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蝦蛄活性肽的分離與純化及其對腫瘤細胞凋亡的影響

2015-10-21 17:09:26李云濤卜天曹玉昊馬劍茵
安徽農業科學 2015年34期

李云濤 卜天 曹玉昊 馬劍茵

摘要 [目的] 為海洋抗腫瘤新藥的開發提供候選藥物。[方法] 以海洋生物蝦蛄為原料,采用胰蛋白酶水解提取蝦蛄軟體組織中的活性多肽,采用超濾、凝膠層析、高效液相色譜等技術對其進行分離與純化,并選擇高表達腫瘤細胞株進行體外抗腫瘤活性評價。[結果] 獲得純度較高的活性肽FHOS,此肽的氨基酸序列為Phe Tyr Met Asn His。采用MTT法測得FHOS對PC3細胞和A549細胞的最高增殖抑制率達到70.1%和90.0%,呈現良好的量效和時效關系。[結論] FHOS具有一定的抑制腫瘤細胞凋亡的活性。

關鍵詞 蝦蛄;活性肽;抗腫瘤活性

中圖分類號 S986.2 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611(2015)34-219-03

蝦蛄(Oratosquilla oratoria),屬于節肢動物門、軟甲綱、口足目,在我國南北沿海地區均有分布,是浙江省重要的水產品之一。蝦蛄體內的蛋白質含量較高,占總體的16%~20%左右,而生物活性肽就常以非活性形式存在于構成蛋白質的氨基酸長鏈中。近年來研究表明,口蝦蛄乙醇提取物能抑制CNE2Z細胞裸鼠移植瘤的生長[1],降低CNE2Z細胞的體外侵襲能力[2]。酶解法水解提取海洋生物蛋白條件溫和,水解度相對較高,營養成分保留得相對較好,而且從酶解蛋白質產物中分離純化[3],經常會得到一些具有生物活性的肽類化合物。筆者以海洋生物蝦蛄為原料,運用酶解方法和現代分離技術(膜分離技術、色譜分離技術)提取純化蝦蛄多肽,選擇高表達腫瘤細胞株進行體外抗腫瘤活性評價,旨在為海洋抗腫瘤新藥開發提供候選藥物。

1 材料與方法

1.1 試驗材料

胎牛血清,購自杭州四季青生物工程有限公司;四甲基偶氮唑藍(MTT),購自美國SIGMA公司;F12粉末培養基,購自美國SIGMA公司;RPMI1640 培養基,購自Gibco 公司;二甲基亞砜(DMSO),購自美國SIGMA公司。

1.2 試驗儀器

BSZ40LCD 自動部分收集器,為上海琪特分析儀器有限公司產品;島津PPSQ31A蛋白質測序儀,為日本島津公司產品;高效液相色譜儀Agilent 1200,為美國Agilent公司產品;超濾杯、超濾膜,購自上海摩速科學器材有限公司; G25凝膠分子篩,購自北京亞太恒信生物科技有限公司。FD1000冷凍干燥機,為上海愛朗儀器有限公司產品; CF16RXII高速冷凍離心機,為日本HITACHI公司產品; UV1100紫外分光光度計為上海美譜達公司產品;ZHJHC1209C型超凈工作臺,為上海智誠分析儀器制造有限公司產品;酶標儀,美國BioRad公司產品; Forma 3111型CO2培養箱,為美國Thermo公司產品;倒置顯微鏡,為日本OLYMPUS公司產品。

1.3 細胞株

人前列腺癌細胞PC3、DU145和肺癌細胞A549,由中國科學院上海細胞生物學細胞庫提供。

1.4 試驗方法

1.4.1 酶解法制備蝦蛄多肽粗提物。

取蝦蛄并粉碎,調節pH,在水浴保溫條件下加入一定量的胰蛋白酶酶解,酶解條件為:pH8.36 ,加酶量0.92%,酶解溫度55 ℃, 酶解4 h后將酶解液在100 ℃水浴中滅活15 min,4 000 r/min離心20 min,取上清液濃縮,備用。

