王曉博 ,杜 陽,謝耀光,高明川,李海蘭,王 波,姜 濤*
1大連醫科大學生物技術系;2 大連醫科大學病理學教研室,大連 116044
表沒食子兒茶素沒食子酸酯(Epigallocatechin gallate,EGCG)是綠茶中的主要成分,是茶多酚中含量最多的單體物質。EGCG 是特定的黃烷醇類化合物,具有較強的抗氧化活性。細胞內超氧化物(,H2O2等)在代謝過程中堆積過多,不能及時清除是細胞衰老機制之一[1-3]。EGCG 是否可以通過它的抗氧化活性來抑制機體衰老過程,這是本研究需要探討的問題。另外,細胞衰老與體內衰老相關的基因表達調控相關,其中包括炎癥相關的轉錄因子NF-κB (nuclear factor kappaB,NF-κB)[4,5]。NF-κB 是一種具有轉錄激活功能的蛋白質,其與細胞凋亡的關系密切[6,7],但最近研究發現NF-κB 的激活與細胞衰老也密切相關。2013 年,發表在Nature 上的一篇文章表明:隨著小鼠的衰老,下丘腦區域的NF-κB 逐漸被激活,證實了衰老與NF-κB 信號途徑的相關性[8]。本研究擬通過分析EGCG 的抗衰老作用以及對衰老小鼠腦組織NF-κB 及相關分子的表達的影響,確定EGCG 與炎癥相關信號通路之間的關系,為進一步研究EGCG 復雜的生物學效應提供線索。
3~4 月齡清潔級雄性昆明小鼠20 只,體重50±10 g,由大連醫科大學SPF 實驗動物中心提供。隨機分為2 組,模型組和對照組。其中模型組15只,按照50 mg/(kg·d)頸背部皮下注射5%D-半乳糖生理鹽水溶液,對照組5 只小鼠,按照1 mL/(kg·d)頸背部皮下注射生理鹽水溶液,連續注射9 w。建模成功后,將模型組小鼠隨機分為二組,衰老組和EGCG 處理組。衰老組5 只,按照1 mL/(kg·d)頸背部皮下注射生理鹽水;EGCG 處理組10 只,以1 mg/(kg·d)皮下注射EGCG 生理鹽水溶液,連續注射5 w;另領取3~4 月齡清潔級雄性昆明小鼠5 只設為年輕組。因此,最后利用年輕組小鼠5 只、衰老組小鼠5 只以及EGCG 處理組小鼠10 只進行研究。
EGCG(純度99.5%)購自浙江乾盛康藥業有限公司;超氧化物歧化酶(SOD)活性檢測試劑盒(批號:20101109)系南京建成生物工程研究所產品;β-半乳糖苷酶活性檢測試劑盒為碧云天生物試劑公司產品,抗鼠β-actin 抗體,抗鼠NF-κB-P65,抗鼠IκBα(Y42)抗體以及辣根過氧化物酶標記的抗兔IgG 購自巴傲德生物科技公司。
模型組小鼠和對照組小鼠每10 d 進行體重監測;并在第9 w 對小鼠進行記憶能力訓練和檢測。在設定的迷宮中對兩組小鼠進行為期5 d,每天10次的訓練,記錄50 次中的正確次數。記憶能力測試主要根據逃避到安全區的時間賦分,直接逃避到安全區給予2 分,受擊后再進行逃避給予1 分,否則為0 分,以總分作為記憶成績[9]。
采用斷尾取血的方法收集各組小鼠外周血,3500 rpm 離心10 min,收集血清。利用SOD 活性檢測試劑盒,在酶標儀的589 nm 波長下檢測后進行數據處理。
當EGCG 處理模型組小鼠4 w 時,利用10%水合氯醛腹腔注射分別麻醉年輕組、衰老組以及EGCG 處理組小鼠各1 只,斷頭取出腦組織后立即投入4%多聚甲醛固定液中固定24 h,進行冰凍切片,利用SA-β-Gal 染色試劑盒對病理切片進行洗脫、固定、染色、脫色、封片處理,最后在高倍顯微鏡下觀察海馬區神經元染色比率。
EGCG 處理模型組小鼠5 w 后,分別取年輕組(n=4)、衰老組(n=4)以及EGCG 處理組(n=8)小鼠腦組織50 mg 于液氮研磨后置于EP 管中,加入蛋白裂解液200 μL 于4 ℃裂解30 min,同時每10 min 震蕩一次,每次30 s,4 ℃,12000 rpm 離心10 min,取上清,考馬斯亮藍G250 對蛋白進行定量后進行Western blotting 分析,以β-actin 為內參照檢測NF-κB-P65 和IκBα(Y42)蛋白表達變化情況。
研究結果表明,與對照組相比,模型組小鼠30 d后體重增長緩慢(表1,圖1),且毛發較年輕組黃,進食量減少。與對照組相比,模型組小鼠正確逃避反應能力遲緩,正確次數明顯減少,記憶評分較低,均具有顯著性差異;模型組小鼠外周血中,SOD 活性也顯著性降低(表2)。

