果蠅抗菌肽DiptericinA基因的原核表達及其抑菌活性

徐 佳

(貴州民族大學， 貴州 貴陽 550025)

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果蠅抗菌肽DiptericinA基因的原核表達及其抑菌活性

徐 佳

(貴州民族大學， 貴州 貴陽 550025)

為成功獲得具有生物活性的Diptericin蛋白，利用RT-PCR方法從果蠅體內獲得DiptericinA基因，經PCR、雙酶切、序列測定等方法確認構建原核表達載體的正確性；重組質粒轉化大腸桿菌BL21，Ampicillin抗性篩選工程菌株，經二步親和層析純化以及凝血酶切純化后進行抑菌測驗。結果表明：獲得DiptericinA基因；成功構建原核表達載體；在大腸桿菌中實現Diptericin A-GST融合蛋白的胞內可溶性表達，表達量為315.4 mg/L；獲得Diptericin A抗菌肽單體，純度達90%；抑菌檢測證明，Diptericin A對大腸桿菌具有明顯抑制活性，且呈劑量依賴性。

DiptericinA； 原核表達； 抑菌活性； 果蠅； 原核表達

果蠅缺乏哺乳動物具有的獲得性免疫系統，也無抗體和補體系統，但成蟲果蠅卻能成為酵母、細菌和真菌的傳播載體，使有機體腐爛或變壞，這主要是因為果蠅的天然免疫系統可以抵制各種病原微生物的侵染[1]。果蠅免疫反應的一個重要特點是在受到病原微生物侵染或損傷時，脂肪體細胞能快速合成一些抗菌肽，這些分子分泌到血淋巴后能殺死入侵的病原微生物[2]。另外，果蠅的氣管和上皮細胞等也能產生抗菌肽，而腸細胞和唾腺細胞等能產生溶菌酶和昆蟲防御素等抗菌蛋白[3-5]。到目前為止，在果蠅基因組中已發現超過30種編碼抗菌肽的基因，目前已有Attacin、Cecropin及Andropin[6-8]的表達研究，但對于成功獲得具有生物活性的Diptericin尚未見報道。因此，筆者利用大腸桿菌表達系統對黑腹果蠅的天然抗菌肽Diptericin A進行表達，測定表達產物是否具有抑殺大腸桿菌的活性，為開發新型抗菌肽藥物提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料

黑腹果蠅(Drosophilamelanogaster)由上海大學生命科學學院飼養，大腸桿菌TOP10、大腸桿菌BL21和金黃色葡萄球菌ATCC6538由上海大學生命科學學院保存。

Ex.Taq酶、限制性核酸內切酶、T4DNA連接酶、RT-PCR試劑盒、小量膠回收試劑盒、小量質粒抽提試劑盒、原核載體pGEX-4T-1購自Takara，Trizol、Ampicillin試劑購自鼎國生物技術有限公司，IPTG購自上海生工生物工程有限公司，GST-sepharose 4B購自Amersham Pharmacia Biotech，氧化型谷胱甘肽、還原型谷胱甘肽、十二烷基肌氨酸鈉購自上海華舜生物有限公司，凝血酶(Thrombin，10U/mg)購自上海永吉生物有限公司，CNBr-activated Sepharose 4B購自Amersham Biosciences，其他試劑均為國產分析純，購自國藥集團化學試劑有限公司。

1.2 果蠅總RNA的提取

液氮研磨大腸桿菌(E.coli)飼喂的3齡果蠅20～30只3次，按Trizol試劑盒說明提取總RNA。

1.3DiptericinA的PCR擴增

根據DiptericinA的核苷酸序列分別設計其上下游引物D1、D2，在D1的5′端引入限制性核酸內切酶EcoR I的酶切位點，在D2的5'端引入終止子和限制性核酸內切酶XhoI的酶切位點。上游引物D1為5′-CCGGAA TTC GAC GAC ATG ACC ATG AAG CC-3′，下游引物D2為5′-CCG CTC GAG CTA TTA GAA ATT CGG AAA TC-3′；以從果蠅中提取的總RNA為模板，用上下游引物兩步法RT-PCR分別擴增，反應體系如表，RT-PCR反應程序第一步是30℃ 10 min，47℃ 30 min，5℃ 5 min；RT-PCR第二步反應程序是85℃ 1 min，55℃ 1 min，72℃ 1 min，循環25次。擴增產物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測，并將目的條帶從膠上切下，然后用小量膠回收試劑盒回收純化。

表 兩步法RT-PCR的反應體系

1.4 重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A的構建

將質粒pGEX-4T-1與經RT-PCR產物用EcoR I和XhoI雙酶切，用T4DNA連接酶連接雙酶切得到的pGEX-4T-1和目的基因片段，形成閉合環狀的重組質粒，命名為pGEX-4T-1-Diptericin A。

