復方鹿角膠囊對小鼠腹腔巨噬細胞分泌NO和淋巴細胞增殖的影響

陳東亞,李舸遠,俞萍,呂中明,楊明晶,梁婕Δ

(1.江蘇省疾病預防控制中心 毒理與功能評價所，江蘇 南京 210009；2.江蘇省食品藥品監督檢驗研究院化學室，江蘇 南京 210008)

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復方鹿角膠囊對小鼠腹腔巨噬細胞分泌NO和淋巴細胞增殖的影響

陳東亞1,李舸遠2,俞萍1,呂中明1,楊明晶1,梁婕1Δ

(1.江蘇省疾病預防控制中心 毒理與功能評價所，江蘇 南京 210009；2.江蘇省食品藥品監督檢驗研究院化學室，江蘇 南京 210008)

目的 研究復方鹿角膠囊對小鼠腹腔巨噬細胞NO分泌、淋巴細胞增殖的影響。方法 ICR小鼠隨機分為4組，實驗組小鼠分別灌胃給予233、467、1400 mg/kg的復方鹿角膠囊，對照組以等容積純凈水灌胃，1次/天，連續30 d。處死動物，Griess法測定腹腔巨噬細胞NO含量；流式細胞術測定由刀豆蛋白 (concanavalin A，Con A)活化的淋巴細胞增殖周期；熒光染色法測定經ConA和脂多糖(lipopolysaccharide，LPS)活化的淋巴細胞內Ca2+濃度。結果 與溶劑對照組相比，233、467、1400 mg/kg劑量組均促進經LPS活化的腹腔巨噬細胞分泌NO(P<0.01)；467、1400 mg/kg劑量組比溶劑對照組有更多的淋巴細胞進入S期和G2/M期(P<0.05)；經ConA刺激8 min，各劑量組Ca2+濃度均高于對照組，其中233、1400 mg/kg劑量組小鼠淋巴細胞內Ca2+濃度與對照組相比差異有統計學意義(P<0.05)；經LPS刺激1、4、8 min，各劑量組Ca2+濃度均高于對照組，其中233 mg/kg劑量組淋巴細胞內Ca2+濃度與對照組相比差異有統計學意義，尤其以1 min時效果最為明顯(P<0.01)。結論 復方鹿角膠囊能促進小鼠腹腔巨噬細胞分泌NO，促進活化的淋巴細胞進入S期和G2/M期及淋巴細胞內Ca2+濃度升高，促進淋巴細胞增殖，提高機體免疫調節力。

復方鹿角膠囊；巨噬細胞；NO；淋巴細胞；Ca2+

傳統中藥材丹參、赤芍、白芷能提高機體免疫調節活性的研究常見報道[1-3]，鹿角含有豐富的活性物質并具有廣泛的藥理活性，目前可見報道其可以預防骨質疏松、抗衰老和疏通乳腺[4-6]，本實驗使用的復方鹿角膠囊的主要成分為鹿角粉，配以丹參提取物、赤芍提取物和白芷提取物，其是否具有調節機體免疫能力目前未見報道。機體淋巴細胞和巨噬細胞作為免疫系統中重要的參與細胞，在免疫應答中起關鍵作用。本實驗從復方鹿角膠囊對巨噬細胞分泌NO、對淋巴細胞增殖周期和Ca2+的影響這個角度出發，探討其是否具有提高機體免疫調節活性并為保健食品增強免疫力功能檢測新方法的探索提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實驗動物清潔級ICR小鼠(雌性，5～6周齡，18～22 g)購自上海斯萊克實驗動物有限責任公司[動物生產許可證號：SCXK(滬)2012-0002號]；全部動物均給予滅菌鼠飼料和滅菌水，滅菌鼠飼料來源及合格證號：蘇州雙獅實驗動物飼料科技服務有限公司，蘇E飼生字(2009)05032號。

1.1.2 主要試劑和儀器復方鹿角膠囊由某保健品企業提供；刀豆蛋白A(concanavalinA，ConA)、碘化丙碇(propidium iodide，PI)、脂多糖(lipopolysaccharide，LPS)購自美國Sigma公司；Fluo-4/AM購自日本DoJinDo公司；Griess試劑盒購自美國Promega公司；RPMI1640完全培養基，Hank’s液購自美國GIBCO公司；無支原體新生小牛血清購自浙江天杭生物科技有限公司；多功能酶標儀SpectraMax購自美國Molecular Devices公司；流式細胞儀為BD Accuri?C6購自美國Becton Dickinson公司。