表1 D-半乳糖誘導小鼠衰老過程中的體重變化Table 1 The changes of weight for the mice treated by d-gal compared to control mice

圖1 D-半乳糖誘導小鼠衰老過程中的體重變化趨勢圖Fig.1 The tendency of weight changes of mice during d-gal treatment
當EGCG 處理衰老模型小鼠4 w 時,進行小鼠外周血SOD 活性檢測和小鼠大腦病理切片SA-β-Gal 染色分析。結果發現:與衰老組相比,EGCG 處理組SOD 活性明顯升高,達到115.24 ±11.06(圖2)。小鼠大腦病理切片進行SA-β-Gal 染色分析檢測發現:衰老組小鼠海馬區細胞在一個視野下有20%~30%細胞膜被藍染,而年輕組小鼠海馬區細胞只有5%左右被藍染,EGCG 處理組,在多個視野下,只能觀察有5%細胞膜周圍被藍染現象,與年輕組小鼠海馬區染色結果相似(圖3)。因此,EGCG處理后海馬區衰老細胞明顯減少。

表2 模型組與對照組小鼠的記憶力及外周血SOD 活性比較Table 2 Comparison of memory capability and SOD activity in mice serum between model group and control group

圖2 年輕組、衰老組及EGCG 組小鼠外周血SOD 活性分析Fig.2 The changes of SOD activity for young group,aging group and EGCG treatment group

圖3 小鼠海馬區神經元病理切片的SA-β-Gal 染色分析(×400)Fig.3 SA-β-Gal staining of mice hippocampal neurons for young group,aging group and EGCG treatment group
小鼠腦組織NF-κB-P65 和IκBα(Y42)蛋白表達情況如圖4 所示。年輕組小鼠腦組織IκBα 蛋白表達較高,而NF-κB 蛋白表達較低,當利用D-半乳糖誘導衰老后,IκBα 蛋白表達受到明顯抑制(P<0.05);而NF-κB 蛋白表達被激活,與年輕組相比,NF-κB 表達升高了2.03 倍(P<0.05)。1 mg/(kg·d)的EGCG 處理衰老模型組小鼠5 w 后,與衰老組相比,IκBα 蛋白表達呈上調趨勢,NF-κB 蛋白表達被抑制。所以,EGCG 能阻滯衰老所引起的NFκB 蛋白的激活。

