反溶劑法制備玉米醇溶蛋白-海藻酸鈉復合微粒研究

安豐豪，曹煜婕，姜珊珊，劉佶軒，李 明

（通化師范學院食品科學與工程學院，吉林通化 134001）

玉米醇溶蛋白是存在于玉米胚乳中的一種醇溶性蛋白，約占玉米蛋白總量的60%[1-2]。雖然玉米醇溶蛋白不溶于水，但由于其含有50%以上的疏水性氨基酸，因此該蛋白質可溶解于乙醇溶液、高濃度尿素、堿性pH 值（＞11）緩沖劑和陰離子表面活性劑中[3]，并且可以通過自組裝轉化為具有兩親性的微/納米顆粒，用于運載疏水性活性物質，提高其穩定性和生物利用率[4-8]。然而，玉米醇溶蛋白單獨作為載體使用時，其穩定性并不理想，對pH、離子強度和溫度的變化敏感。多糖作為天然材料已被廣泛用于食品工業，具有高度的穩定性、生物相容性和生物可降解性。由于多糖在分子鏈上帶有天然電荷（離子或非離子）和各種基團（羥基、羧基、氨基等），因此多糖可以通過化學交聯、物理交聯、多離子復合物和自組裝等方式與蛋白質一起參與微/納米載體的制備[9-10]。因此，玉米醇溶蛋白常與多糖反應制備復合微粒以提高其穩定性。

玉米醇溶蛋白-多糖復合微粒的制備多采用反溶劑法（anti-solvent），也稱為液-液分散法（liquid-liquid dispersion）。目前，在玉米醇溶蛋白-多糖復合微粒的研究中，多集中于穩定性及生物活性物質的運載方面，對制備方法則鮮有報道。Joye 等[11]提出，反溶劑法制備微/納米顆粒的過程中，混合技術（攪拌或超聲波）、添加順序（溶劑向反溶劑中加入或反溶劑向溶劑中加入）、添加方式（滴加或倒入）、反溶劑與溶劑的比例、化合物濃度、溫度和穩定劑等都可能會對產品特性產生影響。因此，本研究重點考察了不同制備技術對玉米醇溶蛋白-海藻酸鈉復合微粒特性的影響，以期促進蛋白質-多糖復合微/納米顆粒技術的深入研究和推廣應用。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

玉米醇溶蛋白，Z3625，西格瑪奧德里奇（上海）貿易有限公司；海藻酸鈉、無水乙醇、氯化鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉、鹽酸、氫氧化鈉，分析純，均購自國藥集團化學試劑有限公司。

1.2 儀器與設備

水浴鍋，DK-S24，上海精宏實驗設備有限公司；旋轉蒸發儀，RE-3000A，上海亞榮生化儀器廠；分光光度計，722N，上海儀電分析儀器有限公司；高速分散均質機，FJ-200S，杭州齊威儀器科技有限公司；真空冷凍干燥機，LGJ-12，北就松源華興科技發展有限公司；傅立葉紅外光譜分析儀，Nicolet iS20，賽默飛世爾科技（中國）有限公司。

1.3 方法

1.3.1 復合微粒制備

方法一（F1）：將玉米醇溶蛋白溶于80%乙醇后得到玉米醇溶蛋白乙醇溶液，將其滴入海藻酸鈉水溶液中，邊滴邊攪拌，攪拌速率為10 000 r/min，混合后繼續攪拌5 min，然后旋轉蒸發除去乙醇，用蒸餾水定容至原體積，得復合微粒溶液，進行穩定性檢測。

方法二（F2）：將海藻酸鈉溶液滴入玉米醇溶蛋白乙醇溶液中，其他操作同方法一。

方法三（F3）：將玉米醇溶蛋白乙醇溶液緩慢倒入海藻酸鈉溶液中，其他操作同方法一。

方法四（F4）：將海藻酸鈉溶液緩慢倒入玉米醇溶蛋白乙醇溶液中，其他操作同方法一。

方法五（F5-分階段制備）：將玉米醇溶蛋白乙醇溶液滴入蒸餾水中，邊滴邊攪拌，攪拌速率為10 000 r/min，混合后繼續攪拌5 min，然后旋轉蒸發除去乙醇，用蒸餾水定容至原體積，得玉米醇溶蛋白微粒懸浮液，然后將玉米醇溶蛋白微粒溶液與等體積海藻酸鈉溶液混合，得復合微粒溶液，進行穩定性檢測。

