉毒素和赭曲霉毒素的作用（Marin等，2000）。抗氧化劑如丁基羥基茴香醚（BHA）、二丁基羥基甲苯（BHT）、聚丙烯（PP）及其混合物不利于黃曲霉毒素和赭曲霉毒素的產生（Torres等，2003）。

生物方法包括利用微生物（益生菌）抑制飼料中的霉菌毒素。這些益生菌與霉菌毒素可形成復雜的螯合物，防止機體吸收霉菌毒素（Santillan等，2006）。益生菌如乳酸桿菌（Rawal等，2010）和諾卡氏菌（Tejada-Castaneda等，2008）可以減輕黃曲霉毒素和其他毒素對肉雞的損害。

5　結論

黃曲霉毒素和赭曲霉毒素是肉雞養殖主要問題的誘因，嚴重影響家禽業的經濟效益。為了減少這些毒素的不利影響，應采取控制策略，并且采取多種技術聯用方式實現飼料中毒素含量的連續監測。霉菌毒素在動物組織或動物產品中的殘留是霉菌毒素進入人體的主要方式，必須監測霉菌毒素的殘留量，消除污染的飼料，從而避免家禽攝入霉菌毒素。

［1］Al-Anati L，Essid E，Reinehr R，et al.Silibinin protects OTA-mediated TNF-alpha release from perfused rat livers and isolated rat Kupffer cells［J］. Molecular Nutrition and Food Research，2009，53：460～466.

［2］Avantaggiato G，Solfrizzo M，Visconti A.Recent advances on the use of adsorbent materials for detoxification of Fusarium mycotoxins［J］.Food Addi-tives and Contaminants，2005，22：379～388.

［3］Bhatti S A.Ameliorative effects of carnitine and vitamin E upon ochratoxin induced immunotoxicological effects in white leg horn cockerels：［M.Phil Thesis］［D］.Pakistan：Department of Pathology，University of Agriculture Faisalabad，2010.

［4］Bilgic H N，Yesildere T.Renal lesions on experimental aflatoxicosis in chickens［J］.I.U.Veteriner Fakultesi Dergisi，1992，18：102～108.

［5］Binder E M，Heidler D，Schatzmayr G，et al.Microbial detoxification of mycotoxins in animal feed.Mycotoxins and Phycotoxins in Perspective at the Turn of the Millennium.［C］.Proceedings of the 10th International IUPAC Symposium on Mycotoxins and Phycotoxins，Guaruja，Brazil，2000.

［6］Biro K，Slti L，Vetro I B，et al.Tissue distribution of ochratoxin A as determined by HPLC and ELISA and histopathological effects in chickens［J］.Avian Pathology，2002，31：141～148.

［7］Bricknell L K，N G J C，Blaney B J.Introducing haccp-based risk management for mycotoxin contamination in Australian maize 6th Terminal Conference 2006［C］.Maize Association of Australia，2006.

［8］Buyse J，Jansens G P，Decuypere E.The effects of dietary L-carnitine supplementation on the performance，organ weights and circulating hormone and metabolite concentrations of broiler chickens reared under a normal or low temperature schedule［J］.British Poultry Science，2001，42：230～241.

［9］Chulze S N.Strategies to reduce mycotoxin levels in maize during storage：a review［J］.Food Additives and Contaminants，2010，27：651～657.

［10］Citil M，Gunes V，Atakisi O，et al.Protective effect of L-carnitine against oxidative damage caused by experimental chronic aflatoxicosis in quail（Coturnix coturnix）［J］.Acta Veterinaria Hungarica，2005，53：319～324.

［11］Deng K，Wong C W，Nolan J V.Long-term effects of early-life dietary L-carnitine on lymphoid organs and immune responses in Leghorn-type chickens［J］.Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition，2006，90：81～86.

［12］Diaz D E，Hagler J R，Blackwelder W M，et al.Aflatoxin binders II：Reduction of aflatoxin M1 in milk by sequestering agents of cows consuming aflatoxin in feed［J］.Mycopathologia，2004，157：233～241.

［13］Dutta T K，Das P I.Isolation of aflatoxigenic strains of Aspergillus and detection of aflatoxin B1 from feeds in India［J］.Mycopathologia，2001，151：29～33.

［14］Elaroussi M A，Mohamed F R，Elbarkouky E M，et al.Experimental ochratoxicosis in broiler chickens［J］.Avian Pathology，2006，35：263～269.

［15］M A，Mohamed P R，Elgendy M S，et al.Ochratoxicosis in broiler chickens：Functional and histological changes in target organs［J］.International Journal of Poultry Science，2008，5：414～422.

［16］Fernandez A，Verde M，Gascon M，et al.Variations of clinical，biochemical parameters of laying hens and broiler chickens fed aflatoxin containing feed［J］. Avian Pathology，1994，23：37～47.

