白藜蘆醇對游離脂肪酸誘導的胰島β細胞凋亡的影響

徐碧林，申甜，喻明，汪紅平，章志建，朱近悅

(上海市普陀區中心醫院，上海200062)

2型糖尿病(T2DM)以胰島素抵抗(IR)和胰島β細胞功能受損為特征。研究表明，高水平的β細胞凋亡是胰島功能受損的主要原因［1］。近年來研究發現，游離脂肪酸(FFA)不僅參與IR的發生，也損害β細胞胰島素分泌功能，導致β細胞凋亡。白藜蘆醇(Res)屬于一種酚類植物抗毒素，是天然的抗氧化劑和自由基廓清劑，主要存在于各種紅葡萄果實和紅葡萄酒中。研究表明，Res具有明顯降糖作用，但具體機制尚未完全明了。2014年1～6月，本研究用FFA酸棕櫚酸處理β細胞后，觀察不同濃度的Res對胰島β細胞凋亡的影響，現報告如下。

1 材料與方法

1.1 材料 小鼠胰島素瘤細胞(β-TC-6細胞株)購自中國科學院上海細胞生物學研究所，Res、棕櫚酸購自上海安譜生物科技有限公司;DMEM高糖培養基(Hyclone公司)，優質胎牛血清(Biowest南美血源); AnnexinV-FITC凋亡檢測試劑盒(北北京寶賽生物技術有限公司)，5%二氧化碳(CO2)細胞培養箱(Shell-Lab公司)，流式細胞儀(BD FACSCALIBUR)。

1.2 方法

1.2.1 細胞傳代 原代β-TC-6細胞狀態良好，細胞密度80%～90%。準備完全培養基(DMEM高糖+15%FBS熱滅活)、PBS和胰酶。胰酶消化細胞，制備單細胞懸液。800 r/min離心3min，去除培養液，加入新鮮培養基重懸細胞。將細胞懸液按1∶2比例分到直徑10 cm培養皿中，補加培養基至10 mL。把培養皿放入37℃、5%CO2細胞培養箱中培養，間隔12～24 h，觀察細胞生長狀態。

1.2.2 細胞培養 培養胰島細胞至對數生長期，接種于96孔板，每孔細胞數3×104。將細胞隨機分為A～F組，A、B組分別置于不含FFA及含500 μmol/ L棕櫚酸的培養基中培養，C～F組分別置于含0.1、1、10、50 μmol/L的Res+棕櫚酸500 μmol/L的培養基中培養。每組設6個復孔，置于37℃、5%CO2細胞培養箱中，觀察細胞生長形態。

1.2.3 細胞凋亡檢測 采用流式細胞術。各組細胞培養24 h后，加入適量胰酶細胞消化液消化細胞，PBS洗滌細胞2次;1 000 r/min離心5min，離心2次后棄上清。每樣本加200 μL Binding Buffer重懸細胞后加入10 μL AnnexinV-FITC，輕輕混勻，置室溫避光孵育15 min;加入5 μL碘化丙啶，置相同條件下孵育5 min，1 h內入流式細胞儀檢測凋亡細胞和正常細胞比率。

1.2.4 統計學方法 采用SPSS13.0統計軟件。計量資料以s表示，組間比較采用單因素方差分析，兩兩比較采用SNK檢驗。P≤0.05為差異有統計學意義。

2 結果

各組胰島β細胞存活率、凋亡率比較，見表1。

表1 各組胰島β細胞存活率、凋亡率比較(%，s)

表1 各組胰島β細胞存活率、凋亡率比較(%，s)

注:與A組比較，*P＜0.05;與B組比較，#P＜0.01;與C組比較，△P＜0.01;與D組比較，○P＜0.01。

組別 n 細胞存活率 細胞凋亡率A組6 90.31±4.70 7.40±2.99 B組 6 5.07±2.27* 95.82±1.94* C組 6 8.37±2.06*# 83.36±2.06*# D組 6 21.99±2.47*#△ 68.94±2.19*#△E組 6 88.67±1.17*#△○ 11.03±1.08*#△○F組 6 5.20±1.72* 95.65±1.72*

3 討論

T2DM常合并血脂紊亂，脂代謝紊亂貫穿于T2DM發生、發展的始末，其與T2DM的關系得到廣泛的關注。國內外眾多實驗都報道了脂毒性可引起β細胞功能紊亂及凋亡。所謂脂毒性是指血FFA水平升高后，超過脂肪組織的儲存能力和各組織對FFA的氧化能力，使過多的FFA以甘油三酯的形式在非脂肪組織過度沉積而造成該組織的損傷。FFA可通過多種途徑引起β細胞凋亡，如激活氧化應激［2］、誘導凋亡相關因子(神經酰胺［3］、Caspase家族［4］、凋亡相關蛋白激酶2［5］)失衡、內質網應激［6］、以及microRNA等［7］。

Res是一種天然的多酚類化合物，存在于多種中草藥和其他植物中，如虎杖、葡萄、花生、桑葚、決明子、藜蘆等。諸多研究表明，Res具有多重生物活性作用，包括抗腫瘤、抗氧化、抗炎、心血管保護等。尤其近年來研究發現，Res還具有降低血糖，改善胰島素抵抗的作用，其具體機制目前還不是很明確。