第三，充分利用互聯網和新興媒體，開通多層次、多渠道的營銷網絡，加大互聯網促銷力度，形成直銷和代理相結合的特色營銷渠道。

用表達質粒轉化感受態大腸桿菌BL21，涂布于含Ampicillin的LB平板上，挑選單菌落接入3 mL含Ampicillin的LB液體培養基中，在37℃250 r/min下振蕩培養12～16 h，然后用小量質粒抽提試劑盒抽提質粒。用EcoRI和XhoI作雙酶切鑒定，構建正確的重組大腸桿菌及時用含15%～20%甘油的LB培養基，于-20℃保存。

1.5 重組融合蛋白的高效表達

將重組大腸桿菌接種于5 mL 2×YT培養基中(含Amp 100 μg/mL)，37℃振搖過夜，培養至OD600值達到0.6。取500 μL過夜培養物加至50 mL含100 μg/mL Ampicillin的2×YT液體培養基中。37℃搖床培養至OD600到0.6時(約3 h)，加入100 mmol/L IPTG儲液至終濃度為1.0 mmol/L。繼續培養4 h后離心，收集發酵后的上清培養基、胞質蛋白以及包涵體蛋白進行SDS-PAGE檢測。

1.6 融合蛋白的分離純化

選用表達載體pGEX-4T-1含有編碼GST的序列，其下游有編碼凝血酶識別位點的序列，使表達的GST融合蛋白經凝血酶酶切后即可釋放單體多肽。

通過GST-sepharose 4B親和層析柱純化融合蛋白，用Bradford法測定各步流出液蛋白質的濃度，SDS-PAGE檢測純度。由此得到較高純度的重組融合蛋白溶液，于-80℃保存待用。將m融合蛋白∶m凝血酶=120∶1的比例混合，4℃下反應16 h，切割融合蛋白。通過GST親和層析除去切割下的GST和未被切割的融合蛋白，獲得純度較高的單體多肽。

1.7 生物活性的測定

2 結果與分析

2.1DiptericinA的擴增產物

由圖1可見，以引物D1和D2進行擴增，經過25個循環后分別得到1個約280 bp的條帶，大小與理論值273 bp(包括編碼83個氨基酸殘基的Diptericin A成熟肽基因序列249 bp、引物設計增加24 bp)基本一致。將片段構建原核表達載體后，經測序確認基因序列的正確性。

注：1,2為DiptericinA基因的RT-PCR產物；3為marker。

Note：1 and 2, RT-PCR products ofDiptericinAgene; 3, marker.

圖1 RT-PCR擴增果蠅DiptericinA基因圖譜

Fig.1 Amplification ofDiptericinAgene of Drosophila melanogaster by RT-PCR

2.2 重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A

PCR及雙酶切鑒定結果得到1個273 bp的DiptericinA片段和1個4 900 bp的pGEX-4T-1質粒片段，表明目的片段正確插入表達質粒(圖2)。測序結果證實其目的片段的正確性。

2.3 重組融合蛋白的表達

由圖3表明，在裂解菌體上清中獲得35 KD可溶的重組融合蛋白Diptericin A-GST，說明Diptericin A-GST能實現胞內可溶性表達。

注：1為重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A，2為重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A用EcoRI和XhoI雙酶切，3為重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A的PCR產物，4、5為marker。

Note：1, Recombinant plasmid pGEX-4T-1-Diptericin A; 2, Recombinant plasmid pGEX-4T-1-Diptericin A digested byEcoRIandXhoI; 3, PCR product of recombinant plasmid pGEX-4T-1-Diptericin A; 4 and 5, Marker.

圖2 重組質粒pGEX-4T-1-Diptericin A的鑒定

Fig.2 Identification of recombinant plasmid pGEX-4T-1-Diptericin A

注：1為發酵后上清培養基中的蛋白，2為發酵后胞質蛋白，3為marker，4為包涵體蛋白。

Note：1, Protein in supermatant medium after fermentation; 2, Cytoplasmic protein after fermentation; 3, Marker; 4, Inclusion body protein.

圖3 融合蛋白Diptericin A- GST的表達產物定位

Fig.3 Location of expression product of fusion protein Diptericin A- GST

2.4 重組融合蛋白Diptericin A- GST的分離純化

由圖4可見，已成功獲得純度較高的Diptericin A-GST融合蛋白，其純度可達95%。經Bradford法檢測，產量為315.4 mg/L。

注：1為洗脫液，2為marker，3為上樣流出液，4為PBS洗雜液。

Note：1, Eluant; 2, Marker; 3, Outflow of upper sample; 4, PBS wash liquid.

圖4 融合蛋白Diptericin A-GST的純化

Fig.4 Purification of fusion protein Diptericin A-GST

注：1為純化后的抗菌肽Diptericin A單體，2為marker。

Note：1，Purified Diptericin A monomer; 2, Marker.

