可調控性uPA誘導表達系統的構建及功能鑒定

研究報告

可調控性uPA誘導表達系統的構建及功能鑒定

陳麗香1，周曉靜3，劉文文4， 周文江1，任曉楠1，于士顏1， 周曉輝1,2

(1.上海市公共衛生臨床中心，上海201508；2.復旦大學醫學分子病毒學教育部衛生部重點實驗室，上海200032；

3.蚌埠醫學院第一附屬醫院，安徽 蚌埠233004；4.赤峰學院附屬醫院，內蒙古 赤峰024000)

【摘要】目的構建可調控性尿激酶型纖溶酶原激活物(urokinase-type plasminogen activator，uPA)誘導表達系統并進行相關鑒定，可為進一步構建可誘導型肝臟人源化uPA-SCID動物模型奠定基礎。方法可調控性uPA誘導表達系統即在強力霉素(doxycycline，Dox)誘導下通過tet-on系統調控uPA表達。為此，需要構建兩個重組質粒，分別為pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA和pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen，前者引入Gaussia熒光素酶(gaussia enzyme fluorescent element，Gluc)與四環素反式激活因子(reverse tetracycline transactivator，rtTA)偶聯表達，以便于監測rtTA表達水平；后者同時偶聯表達ZsGreen，以便于用熒光顯微鏡觀察基因表達。重組逆轉錄病毒載體進行表達功能鑒定后，將構建質粒與病毒包裝衣殼蛋白VSV-G質粒共轉染GP2-293包裝細胞系后獲得具有感染能力的病毒顆粒，利用該病毒感染NIH/3T3細胞，并用G418篩選出陽性細胞；期間各取部分細胞，使用PCR方法鑒定其基因組內是否含有相應基因轉錄調控本。結果成功構建pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA和pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen克隆。功能鑒定顯示，pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA克隆可表達rtTA；pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen克隆轉染HepG-Tet-on細胞，加Dox可誘導uPA表達。包裝病毒感染NIH/3T3細胞后通過G418篩選獲得單細胞克隆，通過PCR方法鑒定表明其基因組內含有相應轉錄本,從而成功構建uPA誘導表達穩定細胞株。結論本研究初步建立了可調控性uPA誘導表達系統，從而為可誘導肝損的uPA-SCID轉基因小鼠的構建及在此基礎上的肝臟人源化動物模型的建立奠定了基礎。

【關鍵詞】可調控肝臟損傷；Alb；uPA；肝臟人源化小鼠

[基金項目]國家重點基礎研究發展計劃(2012CB519005)；上海市科技發展基金實驗動物研究項目(12140900300)；上海市衛生和計劃生育委員會科研課題(20144Y0073)；上海市公共衛生臨床中心中心科研課題面上項目(2014M08)。

[作者簡介]陳麗香(1988-)，女，技術員，本科，研究方向：細胞生物學，E-mail: xiaripaomo@126.com。

[通訊作者]周曉輝(1973-)，男，副研究員，博士，研究方向：病毒免疫學，E-mail: zhouxiaohui@shaphc.org。

【中圖分類號】Q95-33R332【文獻標識碼】 A

doi:10.3969.j.issn.1671.7856. 2015.001.001

The establishment of the uPA inducible expression system

CHEN Li-xiang1，ZHOU Xiao-jing3，LIU Wen-wen4，ZHOU Wen-jiang1，REN Xiao-nan1，YU Shi-yan1，ZHOU Xiao-hui1，2

(1.Shanghai Public Health Clinical Center, Fudan University, Shanghai 201508,China;

2.Key Laboratory of Medical Molecular Virology, Ministry of Education and Health, Shanghai Medical College,

Fudan University, Shanghai 200032,China;3.The first affiliated hospital of bengbu medical college,

Anhui Bengbu 233004,China;

4.Affiliated hospital of Chifeng University, Neimenggu Chifeng 024000,China)