［17］Fraschini F，Demartini G，Esposti D.Pharmacology of Silymarin.［J］.Clinical Drug Investigation，2002，22：51～65.

［18］Frye C E，Chu F S.Distribution of Ochratoxin A in chicken tissues and eggs［J］.Journal of Food Safety，1977，1：147～159.

［19］Galvano F，Pietri A，Bertuzzi T，et al.Reduction of carryover of aflatoxin from cow feed to milk by addition of activated carbons［J］.Journal of Food Protection，1996，59：551～554.

［20］Gugnani H C.Ecology and taxonomy of pathogenic aspergilli［J］.Frontiers in Bioscience，2000，8：346～57.

［21］Hassan Z.Pathological responses of progeny of hens kept on ochratoxin A contaminated feed：［Ph.D Thesis］［D］.Pakistan：Department of Pathology，University of Agriculture Faisalabad，2010.

［22］Hatch R C，Clark J D，Jain A V，et al.Induced acute aflatoxicosis in goats. Treatment with activated charcoal or dual combinations of oxytetracycline，stanozolol，and activated charcoal［J］.American Journal of Veterinary Research，1982，43：644～648.

［23］Hossain S M，Barreto S L，Bertechini A G，et al.Influence of dietary Vitamin E level on egg production of broiler breeders，and on the growth and immune response of progeny in comparison with the progeny from eggs injected with Vitamin E［J］.Animal Feed Science and Technology，1998，73：307～317.

［24］Huff W E，Doerr J A，Wabek C J，et al.Individual and combined effects of aflatoxin and ochratoxin on bruising in broiler chickens［J］.Poultry Science，1983，62：1764～1771.

［25］Hussain Z，Khan M Z，Khan，A，et al.Residues of aflatoxin B1 in broiler meat：Effect of age and dietary aflatoxin B1 levels［J］.Food and Chemical Toxicology，2010，48：3304～3307.

［26］Huwig A，Freimund S，Kappeli O，et al.Mycotoxin detoxication of animal feed by different adsorbents［J］.Toxicology Letters，2001，122：179～188.

［27］Kermanshahi H，Hazegh A R，Afzali N.Effect of sodium bentonite in broiler chickens fed diets contaminated with aflatoxin B1［J］.Journal of Animal and Veterinary Advances，2009，8：1631～1636.

［28］Khan W A.Pathological studies of aflatoxicosis on layer breeders and its subsequent effects on progeny：［PhD Thesis］［D］.Pakistan：Department of Pathology，University of Agriculture Faisalabad，2010.

［29］Kopple J D，Ding H，Letoha A，et al.L-carnitine ameliorates Gentamicin-induced renal injury in rats［J］.Nephrology Dialysis Transplantation，2002，17：2122～2131.

［30］Kumar A，Jindal N，Shukla C L，et al.Effect of ochratoxin A on Escherichia coli challenged broiler chicks［J］.Avian Diseases，2003，47：415～424

［31］Kumar A，Jindal N，Shukla C L，et al.Pathological changes in broiler chickens fed ochratoxin A and inoculated with Escherichia coli［J］.Avian Pathology，2004，33：413～417.

［32］Kumar R，Balachandran C.Histopathological changes in broiler chickens fed aflatoxin and cyclopiazonic acid［J］.Veterinarski Arhiv，2009，79：31～40.

［33］Lopez-Garcia R，Park D L.Effectiveness of postharvest procedures in management of mycotoxin hazards.In：Sinha K K，Bhatnagar D（Eds）.Mycotoxins in Agriculture and Food Safety.New York：Marcel Dekker，Inc.，1998：407～433.

［34］Marin S，Magan N，Abellana M，et al.Selective effect of propionates on maize mycoflora and impact on fumonisin B1 accumulation［J］.Journal of Stored Products Research，2000，36：203～214.

［35］Marquardt R R，Frohlich A A.A review of recent advances in understanding ochratoxicosis［J］.Journal of Animal Science，1992，70：3968～3988.

［36］Micco C，Miraglia M，Onori R，et al.Long-term administration of low doses of mycotoxins in poultry.1［J］.Residues of ochratoxin A in broilers and laying hens.Poultry Science，1988，66：47～50.

［37］O'Brien E，Dietrich D R.Ochratoxin A：the continuing enigma［J］.Critical Reviews in Toxicology，2005，35：33～60.

［38］Oguz H，Hadimli H H，Kurtoglu V，et al.Evaluation of humoral immunity of broilers during chronic aflatoxin（50 and 100 ppb）and clinoptilolite exposure［J］.Revue de Medicine Veterinaire，2003，154：483～486.

［39］Omurtag G Z，Atak G，Keskin G，et al.HPLC assay for aflatoxins in dried red peppers and feedstuffs in turkey［J］.Acta Pharmaceutics Turcica，2002，44：11～22.

［40］Ortatali M，Oguz H，Hatipoglu E，et al.Evaluation of pathological changes in broilers during chronic aflatoxin（50 and 100ppb）and clinoptilolite exposure［J］.Research in Veterinary Science，2005，78：61-68.