圖5 抗菌肽Diptericin A的純化

Fig.5 Purification of Diptericin A

2.5 融合蛋白Diptericin A-GST的酶切及抗菌肽Diptericin A的純化

將酶切混合溶液與GST-sepharose4B親和層析柱結合，流出液中含有的未結合蛋白即目的蛋白Diptericin A，經SDS-PAGE檢測，Diptericin A單體蛋白的純度約為90%(圖5)。

2.6 Diptericin A的生物活性

不同濃度的Diptericin A溶液對大腸桿菌的抑菌圈大小分別為20.5 mm、15.00 mm和9.00 mm(圖6)。

注：0為PBS對照孔，1為1 mg/mL Diptericin A溶液加樣孔，2為2 mg/mL Diptericin A溶液加樣孔，3為4 mg/mL Diptericin A溶液加樣孔。

Note: 0, PBS control pore; 1, Sampling pore of 1 mg/mL Diptericin A solution; 2, Sampling pore of 2 mg/mL Diptericin A solution; 3, Sampling pore of 4 mg/mL Diptericin A solution.

圖6 Diptericin A對大腸桿菌的抑菌圈

Fig.6 Inhibition zone of Diptericin A againstE.coli

Diptericin A對大腸桿菌具有抑殺活性，并且該作用呈劑量依賴性。在以金黃色葡萄球菌為陰性對照的抑菌圈試驗中，未觀察到抑菌圈，因金黃色葡萄球菌屬于革蘭氏陽性細菌，因此結果與前人結論一致[9-11]，即昆蟲體內的富含甘氨酸抗菌肽類對革蘭氏陰性細菌具有抑殺作用，但不作用于革蘭氏陽性細菌。抑菌試驗結果說明， Diptericin A具有抑殺革蘭氏陰性菌的生物活性。

3 結論與討論

因抗菌肽具有廣譜的抗菌作用，并且微生物對其拮抗作用非常小，隨著越來越多傳統抗生素耐藥性細菌菌株的出現，抗菌肽可能成為一類抗微生物或抗脂多糖新型藥物，廣泛應用于醫學、農業等領域[12-14]。但生物體中抗菌肽含量較低，且從生物體內直接提取的難度大，對技術和成本的要求高，難以實現規模化生產，化學合成方法同樣存在成本較高的問題，因此基因重組技術成為大量表達有活性抗菌肽的一條有效途徑。

本研究采用的表達載體pGEX-4T-1含有tac啟動子，有利于融合蛋白的誘導及高水平表達，并且具有氨芐抗性，在其編碼GST序列的下游含有編碼凝血酶酶切位點的序列。用IPTG誘導表達后，表達產物N端融合了GST蛋白，用凝血酶酶切后即可得到單體蛋白。該載體的使用可以起到以下3個作用：增加外源蛋白的穩定性，提高外源基因在宿主中的表達水平，有利于目的蛋白的分離純化。

試驗證明，本研究成功獲得果蠅抗菌肽Diptericin A，并具有一定的抑菌活性，為進一步研究其對機體免疫力方面的影響提供可能。在大腸桿菌中成功表達具有活性的Diptericin A為利用基因工程技術生產抗菌肽奠定基礎，也為進一步研究抗菌肽的作用機理和開發新型抗感染藥物開辟一條新途徑。

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(責任編輯： 劉忠麗)

Prokaryotic Expression ofDiptericinAGene and Its Antimicrobial Activity inDrosophilamelanogaster

XU Jia

(GuizhouMinzuUniversity,Guiyang,Guizhou550025,China)

DiptericinAgene was amplified from total Drosophila RNA by RT-PCR and then the correctness of established prokaryotic expression vector was determined by PCR, double-enzyme digestion and sequencing methods. The recombinant plasmid was transformed into BL21 and then strains with resistance to Ampicillin were screened. The results showed thatDiptericinAgene is obtained and the prokaryotic expression vector is established successfully. Diptericin A-GST is expressed in the form of soluble GST fusion protein with a yield of 315.4 mg/L. Diptericin A antibacterial peptide monomer with 90% purity is obtained. The bacteriostat test showed that Diptericin A has the significant inhibition effect onE.coliand the effect is dose-dependent.

DiptericinA; prokaryotic expression; bacteriostatic activity；Drosophilamelanogaster; prokaryotic expression

2015-04-14； 2015-05-01修回

貴州省科技廳貴州民族大學聯合基金項目“貴州地區奶牛乳房炎主要病原菌調查及其生物防治方法研究”[黔科合J字KM(2012)01]

徐 佳(1982-)，女，實驗師，碩士，從事蛋白藥物研究。E-mail:50424567@qq.com

1001-3601(2015)05-0228-0024-04

S443.9

A