Abstract【】ObjectiveTo establish uPA inducible expression system using recombinant retroviral system for the further construction of inducible uPA-SCID animal model. Methods The Inducible expression system need to construct two plasmids:pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A -rtTA and pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen respectively. Both plasmids were based on retroviral vector pLNHX, Albumin promoter gene (Alb) and rtTA gene or uPA gene and ZsGreen were obtained by PCR reaction and inserted into pLNHX. The Gaussia enzyme fluorescent element (GLUC) was used to monitor rtTA expression in pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA,and the ZsGreen for uPA expression monitoring in pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen.The correct constructed plasmids were transfected into packaging cell line GP2-293 to gain recombinant viral particles.NIH/3T3 cells were infected with these viral particles and selected with G418.Gene expression in the surviving cells was confirmed by the PCR method. ResultsThe recombinant retroviral vectors harbouring target genes were successfully cloned．The rtTA gene in pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA was expressed, and uPA can be induced to express in pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen by doxycycline (Dox) when the plasmid transfected into the HepG-Tet-on cell. The constructed recombinant two retroviral vectors were transfected into GP2-293 packaging cells respectively to gain infectious viral particles.Then,NIH/3T3 cells were infected with these viral particles and single-cell clones which stably expressed the transgenes were successfully established. Conclusion This study primarily established uPA inducible expression system, it laid a foundation for the murine model of inducible liver damage, and provided a novel technical platform for further building the liver humanised murine models for viral hepatitis studying.

【Key words】Controlled inducible liver damage；Alb；uPA；Liver-humanized mouse

尿激酶型纖溶酶原激活物uPA可以激活肝細胞內的纖溶蛋白酶原，導致肝細胞的損傷和壞死[1]，目前被認為可能是建立理想肝臟損傷小鼠模型最合適的毒力基因。uPA參與多種生理病理過程，在肝臟再生過程中，它通過激活纖溶酶原可以清除壞死細胞碎片，破壞細胞外基質以促進肝臟結構的重構，從而有利于移植肝細胞的成活與增殖[2]。

肝臟損傷動物模型的建立是研究肝細胞移植和再生的關鍵性技術平臺。外源異種肝細胞移植要在受體動物體內嵌合、再生成功，首要條件是受體本身肝臟有損傷，外源植入的肝細胞才有機會克服生存競爭而“殖民”成功；同時為防止免疫排斥往往需要受體動物有免疫缺陷。肝損小鼠模型是肝臟人源化小鼠模型建立的基礎。uPA/SCID是目前應用較多的一個肝損/移植模型，在病毒性肝炎等人類肝臟重大疾病研究中發揮著重要作用。應用uPA/SCID模型，外源人肝細胞的嵌合重建率最高能達到99%。

但現有uPA/SCID小鼠模型也存在很多問題和缺陷。例如uPA雜合子對肝臟的損傷已很嚴重，純合子新生鼠肝臟的損傷更嚴重,，造成很高的死亡率[3]，使uPA小鼠繁育和保種比較困難。此外，小鼠某些肝細胞可能通過重組機制清除uPA轉基因，并快速增殖，直到8～12周恢復整個肝臟，對移植入的肝細胞增殖能力造成很大的限制。因此，移植手術一般要在出生后最初兩周內完成，以提高移植人肝細胞的嵌合成功率，但這也給模型建立增加了操作的難度[4-5]。

本研究通過建立基于tet-on的可調控肝臟損傷的uPA誘導表達系統，為進一步構建可誘導肝損的uPA-SCID動物模型奠定了基礎。實現uPA毒性基因的可控表達，可克服現有uPA/SCID小鼠模型的缺陷，從而可能為肝炎病毒感染的免疫致病機制、藥物及疫苗篩選評價研究等提供一個更加有力的研究平臺。

1材料和方法

1.1質粒、菌株及試劑

質粒、菌株和細胞株：pUC19載體、逆轉錄病毒載體pLNHX購自美國Clontech公司；pTRE2hyg，pLVX-IRES-ZsGreen質粒實驗室保存；大腸桿菌DH5α實驗室保存；包裝細胞GP2-293細胞系，NTH3T3購自中國科學院；人宮頸癌細胞Hela，人肝癌細胞HepG2及HepG2-Tet-on細胞實驗室保存；PCR反應體系購自TaKaRa公司；逆轉錄試劑盒購自ToYoBo公司；限制性內切酶及10×buffer購自NEB公司；T4 DNA連接酶購自TaKaRa公司；質粒提取試劑盒，DNA膠回收試劑盒購自上海捷瑞生物技術有限公司；無內毒素質粒抽提試劑盒購自Omega公司；1640、DMEM、胎牛血清購自invitrogen公司；胰蛋白酶，強力霉素Dox及G418實驗室保存；5×Passive Lysis Buffer購自Promega公司；Dual-Luciferase Reporter System檢測試劑盒購自Promega公司；引物合成：博尚生物技術(上海)有限公司。

表1　克隆引物序列(包括酶切位點)

1.2儀器與設備

Cycler PCR儀購自Bio-Rad公司；離心機購自Eppendorf公司及Beckman公司；紫外-可見光分析成像系統購自Bio-Rad公司；酶標檢測儀購自Thermo公司。