1.4.2 MTT法測定抗腫瘤活性[4-5]。

將人前列腺癌細胞DU145、PC3和人肺癌細胞A549分別接種到含有10%胎牛血清和雙抗的F12營養液和RPMI1640營養液中,于37 ℃、5%CO2的培養箱中培養。分別取對數期生長的PC3、DU145、A549細胞,用胰酶消化,制成懸液后接種于96孔板內,5%CO2、37 ℃培養24 h,貼壁生長至80%左右,然后棄掉營養液,加入供試蝦蛄多肽樣本,每個組設置3個平行孔,同時設置不加酶解物的對照組,在5%CO2、37 ℃恒溫箱中培養一定時間后,每孔分別加入20 μl MTT和180 μl PBS溫育4 h,棄去培養基,加入150 μl的DMSO,在平板搖床上振蕩10 min,在酶標儀490 nm處測定吸光度,按照以下公式計算細胞增殖抑制率:抑制率=(1-藥物組吸光度值/對照組吸光度值)×100%

1.4.3 蝦蛄酶解多肽的分離與純化。

首先選用超濾法分離,將酶解的粗提物分別用10、5、3 kD超濾膜超濾,分別截留5~10 kD、3~5 kD以及小于3 kD等3個組分,冷凍干燥后分別配成15 mg/ml的濃度,采用MTT法測定各個組分對腫瘤細胞的抑制率。篩選出活性最高的一個組分,選用Sephadex G25凝膠層析,裝柱后用去離子水平衡,組分濃度為100 mg/ml,每次上樣4 ml,洗脫速度為3 ml/min,流動相為去離子水,于280 nm波長處進行紫外檢測。收集洗脫峰,濃縮后冷凍干燥,采用MTT法檢測對 PC3細胞、DU145細胞、A549細胞的增殖抑制率,將活性最高的組分大量收集冷凍干燥進行高效液相色譜分離。高效液相條件為:Zorbax SBC18(4.6×250,5 μm);柱溫為20 ℃;流動相為水和乙腈;梯度洗脫:0~40 min,乙腈濃度由0%變化到70%;流速: 0.8 ml/min;紫外檢測波長分別為220和280 nm。

1.4.4 多肽的氨基酸序列測定。目標多肽的氨基酸序列分析采用N末端氨基酸降解檢測方法測定。

1.4.5 數據處理。所有試驗數據均使用SPSS18.0統計軟件進行單因素方差分析,結果均以平均值±標準差表示。

2 結果與分析

2.1 蝦蛄酶解多肽的膜分離

將濃縮的酶解液經10、5、3 kD的超濾膜粗分離后,得到5~10 kD、3~5 kD以及小于3 kD等3個組分,將各個組分冷凍干燥,配制成15 mg/ml的濃度,反應24 h,各組分對PC3細胞的抑制率分別為25.82%、46.75%和67.80%,對DU145細胞的增殖抑制率為39.72%、45.02%和75.54%,其中組分O3對PC3和DU145細胞的抑制作用效果最好(圖1)。

2.2 蝦蛄酶解多肽的凝膠層析分離

經過超濾后得到抗腫瘤活性較好的O3組分大量收集,冷凍干燥后選用Sephadex G25凝膠層析洗脫,得到3個組分OS1、OS2、OS3(圖2)。

2.3 凝膠層析組分的抗腫瘤活性研究

將各組分分別配成4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0 mg/ml的濃度,采用MTT法檢測其對PC3、DU145、A549腫瘤細胞的增殖抑制率。培養24 h后由于試驗中各組4.0 mg/ml對抗腫瘤細胞的抑制作用較小,所以選為對照組,使用獨立樣本t檢驗分析其他濃度組和該組有無顯著差異。從圖3~5可以看出,3個組分OS1、OS2、OS3對PC3、DU145和A549腫瘤細胞均有一定的抑制性,并且對3種腫瘤細胞的增殖抑制率均呈現出量效關系,其中OS2的抗腫瘤活性最高。對DU145細胞的抑制率要強于PC3細胞和肺癌A549細胞。當DU145濃度為8.0 mg/ml時,對DU145的抑制率達到83.68%,對PC3細胞的增殖抑制率為70.84%,對肺癌A549細胞的增殖抑制率為67.08%。