［41］Ortatatli M，Oguz H.Ameliorative effects of dietary clinoptilolite on pathological changes in broiler chickens during aflatoxicosis［J］.Research in Veterinary Science，2001，71：59～66.

［42］Perrone Errone G，Susca A，Gozzi G，et al.Biodiversity of Aspergillus species in some important agricultural products［J］.Studies in Mycology，2007，59：53～66.

［43］Phillips T D，Sarr B A，Clement B A，et al.Prevention of aflatoxicosis in farm animals via selective chemisorption of aflatoxin.In：Bray G A，Ryan D H（Eds）.Mycotoxins，Cancer and Health.Baton Rouge：Louisiana State University Press，1991：223～237.

［44］Politis I，Fegeros K，Nitsch S，et al.Use of Trichosporon mycotoxinivorans to suppress the effects of ochratoxicosis on the immune system of broiler chicks［J］.British Poultry Science，2005，46：58～65.

［45］Prior M G，O'Neil J B，Sisodia C S.Effects of ochratoxin A on growth response and residues in broilers［J］.Poultry Science，1980，59：1254～1257.

［46］Rajasekaran K，Delucca A J，Cary J W.Aflatoxin control through transgenic approaches［J］.Toxin Reviews，2009，28：89～101.

［47］Rawal S，Kim J E，Coulombe J R R.Aflatoxin B1 in poultry：Toxicology，metabolismandprevention［J］.ResearchinVeterinaryScience，2010，89：325～331.

［48］Santillan E M，Bujaidar E M，Marquez R M，et al.Antigenotoxic effect of Saccharomyces cerevisiae on the damage produced in mice fed with aflatoxin B1 contaminated corn［J］.Food and Chemical Toxicology，2006，44：2058～2063.

［49］Santin E，Maiorka A，Krabbe E L，et al.Effect of hydrated sodium calcium aluminosilicate on the prevention of the toxic effects of ochratoxin［J］.Journal of Applied Poultry Research，2002，11：22～28.

［50］Santin E，Paulillo A C，Nakagui L S O，et al.Evaluation of cell wall yeast as adsorbent of ochratoxin in broiler diets［J］.International Journal of Poultry Science，2003，6：465～468.

［51］Sizoo，E A，Egmond H P V.Analysis of duplicate 24-hour diet samples for aflatoxin B1，aflatoxin M1 and Ochratoxin A［J］.Food Additives and Contaminants，2005，22：163～172.

［52］Solcan C，Coman I，Solcan G H.Histological lesions of the liver in chicken's ochratoxicosis［J］.Lucrari Stiinlifice Medicina Veterinara，2008，8：898～903.

［53］Tedesco D，Steidler S，Galletti S，et al.Efficacy of silymarin-phospholipid complex in reducing the toxicity of Aflatoxin B1 in broiler chicks［J］.Poultry Science，2004，83：1839～1843.

［54］Tejada Castaneda Z I，Avila Gonzalez E，et al.Biodetoxification of aflatoxin-contaminated chick feed［J］.Poultry Science，2008，87：1569～1576.

［55］Torres A M，Ramirez M L，Arroyo M，et al.Potential use of antioxidants for control of growth and fumonisin production by Fusarium verticillioides and Fusarium proliferatum on whole maize grain［J］.International Journal of Food Microbiology，2003，83：319～324.

［56］VermaJ Johri T S，Swain B K，Ameena S.Effect of graded levels of aflatoxin，ochratoxin and their combination on the performance and immune response of broilers［J］.British Poultry Science，2004，45：512～518.

［57］Wilasrusmee C，Kittur S，Shah G，et al.Immunostimulatory effect of Silybum Marianum（milk thistle）extract［J］.Medical Science Monitor，2002，8：439～443.

［58］Yapar K，Kart A，Karapehlivan M，et al.Hepatoprotective effect of L-carnitine against acute acetaminophen toxicity in mice［J］.Experimental and Toxicologic Pathology，2007，59：121～128.

［59］Yatim A M，Sachan D S.Carnitine alters binding of aflatoxin to DNA and proteins in rat hepatocytes and cell free systems［J］.Journal of Nutrition，2001，131：1903～1908.

（譯自《World’s Poultry Science Journal》2011年，67卷485～496頁）

Mycotoxins are secondary metabolites produced by fungi.There are many types of mycotoxins，the most important are aflatoxins and ochratoxins.Ochratoxin is known as a nephrotoxin as it damages kidney tissues predominantly，whereas aflatoxin has more adverse effects upon liver.This article reviewed toxicity of aflatoxin and ochratoxin and their diagnosis，determination，control.

mycotoxicosis toxicity；aflatoxin；ochratoxin；determination

S816.7

A

1004-3314（2016）07-0019-05

10.15906/j.cnki.cn11-2975/s.20160705