1.2 方法

1.2.1 動物分組及處理：雌性小鼠隨機分為4組，每組10只。實驗設為溶劑對照組，低劑量組(233 mg/kg)，中劑量組(467 mg/kg)，高劑量組(1400 mg/kg)，經口灌胃給予小鼠，灌胃容積為20 mL/kg，溶劑對照組以等容積純凈水灌胃，連續灌胃30 d后測定各項指標。

1.2.2 小鼠腹腔巨噬細胞在LPS刺激后NO的分泌情況的檢測：頸髓脫臼處死小鼠，腹腔注射5 mL RPMI1640完全培養基，輕揉腹部2 min，吸取腹腔內含有巨噬細胞的完全培養基，計數后，調整細胞密度為2×105/mL，每孔1 mL細胞懸液接種于24孔板，37 ℃、5%CO2培養箱過夜，此時巨噬細胞貼于孔底，輕輕吸除培養液后，再用RPMI1640完全培養液洗去未貼壁細胞，加入終濃度為10 μg/mL的LPS刺激24 h，按照Griess試劑盒說明書操作繪制標準曲線并檢測試驗孔的OD值。

1.2.3 脾淋巴細胞的制備：頸髓脫臼處死小鼠，無菌取脾，置于盛有適量無菌Hank’s液平皿中，用鑷子輕輕將脾磨碎，制成單個細胞懸液。經200目篩網過濾，用Hank’s液洗2次，每次離心10 min(1500 r/min)。然后將細胞懸浮于1 mL的完全培養液中，用臺酚藍染色計數活細胞數(應在95%以上)。

1.2.4 復方鹿角膠囊對小鼠脾淋巴細胞周期分布的影響：取1.2.3中獲取的脾淋巴細胞，調整細胞濃度為1×106/mL，每孔1 mL加入24孔培養板，每孔加75 μLConA(相當于7.5 μg/mL)，于72 h收集細胞，1500 r/min離心15 min，細胞沉淀用70%冰乙醇固定，4 ℃冰箱放置12 h以上。固定后的細胞用Hank’s液洗2遍，加入500 μL PI染液(50 μg/mL)，混勻后于4 ℃避光放置1 h，經200目尼龍網過濾，在流式細胞儀上檢測細胞周期分布情況，計數8000個淋巴細胞，重復4次。

1.2.5 復方鹿角膠囊對小鼠脾淋巴細胞內Ca2+濃度的影響：取1.2.3中獲取的脾淋巴細胞，調整細胞濃度為1×107/mL，同一細胞懸液分別加入24孔板的2個孔，每孔1 mL，每孔加入5 μL Fluo 4-AM染液(相當于5 μmol/L)，37 ℃避光孵育30 min，用Hank’s液洗滌細胞(2500r/min，10 min)3遍，1 mLHank’s液重懸細胞，分別加入終質量濃度4.5 μg/mLConA，20 μg/mL LPS，在加入有絲分裂原前4 min，用多功能酶標儀測定細胞內熒光強度F值，激發波長494 nm，發射波長516 nm，加入有絲分裂原后在1、4、8 min分別測定F值，然后加10%Tritonx-100，劑量為10 μL/孔，以破壞細胞膜測定最大熒光值(Fmax)，再加300mmol/LEGTA，每孔200 μL，絡合全部的Ca2+以測定最小熒光值(Fmin)；另外用1640培養液作為空白對照測定自身熒光值。Ca2+濃度的計算公式為：[Ca2+]i=Kd(F-Fmin/Fmax-F),Kd為染料與Ca2+的解離常數，Kd=360 nmol/L。

1.3 統計學方法 獲取的流式細胞數據用FlowJo7.6.1軟件分析，所有數據統計均用SPSS17.0軟件進行方差分析。

2 結果

2.1 復方鹿角膠囊對LPS刺激后小鼠腹腔巨噬細胞NO分泌的影響 根據實驗得出的標準曲線方程y=144.28x-8.3219，R2=0.9992，其中x為吸光值，y為NO含量( μmol/L),將實驗組測得的吸光值代入該方程，得到相應的NO量?？梢妱┝拷M的NO濃度高于溶劑對照組，差異有統計學意義(P<0.01)，見表1。