圖5 小鼠腦組織NF-κB 和IκBα 蛋白表達分析Fig.5 Protein expression changes of IκB-α and NF-κB of mice brain tissue for young group,aging group and EGCG treatment group
細胞衰老(cellular aging)是一個極其復雜的生物學過程,主要指正常細胞在不能分裂后所進入的狀態。此時細胞仍然是存活的,但細胞的基因和蛋白的表達譜發生了很大改變,從而出現細胞形態、結構以及細胞內酶活性改變等一系列現象。目前,關于人體衰老機制研究主要包括兩大學說,即氧化損傷學說和端粒學說。其中氧化損傷學說及作用機制已經在不同研究中得到證明。過量氧自由基可以導致各種大分子如DNA,蛋白質的氧化損傷,從而造成基因表達紊亂和蛋白質的損傷,引起機體衰老[10]。D-半乳糖已被證明,在不同動物中均可以通過增加氧化強度,降低抗氧化酶的活性和線粒體的作用來加速衰老。所以,D-半乳糖被廣泛用于衰老模型的構建。本實驗中,連續9 w 每天于小鼠頸部皮下注射約250 μg 的D-半乳糖,經小鼠行為學檢測,外周血SOD 活性及腦組織海馬區SA-β-Gal 染色檢測發現D-半乳糖能顯著引起小鼠氧化損傷,從而成功建立小鼠衰老模型。
有研究表明,EGCG 處理人源性肝癌細胞系HCCLM6 后,能引起廣泛細胞凋亡的發生[11]。所以,EGCG 與炎癥發生和細胞凋亡存在密切關系。研究人員一直認為,炎癥不只是衰老發生的一個旁觀者,其很可能加快了衰老的進程,但具體分子機制報道較少。2013 年,美國一研究小組揭示:年輕小鼠下丘腦中NF-κB 幾乎不具有活性,隨著衰老的進程,下丘腦中的NF-κB 被逐漸激活[8]。所以,下丘腦中的炎癥有可能是整個身體衰老的根源,其與NF-κB 激活程度相關。本研究發現,EGCG 處理后,抑制了小鼠腦組織NF-κB 的表達,而IκBα 蛋白表達有上調趨勢。所以,EGCG 很可能通過阻礙NF-κB 的表達而延遲衰老進程。核轉錄因子NF-κB在細胞活動過程中是一個重要的調節因子,參與免疫反應,細胞增殖,分化和凋亡等相關400 多個基因轉錄的調控[4,12]。NF-κB 的激活涉及IκB 的磷酸化,而后者有賴于IKK(IκB 激酶)的調控。在哺乳動物中,IκB 蛋白是NF-κB 主要抑制劑,主要包括IκBα、IκBβ 和IκBγ 三種因子[13]。所以,EGCG 可能通過刺激IκBα 的表達而抑制NF-κB 的活化,進而延緩了衰老進程。但此推論還需要通過磷酸化IκBα 蛋白表達以及細胞核內磷酸化NF-κB-P65 的表達變化進一步得到驗證。因此,本研究發現EGCG 具有明顯抗衰老作用,其機制可能通過抑制NF-κB 的表達而阻礙了細胞衰老的進程。該研究結果為EGCG 相關的抗衰老保健品開發提供了一個新的方向。
1 Lan Z,Liu J,Chen L,et al.Danggui-Shaoyao-San amelio-rates cognition deficits and attenuates oxidative stress-related neuronal apoptosis in d-galactose-induced senescent mice.J Ethnopharmacol,2012,141:386-395.
2 Someya S,Prolla TA.Mitochondrial oxidative damage and apoptosis in age-related hearing loss.Mech Ageing Dev,2010,131:480-486.
3 Lopez-Burillo S,Tan DX,Mayo JC,et al.Melatonin,xanthurenic acid,resveratrol,EGCG,vitamin C and alpha-lipoic acid differentially reduce oxidative DNA damage induced by Fenton reagents:a study of their individual and synergistic actions.J Pineal Res,2003,34:269-277.
4 Karin M,Ben Neriah Y.Phosphorylation meets ubiquitination:the control of NF-κB activity.Annu Rev Immunol,2000,18:621-663.
5 Li Q,Verma IM.NF-κB regulation in the immune system.Nat Rev Immunol,2002,2:725-734.
6 Singh M,Singh R,Bhui K,et al.Tea polyphenols induce apoptosis through mitochondrial pathway and by inhibiting nuclear factor-kappaB and Akt activation in human cervical cancer cells.Oncol Res,2011,19:245-57.
7 Sriram N,Kalayarasan S,Sudhandiran G.Epigallocatechin-3-gallate augments antioxidant activities and inhibits inflammation during bleomycin-induced experimental pulmonary fibrosis through Nrf2-Keap1 signaling.Pulm Pharmacol Ther,2009b,22:221-236.
8 Zhang G,Li J,Purkayastha S,et al.Hypothalamic programming of systemic ageing involving IKK-beta,NF-kappaB and GnRH.Nature,2013a,497:211-216.
9 Sun MM(孫茂民),Liu J (劉珺),Chen EQ (陳爾齊),et al.Expression of P21WAF-1 of neuron in second-acute brain aging models.Lab Animal Comparative Med (實驗動物與比較醫學),2006,26:223-226.
10 Meng Q,Velalar CN,Ruan R,et al.Regulating the age-related oxidative damage,mitochondrial integrity,and antioxidative enzyme activity in Fischer 344 rats by supplementation of the antioxidant epigallocatechin-3-gallate.Rejuvenation Res,2008a,11:649-660.
11 Zhang Y,Owusu L,Duan W,et al.Anti-metastatic and differential effects on protein expression of epigallocatechin-3-gallate in HCCLM6 hepatocellular carcinoma cells.Int J Mol Med,2013,32:959-964.
12 Wang CY,Mayo MW,Baldwin AS,et al.TNF and cancer therapy-induced apoptosis:potentiation by inhibition of NFkappaB.Science,1996,274:784-787.
13 Tsuchiya Y,Asano T,Nakayama K.Nuclear IKKbeta is an adaptor protein for IkappaBalpha ubiquitination and degradation in UV-induced NF-kappa B activation.Mol Cell,2010,39:570-582.