1.3.2 紅外光譜檢測

復合微粒溶液經冷凍干燥后得固體樣品，取一定量固體樣品進行ATR-FTIR 檢測，檢測所得各樣品紅外光譜數據經標準化處理后進行對比分析。

1.3.3 穩定性檢測

復合微粒的穩定性主要表現在當環境發生變化時，微粒是否易于發生聚集甚至沉淀。復合微粒聚集時，粒度增加，粒度變化可由樣品的透光度反映出來[12]。在一定條件下，當樣品的透光度降低，說明復合微粒發生聚集，粒度增加，溶液渾濁度增加。因此，復合微粒溶液的透光度可反映樣品微粒的聚集狀態，從而判斷復合微粒的穩定性。

（1）pH 穩定性

吸取1 mL 復合微粒溶液，加入19 mL 磷酸鹽緩沖溶液（pH 3～8），混勻，在波長500 nm 條件下測定溶液的透光度。

（2）離子強度穩定性

NaCl溶液濃度分別為200、400、600、800、1 000 mol/L。吸取1 mL 復合微粒溶液，加入1 mL、200 mol/L NaCl 溶液，混勻，取1 mL 混合溶液，再加入19 mL、100 mol/L NaCl 溶液稀釋，在波長500 nm 條件下測定溶液透光度。其它不同NaCl 濃度條件下的離子強度穩定性檢測方法同上。

（3）熱處理穩定性

吸取1 mL 復合微粒溶液，加入19 mL 水，混勻，分別置于45、55、65、75、85、95、100 ℃水浴中，加熱15 min，在波長500 nm 下測定溶液透光度。

1.4 數據處理與分析

每組實驗均至少重復3 次，結果表示為平均值±標準差。應用Origin 8.5 進行數據處理，并采用最小顯著差數法（LSD）進行顯著性分析。

2 結果與分析

2.1 制備方法對復合微粒穩定性的影響

2.1.1 制備方法對復合微粒pH 穩定性的影響

由圖1 可知，pH 變化對F1 的穩定性影響不顯著，但對F2～F5 具有顯著性影響（P＜0.05）。說明F1 對pH 變化的穩定性相對較好。除F1 和F4 的透光度比較接近外，其它方法制備所得樣品的透光度在數值上相差較大，其中F3 的透光度最高，其次是F1、F4、F2 和F5，說明F3 制備的微粒粒度最小，其次是F1、F4、F2 和F5。由以上結果可得，F1 的pH 穩定性最好，F2 的穩定性最差；F3的粒度最小，F5 的粒度最大。因此，在復合微粒制備過程中，玉米醇溶蛋白與多糖溶液的添加順序、混合方式（滴入、倒入）以及復合方式（F5）對pH 變化的敏感度不同，所得微粒的粒度也不同，是在微粒制備時需要重點考察的因素。

圖1 制備方法對復合微粒pH 穩定性的影響Fig.1 Effect of preparation method on pH stability of composite microparticles

2.1.2 制備方法對復合微粒離子強度穩定性的影響

由圖2 可知，離子強度的變化對復合微粒的穩定性有顯著影響（P＜0.05）。其中，F1 在200 mmol/L NaCl 條件下透光度最高，在300～500 mmol/L NaCl 范圍內變化不顯著；F2 在100～300 mmol/L NaCl 范圍內變化不顯著，但在300～500 mmol/L NaCl 范圍內先下降后上升；F3 在100～300 mmol/L NaCl 范圍透光度逐漸下降，在300～500 mmol/L NaCl 時透光度先上升后下降；F4 在100～500 mmol/L NaCl 范圍內先上升后下降，300 mmol/L NaCl時透光度最高；F5 在100～500 mmol/L NaCl 范圍內變化顯著（P＜0.05），在400 mmol/L NaCl 時透光度最低。通過以上分析可得，5 種制備方法對離子強度的變化都較敏感，透光度隨離子強度的變化呈現不同的變化趨勢。由極差比較可得，在100～500 mmol/L NaCl 范圍內，F1 的透光度變化相對最小，F2 的透光度變化相對最大，因此，各制備方法對離子強度的相對穩定性由大到小依次是F1＞F5＞F3＞F4＞F2。