1.3重組質粒構建

1.3.1pUC19載體及pLNHX載體多克隆位點的改造

由于pUC19、pLNHX載體本身不具有后續實驗所需的酶切位點，所以首先需對載體的多克隆位點進行改造。

pUC19M獲得：在pUC19載體上插入含有MfeI、KpnI、BamHI、EcoRV、NotI等酶切位點的MCS：利用引物設計軟件Vector-NTI設計引物，引物序列如表1 U19-O3O4：將設計的引物U19-03與U19-04以1∶1的比例混合后直接進行變性退火獲得目的基因MCS。用EcoRI-HF/HindIII(Buffer2)對載體pUC19與MCS進行雙酶切，酶切過夜后，對酶切產物進行割膠回收.將回收后的pUC19載體與MCS以1∶3的比例連接，連接條件：15℃連接4 h。連接產物轉化感受態細胞DH5α，挑取克隆進行EcoRI-HF/HindIII雙酶切鑒定，對陽性結果進行測序；pLNHXO1O2獲得：對載體pLNHX進行改造引入MfeI、NotI位點從而構建新的載體pLNHXO1O2；利用引物設計軟件Vector-NTI設計引物，引物序列如表1 LNHX-O1O2：將設計的引物LNHXO1與LNHXO2以1∶1的比例直接置于進行變性退火獲得目的基因MCS。用XhoI/BglII(Buffer3)對載體pLNHX進行雙酶切，酶切過夜后，對酶切產物進行割膠回收。將回收后的pLNHX載體與MCS以1∶3的比例連接，15℃連接4 h。轉化感受態細胞DH5α，挑取克隆進行MfeI酶切鑒定，陽性克隆能夠被酶切為線性條帶，對陽性結果進行測序；pLNHXO5O6獲得：在載體上插入含有MfeI、HpaI、BamHI、XhoI、MluI等酶切位點的MCS從而構建新的載體pLNHXO5O6：利用引物設計軟件Vector-NTI設計引物，引物序列如表一LNHX-O5O6：將設計的引物LNHXO5與LNHXO6以1∶1的比例直接置于進行變性退火獲得目的基因MCS。用XhoI/BglII(Buffer3)對載體pLNHX進行雙酶切，酶切過夜后，對酶切產物進行割膠回收。將回收后的pLNHX載體與MCS以1∶3的比例連接，15℃連接4 h。轉化感受態細胞DH5α，挑取克隆進行MfeI酶切鑒定，陽性克隆能夠被酶切為線性條帶對陽性結果進行測序。

1.3.2白蛋白啟動子調控的rtTA克隆pLNHXO1O2-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA及pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen克隆的構建

利用引物設計軟件Vector-NTI設計引物，引物序列如表1。

以Jc1-Flag2質粒，pTet-on質粒及抽提的小鼠肝臟基因組DNA為模板進行PCR擴增，分別獲得567 bp的Gluc-FMN2A，1 kb的rtTA基因及308 bp的Alb基因，將PCR產物進行割膠回收后逐一插入 pUC19M載體后將連接產物轉化感受態細胞，挑取克隆進行酶切鑒定，對鑒定結果為陽性的質粒進行測序檢測。將測序陽性的重組質粒進行酶切獲得Alb-Gluc-FMN2A-rtTA基因再與pLNHXO1O2連接轉化后挑取克隆進行酶切鑒定，對鑒定結果為陽性的質粒進行測序檢測從而獲得pLNHXO1O2-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA陽性質粒；以pTRE2hyg質粒，pLVX-IRES-ZsGreen質粒及鼠腎cDNA為模板進行PCR擴增，分別獲得433 bp的TRE2(四環素應答元件；tetracycline response element；TRE)啟動子，1.3 kb的MCS-IRES-ZsGreen及1.3 kb uPA，并通過cmv引物退火連接獲得70 bp的TRE2 cmv，將PCR產物進行割膠回收后逐一插入pLNHXO5O6載體后將連接產物轉化感受態細胞，挑取克隆進行酶切鑒定，對鑒定結果為陽性的質粒進行測序檢測，從而獲得pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen陽性質粒；實驗過程中測序發現TRE2缺少一段CMV，所以后期通過引物設計退火連接獲得缺失的cmv，與建立的重組載體連接，由于插入了TRE2cmv，所以失去HpaI酶切位點，用HpaI酶切鑒定可以初步確定陽性克隆。