表1 復方鹿角膠囊對LPS刺激后腹腔巨噬細胞NO分泌的影響±s，n=6)Tab.1 Effects of Compound Antler capsule on NO secretion of mice macrophages stimulated by LPS for ±s，n=6)

*P<0.01，與對照組相比，compared with control group

2.2 復方鹿角膠囊對小鼠脾淋巴細胞周期分布的影響 淋巴細胞經流式細胞儀測定，得圖1結果，圖形結果經FlowJo軟件分析表明，ConA刺激72h后，劑量組與溶劑對照組相比，更多的淋巴細胞進入S、G2/M期，其中467 mg/kg劑量組有(22.07±1.89)%的細胞進入G2/M期(P<0.05)，1400 mg/kg劑量組有(22.78±3.36)%的細胞進入S期(P<0.05)，見表2。

組別細胞周期百分比(%)G0/G1SG2/M對照組+ConA63.86±1.30 16.51±2.11 17.97±1.93 233mg/kg劑量組+ConA61.95±1.5717.59±0.6218.48±0.82467mg/kg劑量組+ConA59.45±4.2116.62±1.9822.07±1.89*1400mg/kg劑量組+ConA57.67±3.93*22.78±3.36*18.53±1.38

*P<0.05，與對照組相比，compared with control group

2.3 復方鹿角膠囊對小鼠脾淋巴細胞內[Ca2+]i的影響 經Fluo 4-AM染色，結果顯示各劑量組在加有絲分裂原刺激前4 min，劑量組淋巴細胞內Ca2+濃度高于溶劑對照組，但無統計學差異，加ConA8 min后，233、1400 mg/kg劑量組胞內Ca2+濃度高于溶劑對照組，差異有統計學意義(P<0.05)，見表3，加LPS后1 min起，233 mg/kg劑量組的Ca2+濃度高于對照組，差異有統計學意義(P<0.05)，見表4。

表3 復方鹿角膠囊對ConA激活的小鼠脾淋巴細胞內[Ca2+]i的影響±s，n=6)Tab.3 Effects of Compound Antler capsule on[Ca2+]i of activated mice spleen lymphocytes by ±s，n=6)

*P<0.05，與對照組相比，compared with control group

表4 復方鹿角膠囊對LPS激活的小鼠脾淋巴細胞內[Ca2+]i的影響Tab.4 Effects of Compound Antler capsule on[Ca2+]i of activated mice spleen lymphocytes by ±s，n=6)

*P<0.05，**P<0.01，與對照組相比，compared with control group

3 討論

增強免疫力功能近年來一直是保健食品研究的熱點，每年都有大量的保健食品提出申報具有該功能。本實驗室每年承擔著大量保健食品的安全性及功能評價工作，本研究在常規檢測項目以外，以小鼠腹腔巨噬細胞和淋巴細胞作為研究對象，探討了該保健食品增強免疫力的功能的可能機制，也為增強免疫力功能檢測新方法的探索提供參考。

巨噬細胞作為機體免疫系統的重要成員之一，在機體免疫調節過程中起著吞噬、抗原提呈和分泌多種活性介質的作用。巨噬細胞通過反應性氮中間物作用系統產生NO，從而發揮殺滅微生物及癌細胞的作用，隨著NO的增加，巨噬細胞具有更強的吞噬功能[7-9]。本實驗結果顯示，復方鹿角膠囊使活化的巨噬細胞產生的NO濃度高于溶劑對照組，且有統計學意義。這說明該膠囊能提高巨噬細胞產生NO的能力，增強巨噬細胞免疫調節活性。

脾臟是機體最大的免疫器官，儲存著大量的T淋巴細胞和B淋巴細胞。淋巴細胞的增殖能力直接反映了機體免疫力水平。在《保健食品評價技術規范》中，增強免疫力功能檢測項目中有一項就是檢測淋巴細胞轉化增殖實驗。細胞的增殖需要經過一系列的環節，如DNA復制、有絲分裂等細胞周期才能增殖，因此細胞是否增殖與細胞周期分布密切相關[10]。T淋巴細胞在相關淋巴因子和周期相關蛋白的作用下從G0/G1靜息期過渡到S期，最后進入G2/M分裂期，增殖周期的變化，能直接反映機體免疫功能[11]。本實驗采用PI染色，流式細胞術觀察復方鹿角膠囊對淋巴周期的影響，發現該膠囊能促進淋巴細胞進入S期和G2/M期，起到促淋巴細胞增殖的作用。