圖2 制備方法對復合微粒離子強度穩定性的影響Fig.2 Effect of preparation method on ionic strength stability of composite microparticles

2.1.3 制備方法對復合微粒熱處理穩定性的影響

透光度可通過檢測樣品的混濁度而得，反映了樣品微粒聚集程度的大小或微粒粒度的大小[12]。由圖3 可知，在45～100 ℃范圍內，不同制備方法所得復合微粒的透光度對溫度的變化比較敏感（P＜0.05），說明熱處理對復合微粒穩定性的影響顯著。5 種制備方法所得的復合微粒中，F1 對熱處理的穩定性相對較好，F5 對熱處理的穩定性相對最低。

圖3 制備方法對復合微粒熱處理穩定性的影響Fig.3 Effect of preparation method on thermo stability of composite microparticles

綜上所述，在復合微粒制備過程中，不同的制備方法對所得微粒的透光度有顯著影響，說明不同方法所得微粒的粒度大小差異明顯，同時，不同制備方法所得微粒的穩定性也不同。因此，在利用玉米醇溶蛋白和多糖制備復合微粒時，添加順序、混合方式及復合方式等制備參數都是需要重點考察的因素。

2.2 不同制備方法所得復合微粒的紅外光譜分析

傅立葉變換紅外光譜技術常用于研究蛋白質與多糖的相互作用，有效地識別功能團。蛋白質重復單元的振動產生一些特征性的紅外吸收帶，如酰胺A、B 和I～VII 等[13]。

由圖4 可知，在玉米醇溶蛋白的紅外光譜中，1 644 cm-1和1 531 cm-1分別屬于酰胺I 帶（1 700～1 600 cm-1區域，主要是C═O 拉伸）和酰胺II 帶（1 600～1 500 cm-1區域，主要是C—N 拉伸加上N—H 彎曲模式），3 100～3 500 cm-1是由于羥基的O—H 拉伸振動，CH2反對稱和對稱拉伸振動的光譜在3 000～2 800 cm-1范圍內。在海藻酸鈉的紅外光譜中，O—H 和C—H 的伸縮振動分別表現在3 242 cm-1和2 925 cm-1[14]，而1 590 cm-1和1 409 cm-1分別來源于COO—和C═O 的伸縮振動[15]，C—O—C 的伸縮振動表現在1 082 cm-1[16]。

圖4 玉米醇溶蛋白（A）、海藻酸鈉（B）、玉米醇溶蛋白和海藻酸鈉的物理混合物（C）、方法1～5（D～H）所得微粒的紅外光譜Fig.4 The infrared spectroscopy of Zein (A),sodium alginate(B),zein-alginate physical mixture (C),microparticles obtained from F1～F5 (D～H)

由圖4 可知，玉米醇溶蛋白和海藻酸鈉粉末混合樣品的紅外光譜（圖4C）與F1～F4 的光譜有顯著的區別，說明玉米醇溶蛋白與海藻酸鈉的相互作用不是簡單的物質混合，而是發生了某些化學反應。有研究顯示，蛋白質與多糖之間的相互作用包括離子鍵、氫鍵和疏水作用力[10]。由F1～F4 的光譜結果可知（圖4 D～G），不同制備方法對樣品紅外光譜的影響不顯著，說明玉米醇溶蛋白與海藻酸鈉的作用機制是相同的，不受溶液的添加順序和混合方式（滴入、倒入）的影響。但是，由圖4H 可知，F5 的紅外光譜與前4 種樣品的紅外光譜有顯著區別，說明F5 與F1～F4 的反應機制不同。

3 結論

由穩定性研究結果可得，在玉米醇溶蛋白與海藻酸鈉復合微粒的制備過程中，添加順序和混合方式（滴入、倒入）對微粒的穩定性有顯著影響，其中，F1 對pH 和熱處理的穩定性相對較好。同時，不同制備方法所得復合微粒的粒度不同，由小到大依次是F3＜F1＜F4＜F2＜F5。由紅外光譜結果可得，分階段制備法（F5）與其它方法在微粒的形成機制上有本質的區別，需要進一步深入的研究。