1.3.3用于pLNHXO1O2-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA功能鑒定的pTRE2hyg-Fluc構建

利用引物設計軟件Vector-NTI設計引物，引物序列如表1，以pIFNβ-Fluc為模板進行PCR擴增獲得1.7 kb的Fluc，將Fluc及pTRE2hyg用BamHI，MluI進行酶切，回收，連接，轉化，挑取克隆進行酶切鑒定從而獲得pTRE2hyg-Fluc陽性質粒。

1.4重組逆轉錄病毒載體功能鑒定：雙熒光素酶報告基因檢測及熒光顯微鏡觀察

雙熒光素酶報告基因檢測法：細胞鋪板后轉染相關質粒，48 h后用200 μL 1×Passive Lysis緩沖液裂解并收集上清。用Dual Luciferase Assay System 試劑盒和Lumat LB 9507儀器測定Fluc、Rluc活性，積分時間均為10 s，結果以Fluc和Rluc比值表示。

熒光顯微鏡檢測法：細胞鋪板后轉染相應質粒，48 h后熒光顯微鏡觀察。

1.5包裝病毒的構建

無內毒素抽提質粒，經過OD260定量后與VSV-G包裝蛋白共轉染包裝細胞GP2-293，轉染采用LipofectamineTm2000進行。轉染48 h后收集病毒。收集病毒即先在4℃ 3861 r/min離心15 min,將上清轉移至超離管中再用超速離心機在4℃，16800 r/min離心2 h，棄去上清液，加入100 μL DMEM重懸并置于4℃溶解8 h使得病毒重新解離為可感染的單體，從而獲得病毒原液用于感染靶細胞。

1.6陽性細胞的選擇與培養

以NIH-3T3細胞作為靶細胞。于感染的前1 d將1×105的NIH-3T3細胞接種于60 mm細胞培養盤中。病毒感染前細胞先用無血清DMEM洗滌一次，再補以1.5 mL無血清DMEM同時加入100 μL病毒原液。感染2 h后重新更換為正常的新鮮培養液，繼續培養24 h，再加入G418(800 μg/mL)篩選陽性克隆。

1.7PCR檢測陽性細胞中目的基因的表達

將體外反復傳代的陽性NIH/3T3細胞用Trizon裂解后抽提RNA并進行定量，用ToYoBo試劑盒逆轉錄后進行PCR鑒定。

2結果

2.1Fluc、Gluc-FMN2A、MCS-IRES-ZsGreen、rtTA、TRE2、Alb、uPA基因片段擴增

以pIFNβ-Fluc、Jc1-Flag2、pLVX-IRES-ZsGreen、pTet-on、pTRE2hyg質粒，抽提的小鼠肝臟基因組DNA和鼠腎cDNA為模板，引物序列見表1。進行PCR反應，擴增出1.7 kb的Fluc，567 bp的Gluc-FMN2A，1.3 kb的MCS-IRES-ZsGreen，1 kb的rtTA基因，433 bp的TRE2啟動子，308 bp的Alb基因和1.3 kb uPA，對PCR產物進行瓊脂糖凝膠電泳(圖1)。結果顯示：在預期位置看到了實驗設想的條帶。

注：A：M：DL2000 Marker；1、2、3、4、5分別為Fluc(1.7 kb)、Gluc-FMN2A(567 bp)、MCS-IRES-ZsGreen(1.3 kb)、rtTA(1 kb)、uPA(1.3 kb)，B：M：DL2000 Marker；1為Alb(308 bp)。 圖1　Fluc、Gluc-FMN2A、MCS-IRES-ZsGreen、rtTA、uPA、Alb基因PCR產物圖 Note：A:M:DL2000Marker;1:Fluc(1.7kb);2:Gluc-FMN2A(567 bp);3:MCS-IRES-ZsGreen (1.3 kb); 4:rtTA(1 kb);5: uPA(1.3 kb), B: M:DL2000 Marker;1: Alb(308 bp). Fig.1　PCR product of Fluc、Gluc-FMN2A、MCS-IRES-ZsGreen、rtTA、uPA、Alb gene

2.2重組質粒pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A -rtTA、pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen及pTRE2hyg-Fluc的酶切鑒定