Ca2+是細胞增殖活化過程中必不可少的離子，淋巴細胞內Ca2+作為淋巴細胞激活、增殖過程中的信使分子，在傳遞抗原等外界分子的刺激、啟動相關基因的轉錄及其后續過程中起著重要作用[12]。ConA和LPS能分別激活T、B淋巴細胞，增加細胞內Ca2+濃度[13-15]。本實驗結果表明復方鹿角膠囊能增加靜息淋巴細胞內Ca2+濃度，并能進一步增加經ConA和LPS活化的淋巴細胞內Ca2+濃度。這表明復方鹿角膠囊對活化淋巴細胞有促進作用。但實驗結果中LPS刺激的低劑量組Ca2+濃度在1 min左右即有明顯升高，ConA刺激組低劑量和高劑量組在1 min左右Ca2+濃度卻有所下降，4 min開始升高，這可能與激活不同的鈣離子通道有關，具體機制有待進一步探索。

以上實驗表明，復方鹿角膠囊能促進淋巴細胞增殖，機制為通過升高淋巴細胞內Ca2+，誘導淋巴細胞進入S期，G2/M期，從而促進淋巴細胞增殖，該膠囊還能提高巨噬細胞產生NO能力，從而提高機體巨噬細胞吞噬能力。筆者認為本實驗研究結果結合《保健食品評價技術規范》中的檢測項目，能更全面的反映保健食品是否具有增強免疫力功能。

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(編校：譚玲)

Effects of Compound Antler capsule on NO secretion of macrophages and proliferation of T lymphocytes in mouse

CHEN Dong-ya1,LI Ge-yuan2,YU Ping1,LV Zhong-ming1,YANG Ming-jing1,LIANG Jie1

(1.Institute of Toxicology and Functional Assessment, Jiangsu Provincial Center for Disease Control and Prevention, Nanjing 210009, China; 2.Chemical Formula, Jiangsu Institute for Food and Drug Control, Nanjing 210008, China)

ObjectiveTo explore the effects of Compound Antler capsule on the NO secretion of macrophages, cell cycle and[Ca2+]iof mouse T lymphocytes.MethodsICR mice were randomly divided into 4 groups: experimental groups were respectively given Compound Antler capsule 233, 467, 1400 mg/kg via intragastric administration once a day and the control group were given the same volume of water for 30 days.NO concentration of mouse peritoneal macrophages was measured by Griess assay.The cell cycle distribution of activated mouse spleen lymphocytes was measured by flow cytometry.Fluorescent probe Fluo 4-AM was used to mark Ca2+in lymphocytes, and the changes of its fluorescence intensity were observed with the multiscan spectrum.ResultsThe result showed that NO concentration in experimental groups was higher than that in control group (P<0.01).More activated spleen lymphocytes of 467, 1400 mg/kg dose groups were entried into S and G2/M phase than control group (P<0.05).After activated by ConA for 8 min, the intracellular[Ca2+]iin mouse spleen lymphocytes of 233, 1400 mg/kg dose group was higher than that of control group, respectively (P<0.05).After activated by LPS for 1, 4, 8 min, the[Ca2+]iin mouse spleen lymphocytes of 233 mg/kg dose group was higher than that of control group, especially at 1 min(P<0.01).ConclusionCompound Antler capsule can improve NO secretion of macrophages and facilitate the entry of mouse spleen lymphocytes from the G0/G1 into the S phase.It also can increase the[Ca2+]iof activated lymphocytes to promote their proliferation.Thus Compound Antler capsule can improve the immune regulating ability.

Compound Antler capsule; macrophages; NO; lymphocytes; Ca2+

陳東亞，女，碩士，主管技師，研究方向：保健食品安全性及功能評價，E-mail：yadd522@163.com；梁婕，通訊作者，女，碩士，主管醫師，研究方向：保健食品安全性及功能評價，E-mail：70641911@qq.com。

R285.5

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1005-1678(2015)03-0018-03