本研究以FFA棕櫚酸和不同濃度Res同時作用于胰島β細胞，觀察β細胞凋亡及存活比例，以期探索Res對棕櫚酸誘導的β細胞凋亡的影響。結果顯示，Res在一定濃度范圍內(0.1～10 μmol/L)可明顯抑制棕櫚酸誘導的β細胞凋亡，且隨著濃度的增加，這種抑制作用也逐步增強。而當濃度超過50 μmol/L時，Res抗凋亡作用消失。說明Res對胰島β細胞凋亡的抑制是在一定濃度范圍內的，而高濃度的Res并不能抑制β細胞凋亡。Res的這種抗凋亡作用可能與其抗氧化應激作用相關。研究表明，Res可顯著升高細胞線粒體錳超氧化物歧化酶的蛋白水平和活性，發揮抗氧化應激作用［8］。另外，Res還可通過直接清除活性氧或者抑制NADPH氧化酶的活性，保護細胞免受損傷［9］。高FFA水平也是糖尿病氧化應激的直接來源之一。研究發現，FFA誘導的氧化應激可能與FOX01降低密切相關。而Res可能通過激活SIRTI使FOX01活性升高，從而緩解FFA誘導的氧化應激損傷［10］。近年來的研究表明，Res還可通過抑制IKK-β/IκB/NF-κB炎癥信號通路［11］，激活 AMPK通路［12］、PI3K/Akt通路［13］等來發揮其降低血糖、改善胰島素抵抗的作用。但是，由于Res的作用機制復雜，不同濃度的Res可產生截然不同的作用，相同濃度的Res處理不同的細胞亦可產生不同的作用。研究發現，當Res劑量為0.01～1.00 μmol/L時，可改善細胞的胰島素敏感性，保護細胞功能［14］;而當其劑量超過10 μmol/L且培養時間超過24 h可對細胞產生毒性作用。另有研究發現，100 μmol/L Res培養24 h可誘導細胞凋亡［15］。本研究的結果與之相似，其具體機制還有待進一步研究。

總之，本研究證實在一定濃度范圍內，Res能顯著拮抗棕櫚酸誘導的胰島β細胞凋亡，從而為Res進一步應用于糖尿病臨床治療提供了理論基礎。

［1］Rhodes，CJ.Type 2 diabetes-a matter of β-cell life and death［J］.Science，2005，307(5708):380-384.

［2］Oprescu A，Bikopoulos G，Naassan A，et al.Free fatty acid induced reduction in glucose stimulated insulin secretion evidence for a role of oxidative stress in vitro and in vivo［J］.Diabetes，2007，56(12):2927-2937.

［3］Lang F，Ulrich S，Gulbins E，et al.Ceramide formation as a target in beta-cell survival and function［J］.Expert Opin Ther Targets，2011，15(9):1061-1071.

［4］Hirota N，Otabe S，Nakayama H，et al.Sequential activation of caspases and synergistic β-cell cytotoxicity by palmitate and anti-Fas antibodies［J］.Life Sci，2006，79(13):1312-1316.

［5］Mao JN，Luo HY，Wu JP.Drak2 overexpression results in increased cell apoptosis after free fatty acid stimulation［J］.J Cell Biochem，2008，105(4):1073-1080.

［6］Karaskov E，Scott C，Zhang L，et al.Chronic palmitate but not oleate exposure induces endoplasmic reficulum stress which may contribute to INS-1 pancreatic β-cell apoptosis［J］.Endocrinology，2006，147(7):3398-3407.

［7］Pascal L，Elodie R，Ross L，et al.Alterations in MicroRNA expression contribute to fatty acid-induced pancreatic β-cell dysfunction［J］.Diabetes，2008，57(10):2728-2736.

［8］Robb EL，Page MM，Wiens BE，et al.Molecular mechanisms of oxidative resistance induced by resveratol:specfic and progressive of MnSOD［J］.Biochem Biophys Res Commun，2008，367(2): 406-412.

［9］Chow SE，Hshu YC，Wang JS，et al.Resveratrol attenuates ox-LDL-stimulated NADPH oxidase activity and protects endothelial cells from oxidative function damages［J］.J Appl Physiol，2007，102(4):1520-1527.

［10］Subauste AR，Burant CF.Role of Fox01 in FFA-induced oxidative stress in adipocytes［J］.Am J Physiol Endocrinol Metab，2007，293(1):E159-E164

［11］Gonzales AM，Orlando RA.Curcumin and resveratrol inhibit nuclear factor-kappaB-mediated cytokine expression in adipocytes［J］.Nutr Metab(Lond)，2008，5(17):1-13

［12］Canto C，Jiang LQ，Deshmukh AS，et al.Interdependence of AMPK and SIRTl for metabolic adaptation to fasting and exercise in skeletal muscle［J］.Cell Metab，2010，11(3):213-219.

［13］Chi TC，Chen WP.Phosphatidylinositol-3-kinase is involved in the antihyperglycemic effect induced by resveratroi in streptozotocin-induced diabetic rats［J］.Life Sciences，2007，80(18):1713-1720.

［14］Sun C，Zhang F，Ge X，et al.SIRTI improves insulin sensitivity under insulin-resistant conditions by repressing PTP1B［J］.Cell Metab，2007，6(4):307-319.

［15］Hambrock A，Bernardo C，Hiller S，et al.Resvemtrol binds to the sulfonylurea receptor and induces apoptosis in a SUR-subtype specific manner［J］.J Biol Chem，2007，282(5):3347-3356.