2.4 高效液相分離組分的抗腫瘤作用

將上述得到的OS2組分進一步經高效液相色譜分離得到3個峰組分,即HOS1、HOS2和HOS3。從圖6可以看出,當濃度為0.4 mg/ml時,培養24 h后,對PC3細胞和DU145細胞的增殖抑制率分別為15.52%、17.96%、16.85%和18.54%、21.02%、20.58%(圖7)。

2.5 FHOS的結構鑒定

從圖8可以看出,組分HOS2對2種腫瘤細胞的增殖抑制作用略強于其他2個組分,將HOS2組分收集并用BEH130 C18色譜柱檢測其純度,在9.81 min出現單一峰,命名為FHOS。經檢測該肽的氨基酸序列為Phe Tyr Met Asn His,其分子量為711.80。

2.6 FHOS對PC3細胞和A549細胞的增殖抑制作用

FHOS設置5個濃度組,分別為3、6、9、12和15.0 mg/ml。分別作用24、48、72 h后,采用MTT法測定對PC3細胞和A549細胞的增殖抑制率。從圖9~10可以看出,作用72 h后FHOS對A549和PC3細胞的增殖抑制率達到70.1%和90.0%。

3 小結

筆者采用胰蛋白酶水解提取海洋生物蝦蛄軟體組織中的活性多肽,將酶解得到的粗提物進一步采用超濾、凝膠層析、高效液相色譜等技術進行分離純化,凝膠層析得到3個組分OS1、OS2和OS3,分別將3個組分對PC3細胞、DU145細胞和肺癌A549細胞進行了抗腫瘤活性的研究,表明3個組分對腫瘤細胞均有很好的增殖抑制活性,并且呈現很好的劑量依賴性,對DU145細胞的增殖抑制率最好。然后,再經過高效液相色譜分離,最終得到一個活性相對較高的蝦蛄酶解多肽HOS2。在濃度0.4 mg/ml時,對前列腺癌DU145細胞的增殖抑制率為21.02%。將HOS2通過高效液相檢測為單一峰,經質譜分析和N末端氨基酸降解測序,該組分的氨基酸序列為Phe Tyr Met Asn His,其分子量為711.80,命名為FHOS。采用MTT法測定FHOS對PC3細胞和A549細胞的增殖抑制率,呈現很好的量效和時效關系。綜上所述,FHOS具有一定的抑制腫瘤細胞凋亡的活性,其體內的抗腫瘤作用及其作用機制還有待于深入研究。

參考文獻

[1]

顧帝水,黃培春,孔霞,等.口蝦蛄提取物對人鼻咽癌裸鼠移植瘤生長的影響[J].現代中西醫結合雜志,2005,14(14):1825-1826,1828.

[2] 顧帝水,孔霞,黃培春.口蝦蛄提取物對人鼻咽癌細胞基質金屬蛋白酶-9的抑制作用[J].現代中西醫結合雜志,2004,13(21):2816-2818.

[3] 龔鋼明,顧慧,蔡寶國.魚類加工下腳料的資源化與利用途徑[J].中國資源綜合利用, 2003(7):23-24.

[4] WU B,ZHU J S,ZHANG Y,et al. Predictive value of MTT assay as an in vitro chemosensitivity testing for gastric cancer:One institutions experience[J].World J Gastroenterol,2008,14(19):3064-3068.

[5] BURTON J D.The MTT assay to evaluate chemosensitivity[J].Method Mol Med,2005,110(1):69-78.

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