將改造后的pUC19M載體與PCR擴增獲得的Alb，rtTA，Gluc-FMN2A基因片段經過酶切(酶切位點見表1)，回收純化，連接反應構建成功pUC19M-Alb-GLUC-FMN2A -rtTA，再通過PCR獲得整個Alb-GLUC-FMN2A-rtTA基因片段，與改造后的pLNHXO1O2進行MfeI/NotI酶切連接反應，構建pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA重組質粒。陽性質粒經MfeI/NotI酶切鑒定獲得5300 bp線性質粒和1875 bp Alb-GLUC-FMN2A-rtTA片段(圖2C6)，表明成功構建重組質粒pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A -rtTA。

將改造后的pLNHXO5O6載體與PCR擴增獲得的TRE2，MCS-IRES-ZsGreen，uPA基因片段及cmv引物退火連接獲得的70 bp TRE2cmv依次連接，陽性克隆經MfeI/HpaI，XhoI/MluI，XhoI/BamHI酶切可分別獲得均缺失70 bp TRE2cmv的5300 bp線性質粒和433 bp TRE2(圖Ea2)，5733 bp線性pLNHXO5O6-TRE2和1300 bp IRES-ZsGreen(圖Eb1、2、4)，7033 bp線性pLNHXO5O6-TRE2-IRES-ZsGreen和1300 bp uPA(圖Ec3)，經HpaI酶切鑒定(由于插入TRE2cmv，陽性質粒在擴增中會失去HpaI酶切位點)，陽性 pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen不能被酶切(圖Ed4)，結果表明已成功構建pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen。

將pTRE2hyg載體與PCR擴增獲得的Fluc基因片段經過BamHI/MluI酶切，回收純化，連接反應構建pTRE2hyg-Fluc(圖2DE)。陽性質粒經BamHI/MluI酶切鑒定獲得5300 bp線性質粒和1700 bp Fluc片段見圖2D1、3、5，表明成功構建重組質粒pTRE2hyg-Fluc。瓊脂糖凝膠電泳結果顯示：陽性質粒在預期位置看到實驗設想的條帶，將陽性質粒送檢測序發現與預期結果一致。

2.3重組質粒pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA和pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen功能鑒定

2.3.1rtTA特異性表達檢測

將重組病毒質粒pLNHX-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA通過Fugen HD轉染Hela細胞(宮頸癌細胞系)與HepG2細胞(肝癌細胞系)。由于Gluc與rtTA偶聯表達可以自行分泌到細胞上清中，轉染48 h后吸取細胞上清檢測Gluc活性，即可判定rtTA表達。因為HepG2細胞是肝細胞來源，所以可以檢測到Gluc的表達，而Hela細胞缺乏調控白蛋白啟動子的特異性轉錄因子，不能啟動Gluc/rtTA的表達。轉染48 h后熒光檢測結果顯示：HepG2細胞中Gluc表達量為Hela細胞的10倍，表明引入的白蛋白啟動子序列具有組織特異的生物學特性(圖3A)。

2.3.2rtTA可調控的轉錄活性檢測

在HepG2細胞內共轉染pLNHX-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA和pTRE2hyg-Fluc質粒，轉染4 h后進行Dox(1 μg/mL)處理，通過引入Dox(檢測Fluc活性，轉染48 h后雙熒光檢測結果顯示：加入Dox后Fluc/Gluc值為未加Dox誘導的2～3倍，確定pLNHX-Alb-Gluc-FMN2A-rtTA克隆表達的rtTA具有可調控的轉錄因子活性(圖3B)。

2.3.3TRE2-uPA-IRES-ZsGreen表達的可調控性檢測

將重組質粒pLNHXO5O6 -TRE2-uPA-IRES-ZsGreen轉染HepG-Tet-on細胞，轉染4 h后進行Dox(1 μg/mL)處理，轉染48 h后觀察ZsGreen綠色熒光表達，熒光觀察結果顯示：轉入質粒的HepG-Tet-on細胞具有綠色熒光表達，確定了TRE2-uPA-IRES-ZsGreen表達的可調控性(彩插1圖5)。

注：A：Tet-on系統原理圖；B：pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA、pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen質粒結構圖；C、D、E:質粒 pLNHXO1O2-Alb-GLUC-rtTA、pTRE2hyg-Fluc、 pLNHXO5O6 -TRE2-uPA-IRES-ZsGreen的構建; M：DL2000 Marker。 圖2　質粒pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA、pTRE2hyg-Fluc和pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen的構建方法 Note:A:Tet-on system;B:schematic diagram of plasmid pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA、pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen; C、D、E:Construction of plasmid pLNHXO1O2-Alb-GLUC-rtTA、pTRE2hyg-Fluc、pLNHXO5O6 -TRE2-uPA-IRES-ZsGreen;M:DL2000 Marker. Fig.2　Construction of plasmid pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA、pTRE2hyg-Fluc and pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen

圖3　重組質粒pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA功能鑒定 Fig.3　Functional identification of pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A-rtTA

2.4陽性細胞NIH/3T3中目的基因表達的檢測

包裝病毒感染NIH/3T3細胞，通過G418(800 μg/mL)藥物篩選獲得陽性細胞，抽提RNA，逆轉錄后PCR檢測細胞中目的基因的表達，引物見表1。經檢測Alb-GLUC-rtTA-NIH/3T3細胞2～4號，TRE2-uPA-IRES-ZsGreen 2～4號在預期位置看到實驗設想的條帶，表明成功建立了uPA誘導表達系統。

圖4　陽性細胞NIH/3T3中目的基因的表達 Fig.4　Expressing of target gene in NIH/3T3

3討論

病毒性肝炎及相關臟器疾病是是危害人類生命和健康的重大公共衛生問題。以乙型肝炎病毒(hepatitis B virus，HBV)感染為例，目前全球約有HBV攜帶者3.5億人，中國約有1.2億人。丙型肝炎病毒(hepatitis C virus，HCV)感染也是一個世界范圍的嚴重問題。HBV或HCV的感染是導致慢性肝病和肝癌的重要要病因，然而相關機制仍未完全闡明[5-6]。為了有效進行病毒性肝炎研究，需要建立可以模擬人類自然感染過程的合適的小動物模型。 現有的轉病毒基因小鼠、病毒基因高壓水動力法轉染小鼠模型等，均非自然感染模型[7-17]。

鑒于HBV或HCV對人肝細胞受體的特殊嗜性，比較理想的小動物模型是肝臟人源化的小鼠模型，uPA/SCID小鼠模型即屬于其中應用較多的一類。然而由于原有的uPA/SCID小鼠模型仍然存在諸多缺陷，對其更廣泛的應用形成了限制。國際上病毒性肝炎著名學者Charles M. Rice和Alexander Ploss[18]提出，可誘導型肝損基礎上的人肝/免疫雙嵌合小鼠模型是代表人類肝臟病研究領域中新希望的地平線(new horizon)。可誘導型肝損傷模型無建模手術窗口期限制，而且由于毒性基因的可控表達也解決了種群繁育方面的困難，因此可克服原有uPA小鼠諸多缺點。

北京大學鄧宏魁等[2]曾報道：利用tet-on調控系統以及腺病毒感染轉入uPA基因的方法來實現 uPA可調控表達和定時肝損的發生。然而，由于維持uPA表達需反復進行腺病毒接種感染，宿主小鼠產生針對前次腺病毒感染產生的抗體可影響后續腺病毒感染的效率，從而降低uPA表達水平。而且，由于腺病毒感染本身可激活天然免疫，必然會干擾后續作為研究對象的HBV或HCV等病毒的感染過程，因此該模型只適合用于肝移植和再生的研究，并不適合用于HBV、HCV等的感染研究。

構建tet-on系統調控的uPA轉基因/免疫缺陷小鼠模型是一個可完全避開上述通過腺病毒感染轉入uPA基因的模型缺陷的策略[19-20]。本研究建立了基于tet-on的可調控性uPA誘導表達系統。通過PCR擴增成功獲得目的基因Alb、GLUC、rtTA、TRE2、uPA、IRES-ZsGreen(圖1)，并將其插入改造后的pUC19、pLNHX載體中，酶切鑒定結果(圖2)表明：已成功構建pLNHXO1O2-Alb-GLUC-FMN2A -rtTA和pLNHXO5O6-TRE2-uPA-IRES-ZsGreen重組質粒。后期我們對重組質粒功能進行檢測，結果初步確定了Alb啟動子、rtTA、TRE2具有表達活性(圖3)。實驗組Dox誘導后細胞有綠色熒光表達，可確定TRE2-uPA-IRES-ZsGreen表達的可調控性。

本研究所構建的可調控性uPA誘導表達系統將進一步用于構建可調控性uPA/SCID小鼠模型，所建立的小鼠作為肝臟人源化小鼠模型，可解決以往各種轉病毒基因小鼠、病毒基因高壓水動力法轉染小鼠模型等的非自然感染過程的問題，同時由于實現了毒性基因uPA的可控表達，還可以克服原有uPA/SCID小鼠的品系繁育困難，手術窗口期限制等缺陷，從而為病毒性肝炎的研究提供一個更加有力的模型。

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〔修回日期〕2014-11-20